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Article de méthode

Génération des médias et applications Organ-conditionnés pour l'étude Influences spécifiques d'organes sur le cancer du sein métastatique Comportement

8.1K vues

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DOI :

10.3791/54037

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13 juin 2016

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce manuscrit décrit un système modèle ex vivo composé de milieux conditionnés par des organes dérivés des ganglions lymphatiques, des os, des poumons et du cerveau de souris. Ce système modèle peut être utilisé pour identifier et étudier les facteurs solubles dérivés d’organes et leurs effets sur le tropisme des organes et le comportement métastatique des cellules cancéreuses.

Résumé

Le cancer du sein métastase préférentiellement aux ganglions lymphatiques, aux os, aux poumons, au cerveau et au foie chez les patientes atteintes d’un cancer du sein. Les efforts de recherche antérieurs se sont concentrés sur l’identification des facteurs inhérents aux cellules cancéreuses du sein qui sont responsables de ce modèle métastatique observé (appelé tropisme d’organe), mais on en sait beaucoup moins sur les facteurs présents dans des organes spécifiques qui contribuent à ce processus. Cela est dû en partie à l’absence de systèmes modèles in vitro qui récapitulent avec précision le microenvironnement des organes. Pour y remédier, un système modèle ex vivo a été établi qui permet d’étudier les facteurs solubles présents dans différents microenvironnements d’organes. Ce modèle consiste à générer des milieux conditionnés à partir d’organes (ganglions lymphatiques, os, poumons et cerveau) isolés de souris nues athymiques normales. Le système modèle a été validé en démontrant que différentes lignées cellulaires de cancer du sein présentent un comportement malin spécifique à la lignée cellulaire et à l’organe en réponse à des milieux conditionnés par un organe qui correspond à leur potentiel métastatique in vivo. Ce système modèle peut être utilisé pour identifier et évaluer des facteurs solubles spécifiques dérivés d’organes qui peuvent jouer un rôle dans le comportement métastatique des cellules cancéreuses du sein et d’autres types de cellules cancéreuses, y compris les influences sur la croissance, la migration, le comportement de type souche et l’expression des gènes, ainsi que l’identification de nouvelles cibles thérapeutiques potentielles pour le cancer. Il s’agit du premier système modèle ex vivo qui peut être utilisé pour étudier en détail le comportement métastatique spécifique à un organe et évaluer le rôle de facteurs solubles dérivés d’organes spécifiques dans le processus de métastases cancéreuses.

Introduction

Le cancer du sein est le cancer le plus fréquemment diagnostiqué chez les femmes et la deuxième principale cause de décès liés au cancer 1. taux de mortalité élevé de cancer du sein est principalement due à l'échec de la thérapie conventionnelle pour atténuer et éliminer la maladie métastatique; environ 90% des décès liés au cancer sont dus à des métastases 2. La compréhension des mécanismes moléculaires sous-jacents de la cascade métastatique est primordiale pour le développement de thérapies efficaces à la fois précoce et le cancer du sein à un stade avancé.

Des recherches antérieures ont permis d' élucider....

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Protocole

Toutes les études sur les animaux ont été menées conformément aux recommandations du Conseil canadien de protection des animaux, en vertu de protocoles approuvés par le Sous-comité des animaux Utiliser l'Université Western.

1. Isolement d'organes (poumon, cerveau, os, ganglions lymphatiques)

  1. Préparer quatre tubes de 50 ml stériles coniques (un pour chaque organe à isoler) contenant environ 30 ml de solution saline stérile tamponnée au phosphate (PBS). Pré-peser chaque tube de PBS en utilisant une balance électronique.
  2. Euthanasier 6-12 semaine vieille souris par inhalation de CO 2. Les souris doivent....

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Résultats

Génération des médias Organ-conditionné

Une vue d' ensemble diagramme / schématique du procédé d'isolement d'organes et de génération de milieu conditionné est présenté à la figure 1, avec des images photographiques représentatives de la procédure représentée sur la figure 2. Il convient de noter que , lorsque ce protocole a d' abord été en cours d' élabora.......

