Article de méthode

Analyse du Gap Junction-dependent Transfert de miARN avec microscopie 3D-FRAP

DOI :

10.3791/55870

19 juin 2017

Dans cet article

Résumé

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Ici, nous décrivons l'application de la récupération de fluorescence tridimensionnelle après photoblanchage (3D-FRAP) pour l'analyse de la permutation dépendant de la jonction de miRNA. Contrairement aux méthodes couramment appliquées, 3D-FRAP permet de quantifier le transfert intercellulaire de petits ARN en temps réel, avec une résolution spatio-temporelle élevée.

Résumé

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Les petits ARN antisens, comme le miARN et l'ARNi, jouent un rôle important dans la physiologie et la pathologie cellulaires et, en outre, peuvent être utilisés comme agents thérapeutiques dans le traitement de plusieurs maladies. Le développement de nouvelles stratégies novatrices pour la thérapie miRNA / siRNA repose sur une connaissance approfondie des mécanismes sous-jacents. Les données récentes suggèrent que les petits ARN sont échangés entre les cellules d'une manière dépendant de la jonction, ce qui induit des effets de régulation des gènes dans la cellule destinataire. Les techniques biologiques moléculaires et l'analyse cytométrique en flux sont couramment utilisées pour étudier l'échange intercellulaire du miARN. Cependant, ces méthodes ne fournissent pas une résolution temporelle élevée, ce qui est nécessaire lors de l'étude du flux de jonction entre les molécules. Par conséquent, pour étudier l'impact du miRNA / siRNA en tant que molécules de signalisation intercellulaire, de nouveaux outils sont nécessaires pour permettre l'analyse de ces petits ARN au niveau cellulaire. Le présent protocole décrit l'apPlication de la récupération de fluorescence tridimensionnelle après microscopie de photoblanchissement (3D-FRAP) pour élucider l'échange de molécules d'ARNm entre les cellules cardiaques. Il est important de noter que cette approche directe et non invasive d'imagerie en cellule vive permet de visualiser et de quantifier le passage à genoux jumelé de petits ARN marqués par fluorescence en temps réel, avec une résolution spatio-temporelle élevée. Les données obtenues par 3D-FRAP confirment une nouvelle voie de régulation des gènes intercellulaires, où les petits ARN agissent comme des molécules de signalisation dans le réseau intercellulaire.

Introduction

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Les petits ARN non codants sont des acteurs importants de la régulation des gènes cellulaires. Ces molécules sont composées de 20 à 25 nucleotides qui se lient à un ARNm cible spécifique, conduisant au blocage de la traduction ou à la dégradation 1 de l'ARNm. Le processus de réglementation des gènes entrepris par les petits ARN, tels que le miARN et l'ARNi, est un mécanisme hautement conservé qui a été trouvé dans de nombreuses espèces différentes 3 . En particulier, les molécules d'ARNm sont d'une importance cruciale pour une variété de processus physiologiques, y compris la prolifération, la différenci....

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Protocole

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Toutes les étapes de ce protocole impliquant des souris néonatales ont été effectuées selon les directives éthiques pour les soins des animaux du Centre médical de l'Université de Rostock.

1. Préparation des plats de culture cellulaire et du milieu pour la culture des cardiomyocytes

  1. Revêtir une plaque de culture cellulaire avec 0,1% de gélatine dans du PBS et incuber à 37 ° C pendant 4 h ou à 4 ° C pendant une nuit. Retirez la gélatine et laissez-la sécher sous un flux d'air laminaire stérile.
  2. Préparer un milieu de culture cellulaire composé de 50 mL de DMEM supplémenté avec 10% de sérum bovin fœtal (FBS) et 1....

