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Article de méthode

Corps entier Spectrométrie de masse d'imagerie par infrarouge laser assistée par matrice désorption Electrospray Ionisation (IR-MALDESI)

9.2K vues

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DOI :

10.3791/53942

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24 mars 2016

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Dans cet article

Résumé

Une source d’imagerie par spectrométrie de masse (MSI) fonctionnant à pression atmosphérique a été développée en couplant la désorption laser dans l’infrarouge moyen et la post-ionisation par électronébulisation. Une matrice de glace exogène a été utilisée comme matrice d’absorption d’énergie pour faciliter la désorption résonnante du matériau lié aux tissus. Ce manuscrit fournit un protocole étape par étape pour la réalisation de l’IR-MALDESI MSI de souris néonatale du corps entier.

Résumé

sources d'ionisation ambiantes pour la spectrométrie de masse (MS) ont fait l'objet d'un grand intérêt dans la dernière décennie. Laser assistée par matrice désorption ionisation par électronébulisation (MALDESI) est un exemple de ces méthodes, lorsque les caractéristiques de laser assistée par matrice de désorption / ionisation (MALDI) (par exemple, la nature puisée de désorption) et l' ionisation par électropulvérisation (ESI) (par exemple, soft-ionisation ) sont combinés. L'un des principaux avantages de MALDESI est sa polyvalence inhérente. Dans des expériences MALDESI, un rayonnement ultraviolet (UV) ou infrarouge (IR) laser peut être utilisé pour exciter de façon résonnante d'une matrice endogène ou exogène. Le choix de la matrice ne dépend pas de substance à analyser, et ne dépend que de la longueur d'onde du laser utilisé pour l'excitation. Dans les expériences IR MALDESI, une mince couche de glace se dépose sur la surface de l'échantillon comme matrice absorbant l'énergie. La géométrie de la source IR-MALDESI a été optimisé en utilisant la conception statistique des expériences (DOE) pour l'analyse d'échantillons liquides ainsi que bioldes échantillons de tissus ogique. En outre, une source solide d'imagerie infrarouge MALDESI a été mis au point, où un laser à infrarouge moyen accordable est synchronisé avec un étage XY de translation commandé par ordinateur et une résolution de spectromètre de masse élevée de puissance. Une interface utilisateur graphique personnalisée (GUI) permet la sélection de l'utilisateur du taux du laser de répétition, le nombre de coups par voxel, l'étape de taille de la scène de l'échantillon, et le délai entre la désorption et analyser les événements de la source. IR MALDESI a été utilisé dans diverses applications telles que l'analyse médico-légale des fibres et des colorants et des MSI des coupes de tissus biologiques. Répartition des différents analytes allant de métabolites endogènes aux xénobiotiques exogènes à l'intérieur des sections de tissu peut être mesurée et quantifiée en utilisant cette technique. Le protocole présenté dans ce manuscrit décrit les principales étapes nécessaires pour IR-MALDESI MSI des coupes de tissus du corps entier.

Introduction

Imagerie par spectrométrie de masse (MSI) en mode microsonde implique la désorption de l'échantillon à partir d'une surface par un faisceau (laser ou d'ions) à des emplacements discrets sur la surface d'un échantillon. A chaque point de trame, un spectre de masse est produit, et les spectres acquis, ainsi que la localisation spatiale à partir duquel ils ont été recueillis, peuvent être utilisés pour cartographier simultanément plusieurs analytes dans l'échantillon. Cette manière sans étiquette d'imagerie couplé à la sensibilité et la spécificité de la spectrométrie de masse ont aidé MSI devenir l' un des domaines en évolution le plus rapid....

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Protocole

Remarque: Le protocole suivant décrit toutes les étapes nécessaires à la réalisation d'expériences IR-MALDESI MSI. En profondeur des détails sur la géométrie optimisée de la source IR-MALDESI et sa synchronisation avec le laser, le stade et le spectromètre de masse peuvent être trouvées ailleurs 5,6. des échantillons de tissus d'animaux utilisés dans ce protocole ont été obtenus selon Institutional Animal Care et utilisation Commission (IACUC) et règlements de l'Université d'État de Caroline du Nord.

1. Préparation des tissus

  1. Préparer un isopentane / bain de glace sèche en plaçant ~ 200 ml d'isope....

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Résultats

Les images présentées sur la figure 4 montrent la répartition spatiale des métabolites dans les différents organes de la section de tissu du corps entier. M Unique / z des valeurs à des régions spécifiques du corps ont été trouvés en utilisant MSiReader PeakFinder, suivie d' un traitement par lots pour la production d'image. L'outil image de superposition (figure 3-4) a été utilisé pour aligner l'image optique prise avan.......

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Discussion

Le protocole ci-dessus décrit les étapes clés pour réaliser une expérience IR-MALDESI MSI. Le processus d'application de la matrice (section 3) prend environ 20 min, ce qui est similaire à un processus d'application typique de la matrice pour des expériences MALDI MSI par sublimation ou de revêtement par pulvérisation à l'aide d'un pulvérisateur robotique. En outre, IR-MALDESI ne repose pas sur le partitionnement des analytes dans les cristaux de la matrice 6, et la matrice de la glace peut êt.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.

Remerciements

Les auteurs remercient le professeur H. Troy Ghashghaei du Département des sciences biomédicales moléculaires de la NCSU pour avoir fourni l’ensemble du tissu de souris. Les auteurs remercient également les National Institutes of Health (R01GM087964), la fondation W.M. Keck et l’Université d’État de Caroline du Nord pour l’aide financière qu’ils ont reçue.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Source IR-MALDESISur mesureN/AVeuillez vous référer aux références 4 et 12 pour une discussion approfondie du développement des sources IR-MALDESI.
Q Exactive Plus  ;Thermo ScientificQ Exactive Plus Hybride Quadrupole-Orbitrap Spectromètre
de masse à eau, grade HPLCBurdick & Jackson  ;AH365-4
Méthanol, qualité HPLCBurdick & Jackson  ;AH230-4
Acide formiqueSigma Aldrich  ;56302
Laser mid-IR accordableOpotek Inc.IR OpoletteTunable 2 700-3 100  ; nm IR OPO
laser Azote gazeuxArc3 GasesAG S-NI300-5.0Bouteille d’azote gazeux de haute pureté Grade 5.0 (300)
CryostatLeica BiosystemsCM 1950Cryomicrotome
à profil élevé Lames de microtomeLeica Biosystems3802123Leica DB80HS
Medium de montage (OCT)Leica Biosystems3801480Surgipath FSC 22 support de montage
Disque d’échantillon de cryostatLeica Biosystems1404774004540 mm de diamètre
Lames de microscope en verreVWR48312-003Givrées, sélectionnées, pré-nettoyées

Références

  1. Mcdonnell, L. A., Heeren, R. M. A. Imaging Mass Spectrometry. Mass Spectrom. Rev. 26, 606-643 (2007).
  2. Chughtai, K., Heeren, R. M. A. Mass spectrometric imaging for biomedical tissue analysis. Chem. Rev. 110 (5), 3237-3277 (2010).
  3. Robichaud, G., Barry, J. A., Muddiman, D. C.

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Réimpressions et autorisations

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