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Article de méthode

Visualisation du modèle de projection axonale des neurones du moteur embryonnaire dans

7.5K vues

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DOI :

10.3791/55830

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16 juin 2017

Dans cet article

Résumé

Ce travail décrit une méthode d'immunohistochimie standard pour visualiser les projections de neurones moteurs d'embryons de Drosophila melanogaster en phase finale 16. La préparation en filets d'embryons fixés colorés à l'aide d'un anticorps FasII fournit un outil puissant pour caractériser les gènes requis pour le suivi des axones motrices et la reconnaissance des cibles lors du développement neuronal.

Résumé

L'établissement de circuits neuromusculaires fonctionnels repose sur des liens précis entre le développement des axones moteurs et les muscles cibles. Les neurones moteurs étendent les cônes de croissance pour naviguer selon des voies spécifiques en répondant à un grand nombre de repères d'axones qui émanent de l'environnement extracellulaire environnant. La reconnaissance de la cible de cône de croissance joue également un rôle critique dans la spécificité neuromusculaire. Ce travail présente un protocole standard d'immunohistochimie pour visualiser les projections de neurones moteurs d'embryons de Drosophila melanogaster en phase finale 16. Ce protocole comprend quelques étapes clés, y compris une procédure de génotypage, pour trier les embryons mutants désirés; Une procédure d'immunocoloration, pour marquer les embryons avec un anticorps fasciclin II (FasII); Et une procédure de dissection, pour générer des préparations en filets à partir d'embryons fixes. Les projections d'axones moteurs et les modèles musculaires dans la périphérie sont mieux mieux visualisés dans des préparations plates d'embryons en filets que dans whEmbryons montés à l'huile. Par conséquent, la préparation en filets d'embryons fixés colorés avec de l'anticorps FasII fournit un outil puissant pour caractériser les gènes nécessaires à la détection des axones et à la reconnaissance des cibles des axones, et peut également être appliqué à la fois aux écrans génétiques de perte de fonction et de gain de fonction .

Introduction

Des liaisons précises et sélectives entre les axones moteurs et les muscles cibles pendant le développement embryonnaire sont essentielles pour la locomotion normale dans les larves de Drosophila . Le modèle embryonnaire de 30 fibres musculaires dans chacun des hémisogravages abdominaux A2-A7 est établi par étape 16 1 . Les 36 neurones moteurs qui sont générés dans le cordon nerveux ventral étendent leurs axones à la périphérie pour inerver les muscles cibles spécifiques 2 . L'identification par voie axonale motrice et la reconnaissance des cibles peuvent être visualisées par immunohistochimie avec un antic....

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Protocole

1. Préparation

  1. Préparer 500 ml de solution saline tamponnée au phosphate (PBS) avec une solution de t-octylphénoxypolyéthoxyéthanol (PBT) en ajoutant 0,5 g de sérumalbumine bovine (BSA) et 0,5 ml de t-octylphénoxypolyéthoxyéthanol (voir la Table des matières) à 500 ml de PBS 1X Et en remuant pendant au moins 30 minutes. Conserver à 4 ° C. Utiliser quand il s'agit relativement frais et conserver la solution dans une bouteille propre.
  2. Faire 10 ml de paraformaldéhyde à 4% en ajoutant 2,5 ml de solution de paraformaldehyde stock à 16% et 1 ml de PBS 10x à 6,5 ml d'eau désionisée. Conserver à 4 ° C et utiliser dans une semaine.
    ATTENTIO....

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Résultats

Les connexions précises entre les axones moteurs et les muscles cibles pendant le développement neuronal dépendent de la répulsion axon-axonique sélective et de la reconnaissance de cible à des points de choix spécifiques 4 . Chez Drosophila , la répulsion sélective entre les axones moteurs est en partie régie par l'action combinée des semaphorines de classe 1 et 2 (Semas), y compris Sema-1a, Sema-2a et Sema-2b 8 , <.......