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Discussion

Métastase est un processus complexe par lequel une série d'événements cellulaires sont ultimement responsables de l' invasion des tissus et de la tumeur lointaine création 4,30,31. L'ex vivo système de modèle présenté ici peut être utilisé pour étudier deux aspects importants de la progression métastatique: le cancer homing des cellules ou de migration à un organe spécifique ( "y arriver") et la croissance de cet organe ( «il y en croissance»). De nombreuses études ont déjà mis .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par des subventions de la Fondation canadienne du cancer du sein de la région de l’Ontario, de la Fondation canadienne pour l’innovation (n° 13199) et par l’intermédiaire de John et Donna Bristol par l’intermédiaire de la London Health Sciences Foundation (à A.L.A.). Le Programme de bourses d’études supérieures de l’Ontario (province de l’Ontario, G.M.P. et J.E.C.), le Programme de bourses d’études supérieures du Canada au niveau de la maîtrise (M.M.P.), le Programme de formation stratégique des Instituts de recherche en santé du Canada (IRSC) (M.M.P., G.M.P et J.E.C.) et l’Unité de recherche translationnelle sur le cancer du sein Pamela Green....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tubes coniques de 50 mlThermo Scientific (Nunc)339652Maintenir stérile
1x solution saline tamponnée au phosphateThermoFisher Scientific10010-023Garder stérile
Souris nuesHarlan LaboratoriesHsd :Athymic Nude-Foxn1nuUtiliser à l’âge de 6 à 12 semaines Tampon en mousse de
polystyrèneN/A/ALe couvercle mis au rebut (~ 4 x 8 pouces ou plus) d’un conteneur d’expédition en mousse de polystyrène peut être utilisé à cette fin. Stériliser en essuyant avec de l’éthanol.
PinceOutils pour les sciences fines11050-10Garder stériles
Ciseaux pour lessciences fines14058-11Garder stériles
Compresses de gazeFisher Scientific22-246069Garder stériles
60 mm2 boîtes de Pétri en verreSigma-AldrichCLS7016560Garder
stériles Lames de scalpelFisher ScientificS95937AGarder stérile
DMEM :F12Life Technologies21331-020Chaud en 37 ° ; C bain-marie avant utilisation, maintenir stérile  ;
1x Mito + Serum ExtenderBD Biosciences355006Appelé « supplément de mitogène concentré » dans le manuscrit. Rester stérile
Pénicilline-Streptomycine (10 000 U/ml)Life Technologies15140-122Garder stérile
Rosewell Park Memorial Institute 1640 (RPMI 1640)Life Technologies11875-093Chaud en 37 ° ; C bain-marie avant utilisation, maintenir stérile  ;
Sérum fœtal bovinSigma-AldrichF1051-500MLMaintenir stérile
Solution de trypsine/EDTAThermoFisher ScientificR-001-100Chaud en 37 ° ; C bain-marie avant utilisation, maintenir stérile  ;
Plaques de culture tissulaire à 6 puitsThermo Scientific (Nunc)140675Maintenir stérile
0,22 &mu ; Filtres à seringueSigma-AldrichZ359904Conserver stériles
les flacons de culture tissulaire T75Thermo Scientific (Nunc)178905Garder
stériles TranswellsSigma-AldrichCLS3464Conserver stérile, à utiliser pour les tests
de migration Anti-souris Sca-1R& D SystemsFAB1226Putilisation à 10 & micro ; l/106cellules
Anti-souris CD105R& D SystemsFAB1320Putilisation à 10 & micro ; l/106cellules
Anti-souris CD29R& D SystemsFAB2405P-025utilisation à 10 & micro ; l/106cellules
anti-souris CD73R& D SystemsFAB4488Putilisation chez 10 & micro ; l/106cellules
anti-souris CD44R& D SystemsMAB6127-SPutilisation à 0,25 & micro ; g/106 cellules
anti-souris CD45eBioscience11-0451-81utilisation à 5 µ ; l/106 cellules
Anti-souris gp38eBioscience12-5381-80utilisation à 10 µ ; L/106 cellules
&bêta ;-mercaptoéthanol  ;Sigma-AldrichM6250  ;Conserver stérile
Réseaux de protéinesRayBiotech Inc.AAM-BLM-1-2Utilisation d’une matrice par condition de support (y compris le contrôle négatif), en trois exemplaires
N

Références

  1. Canadian Cancer Statistics. Canadian Cancer Society. , Toronto, ON. Available from: www.cancer.ca (2014).
  2. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics, 2015. CA Cancer J Clin. 65 (1), 5-29 (2015).
  3. Fidler, I. J. The organ microenvironment and cancer metastasis. Differentiation. 70

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Réimpressions et autorisations

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