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Article de méthode

Technique explosive cochléaire murine néonatale en tant que

18.1K vues

DOI :

10.3791/55704

8 juin 2017

Dans cet article

Résumé

Le but de ce protocole est de démontrer la préparation, la culture, le traitement et l'immunocoloration des explants cochléaires murins néonataux. La technique peut être utilisée comme outil de dépistage in vitro dans la recherche auditive.

Résumé

Bien qu'il y ait eu des progrès remarquables dans la recherche de l'ouïe au cours des dernières décennies, il n'y a toujours pas de remède contre la perte d'audition sensorielle (SNHL), une affection qui entraîne généralement une perte ou une perte des structures mécanosensorielles délicates de l'oreille interne. Des essais sophistiqués in vitro et ex vivo ont émergé ces dernières années, ce qui a permis de dépister un nombre croissant de composés potentiellement thérapeutiques tout en minimisant les ressources et en accélérant les efforts pour développer des remèdes pour SNHL. Bien que les cultures homogènes de certains types de cellules continuent à jouer un rôle important dans la recherche actuelle, de nombreux scientifiques s'appuient maintenant sur des cultures organotypiques plus complexes d'oreilles internes murines, également connues sous le nom d'explants cochléaires. La préservation des structures cellulaires organisées à l'intérieur de l'oreille interne facilite l'évaluation in situ de divers composants de l'infrastructure cochléaire, y compris les cellules capillaires interne et externe, les neurones ganglionnaires en spirale, les neuronesItes, et les cellules de soutien. Nous présentons ici la préparation, la culture, le traitement et l'immunocoloration des explants cochléaires murins néonataux. La préparation minutieuse de ces explants facilite l'identification des mécanismes qui contribuent au SNHL et constituent un outil précieux pour la communauté de la recherche auditive.

Introduction

La perte auditive sensorielle (SNHL) reflète les dommages causés à l'oreille interne ou à la voie auditive ascendante. Bien que la perte auditive soit le déficit sensoriel le plus fréquent chez les humains 1 , les traitements curatifs n'existent pas encore 2 . Bien que les implants cochléaires ou auditifs du tronc cérébral puissent rétablir un certain degré d'audition chez les patients atteints de SNHL grave à profond, l'audition fournie par ces dispositifs est encore très différente de l'audition "naturelle", en particulier lors des tentatives de compréhension de la parole dans le bruit ou de l'....

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Protocole

Le protocole d'étude a été approuvé par le Comité institutionnel pour les soins et l'utilisation des animaux (IACUC) du Massachusetts Eye and Ear. Les expériences ont été réalisées selon le Code de déontologie de l'Association médicale mondiale.

1. Préparation de la dissection

  1. Préparation de la table chirurgicale
    1. Utilisez 70% d'éthanol pour désinfecter la table chirurgicale.
    2. Placez deux plaques de préparation non stériles à côté du microscope.
    3. Préparez le tiroir à instruments, y compris les ciseaux opératoires stérilisés par la chaleur, une poignée de scalpel, un mic....

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Résultats

Bien que de nombreux protocoles se concentrent sur l'organe des explants de Corti, cette technique tente de préserver l'anatomie de l'ensemble du tournant cochléaire, y compris les SGN. Cela donne aux chercheurs la possibilité d'analyser les effets d'un traitement donné sur les neurites et somata des SGN en plus de l'organe de Corti. Effectuer une dissection qui conserve une partie du modiolus, comme décrit ici, est plus difficile à utiliser que l'explantation.......