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Discussion

Les détails des défauts de guidage de l'axone motrice sont évalués plus rapidement et avec une meilleure précision par la préparation en filets d'embryons colorés au DAB que par microscopie confocale à balayage laser d'étiquettes fluorescentes. Par conséquent, la préparation en filets d'embryons fixés et colorés au 1D4 convient le mieux à la caractérisation fonctionnelle des molécules de guidage. Quatre grandes classes de repères d'orientation, y compris les netrins, les fentes, les demi-éthers (Sema.......

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Déclarations de divulgation

L'auteur déclare qu'il n'a pas d'intérêts financiers concurrents.

Remerciements

Je remercie Alex L. Kolodkin, car j'ai appris ce protocole de préparation en filets dans son laboratoire. Je remercie également Young Gi Hong pour une assistance technique. Cette étude a été soutenue par NRF-2013R1A1A4A01011329 (SJ).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Albumine sérique bovineSigma-AldrichA7906
Triton X-100Sigma-AldrichX100t-Octylphénoxypolyéthoxyéthanol
16 % Paraformaldéhyde SolutionTed Pella18505
Chlorure de sodiumSigma-AldrichS5886
Chlorure de potassiumSigma-AldrichP5405
Phosphate de sodium dibasiqueSigma-Aldrich30435
Phosphate de sodium monobasiqueSigma-Aldrich71500
Substrat X-GalUS BiologicalX1000X-Gal (5-Bromo-4-chloro-3-indolyl-b-D-galactoside galactopyranoside)
Dimethyl SulfxideSigma-AldrichD4540
Chlorure de magnésiumSigma-AldrichM8266
Hexacyanoferrate(II) de potassium trihydratéSigma-AldrichP9387
Hexacyanoferrate de potassium(III)Sigma-Aldrich244023
Peroxyde d’hydrogèneSigma-Aldrich216763
3,3'-diaminobenzidine TétrachlorhydrateSigma-AldrichD5905
AgarUS BiologicalA0930
SaccharoseFisher ScientificS5-3
Tegosept (Methy 4-Hydroxybenzoate)Sigma-AldrichH5501
Plat de culture (60 mm)Corning430166
Tricon BeakerSimportB700-100Ceci est utilisé pour fabriquer une cage de bécher en plastique pour la collecte d’embryons.
YeastSociete Industrielle LesaffreSaf Instant Yeast Red
Cotton Swab (Wooden Single Tip Cotton PK100)VWR14220-263
Eppendorf Tube (1.5 ml)Sarstedt#72.690
BleachThe Clorox CompanyClorox
HeptaneSigma-Aldrich246654
MethanolJ.T. BakerUN1230
Normal Goat SerumLife Technologies16210-064
Anti-FasciculinIIAnticorps Études développementales HybridomaBank 1D4 anti-Fasciclin II
AnticorpsJackson Immunoresearch115-006-068AffiniPure F(ab')2 Fragment de chèvre Anti-souris IgG+IgM (H+L)
(min X Hu, Bov, Hrs Sr Prot
GlycérolSigma-AldrichG9012
Verrede lame Duran Group235501403
CoverslipDuran Group23550310418 x 18 mm
1 ml SeringueBecton Dickinson Medical(s)301321
Aiguille en tungstèneTed Pella#27-11Fil de tungstène, ø ; 0,13 mm/6,1 m (ø ;. 005"/20 pi)
Nutator (Mini twister)KO de la science coréenne. VS-96TWSAlternativement, BD Clay Adams Brand Nutator (BD 421125)
Chèvre Anti-souris-HRP

Références

  1. Bate, M. The embryonic development of larval muscles in Drosophila. Development. 110 (3), 791-804 (1990).
  2. Landgraf, M., Thor, S. Development of Drosophila motoneurons: specification and morphology. Semin. Cell Dev. Biol. 17 (1), 3-11 (2006).
  3. Gr....

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Réimpressions et autorisations

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