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Discussion

Les chercheurs doivent perfectionner la technique de dissection avant d'effectuer des expériences impliquant des explants cochléaires. Les cellules ciliées sont généralement endommagées lors des dissections effectuées au début de la courbe d'apprentissage, et un moment particulièrement problématique pour leur intégrité est l'élimination de la membrane tectoriale, qui nécessite des mains régulières, des outils appropriés et une expérience. Pour économiser du temps et des ressources, un contrôle visuel devrait.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à dévoiler.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par les subventions du Département national de la surdité et des autres troubles de la communication, R01DC015824 (KMS) et T32DC00038 (soutenant SD), le ministère de la Défense accorde W81XWH-15-1-0472 (KMS), la Fondation Bertarelli (KMS) Nancy Sayles Day Foundation (KMS) et le Lauer Tinnitus Research Center (KMS). Nous remercions Jessica E. Sagers, BA pour des commentaires perspicaces sur le manuscrit.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Ampicilline, sel de sodiumInvitrogen11593-027
anticorps anti-CtBP2, souris (IgG1)BD Transduction Laboratories612044
anticorps anti-Myo7A, lapinProteus Biosciences25-6790
anticorps anti-NF-H, pouletEMD MilliporeAB5539
anticorps anti-PSD95, souris (IgG2a)Anticorps Inc.75-028
Anticorps anti-TuJ1, sourisBioLegend801202
Cell-Tak Adhésif pour cellules et tissus, 5 mgCorning354241
CELLSTAR 15 mL Tubes à centrifuger, fond conique, graduation,Greiner Bio-Onestérile 188161
CELLSTAR Boîte de culture cellulaire, 100 x 20 mmGreiner Bio-One664160
CELLSTAR Boîte de culture cellulaire, 35 x 10 mm, 4 anneaux intérieursGreiner Bio-One627170
Boîte de culture cellulaire CELLSTAR, 60 x 15 mmGreiner Bio-One628160
CELLSTAR 50 mL Tubes à centrifuger, fond conique, graduation,Greiner Bio-One227261
Vernis à ongles transparentMicroscopie électronique Sciences72180
Plats à fond en verre transparent (verre 40mm), PELCO® ;, Sleeve/20, 50 x 7 mmTed Pella Inc.14027-20
Couvre-lames, rond, verre, 10 mm de diamètre, épaisseur #1, 0,13 - 0,16 mmTed Pella Inc.
DAPI (4',6-Diamidino-2-Phénylindole, dichlorhydrate)Thermo Fisher ScientificD1306
Eau distillée, 500 mLThermo Fisher Scientific15230-162  ;
Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM), teneur élevée en glucose, pyruvate, sans glutamine, 500 mLThermo Fisher Scientific10313-039
Dumont #4 ForcepsFine Science Tools11241-30
Dumont #55 Forceps (Dumostar)Fine Science Tools11295-51
Alcool éthylique (EtOH), pur, 200 proof, anhydre, &ge ; 99,5 %Sigma-Aldrich459836-1L
Sérum de veau fœtal (FBS), qualifié, régions approuvées par l’USDA, 500 mLThermo Fisher Scientific10437-028  ;Aliquote dans des tubes de 50 mL et conserver à -20° ; C chèvre congélateur
anti-poulet-647 anticorps secondaireThermo Fisher ScientificA-21469
chèvre anti-souris (IgG)-568 anticorps secondaireThermo Fisher ScientificA-11004
chèvre anti-souris (IgG1)-568 anticorps secondaireThermo Fisher ScientificA-21124
chèvre anti-souris (IgG2a)-488 anticorps secondaireThermo Fisher ScientificA-21131
chèvre anti-lapin-488 anticorps secondaireThermo Fisher ScientificR37116
H2O, stérile, EmbryoMax Ultra Pure Water, 500 mLEMD MilliporeTMS-006-B
Hank’s Balanced Salt Solution (HBSS), calcium, magnésium, sans rouge de phénol, 500 mLThermo Fisher Scientific14025-092
Plateau à instruments avec couvercle Acier inoxydableMountainside MedicalTechMed4255
Micro couteau (dissection) &ndash ; coudé 30° ;Fine Science Tools10056-12
Lames de microscope, VistaVision, à code couleur, 75 x 25 mm (3 x 1"), 1 mm d’épaisseur, blanches, paquet de 72VWR16004-382
N-2 Supplement (100X), 5 mLThermo Fisher Scientific17502-048
NaHCO3, solution de bicarbonate de sodium à 7,5 %, 100 mLThermo Fisher Scientific25080-094
NaOH, solution d’hydroxyde de sodium, 1 LThermo Fisher ScientificSS266-1
Sérum normal pour chevaux (NHS)Invitrogen16050130
Ciseaux opératoiresRoboz Surgical Instruments Co.RS-6806
Paraformaldéhyde (PFA), qualité réactif, cristallinSigma-AldrichP6148Avant l’utilisation : Établir des procédures opérationnelles normalisées basées sur les protocoles disponibles en ligne
PBS, pH 7,4, 500 mLThermo Fisher Scientific10010-023  ;Autoclave avant utilisation
Phalloïdine, Alexa Fluor 568  ;Thermo Fisher ScientificA12380
Coussin de préparation, non stérileMedline05136CS
Tubes de microcentrifugation Safe-Lock, polypropylène, 0,5 mLAutoclavede 022363719Eppendorf
Tubes de microcentrifugation Safe-Lock, polypropylène, 1,5 mLAutoclavede 022363204Eppendorf
Lames de scalpel - #15Outils de science fine10015-00
Manche de scalpel - #4Outils de science fine10004-13
Stemi 2000-C StéréomicroscopeZeiss°000000-1106-133
TCS SP5 microscope confocalLeicaN/A
Triton-X (tensioactif non ionique)IntegraT756.30.30
VectaShield support de montage anti-décoloration pour fluorescenceVector Laboratories, Inc.H-1000
Sac à fermeture éclair, refermable, 4 x 6'' - 2 mm d’épaisseurZipline0609132541599
260368 avant utilisation avant utilisation

Références

  1. Mathers, C., Smith, A., Concha, M. Global burden of hearing loss in the year. World Health Organization (WHO). , Available from: http://www.who.int/healthinfo/statistics/bod_hearingloss.pdf (2000).
  2. Geleoc, G. S., Holt, J. R. Sound strategies for hearing restoration). Science. 344 (6184), 1241062(2014).
  3. Kujawa, S. G., Liberman, M. C.

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

Cochl e murine n onataleanalyse des cellules cili esneurones du ganglion spiralculture organotypiqueproc dure d immunomarquageablation de la membrane tectorialecoupes des spires cochl airesanalyse par imagerie confocale