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Résultats

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Ici, nous présentons la microscopie 3D-FRAP comme une technique non-invasive pour étudier la liaison de jonction entre le miRNA fluorescent dans les cardiomyocytes néonatals. Les cardiomyocytes isolés ont révélé le schéma typique de l'α-actinine striée et contenaient de grandes plaques de Cx43 le long des frontières des cellules ( figure 1A , pointes de flèches blanches), ce qui a permis le flux intercellulaire élevé des molécules. La pureté des cardiomyocyt.......

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Discussion

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Les miARN sont des acteurs clés de la physiologie cellulaire et ont été considérés comme des molécules de signalisation en utilisant entre autres les GJ comme voie d'échange intercellulaire 11 , 12 , 22 . Le protocole actuel présente une technique in vitro d'imagerie par cellule vivante pour caractériser ce transfert GJ-dependant en utilisant des ARNm fluorescents dans des grappes de cellules.

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Déclarations de divulgation

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Les auteurs ne déclarent aucun conflit d'intérêt.

Remerciements

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Ce travail a été soutenu par le Ministère fédéral de l'Education et de la Recherche Allemagne (FKZ 0312138A et FKZ 316159), l'État Mecklembourg-Poméranie occidentale avec les Fonds structurels de l'UE (ESF / IVWM-B34-0030 / 10 et ESF / IVBM-B35-0010 / 12), le DFG (DA1296-1) et la Fondation allemande des cœurs (F / 01/12). En outre, RD est soutenu par le programme FORUN du Centre Médical de l'Université Rostock (889001), la Fondation DAMP et le BMBF (VIP + 00240).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
souris NMRI néonatalesCharles River
Gelatin Sigma AldrichG7041Solution à 0,1 % dans PBS, PBS stérilisé
Pan BiotechP04-53500
Dulbecco´ ; s milieu modifiéPan BiotechP04-03550
Pénicilline/StreptomycineThermo Fisher Scientific15140122100 U/mL, 100µ ; g/mL
Sérum fœtal bovinPan BiotechP30-3306
Culture cellulaire plastiqueTPP
Kit d’isolement des cardiomyocytes primairesThermo Fisher Scientific88281
HBSSThermo Fisher Scientific88281inclus dans le kit d’isolement des cardiomyocytes primaires
Bleu trypanThermo Fisher Scientific15250061
miRIDIAN Dy547 marqué microARN MimicDharmaconCP-004500-01-05se dissoudre dans de l’eau libre d’ARNase, solution mère 20µ ; M
Phosphate de sodium monobasiqueSigmaS3139
Phosphate de sodium dibasiqueCarl RothT877.2
Chlorure de potassiumSigmaP9333
Chlorurede magnésium Serva28305.01
Succinate de sodiumCarl Roth3195.1
de trypsine/EDTA à 0,05 %MerckL2153
puits - Lames de chambre à fond en verreIBIDI80827couche avec une solution de gélatine à 0,1 %
Amaxa Nucleofector IILe programme LonzaG-009 a été utilisé pour l’électroporation  ;
LSM 780 ELYRA Système PS.1Zeiss
Excel AnticorpsMicrosoft
&alpha ;-actinineAbcamab9465dilution 1:200
Anticorps Connexin43Santa Cruzsc-9059dilution 1:200
chèvre anti-souris Alexa 594 anticorpsThermo Fisher ScientificA-11005dilution 1:300
chèvre anti-lapin Alexa 488anticorps Thermo Fisher ScientificA-11034dilution 1:300
Connexin43 siRNAThermo Fisher ScientificAM16708 ID158724concentration finale 250 nM
Near-IR Live/Dead Cell Stain KitThermo Fisher ScientificL10119
CellTrace Calcein Red-OrangeThermo ScientificC34851
DAPI coloration nucléaireThermo ScientificD1306
Solution 4 Logiciel

Références

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  1. Carthew, R. W., Sontheimer, E. J. Origins and Mechanisms of miRNAs and siRNAs. Cell. 136 (4), 642-655 (2009).
  2. Fire, A., Xu, S., Montgomery, M. K., Kostas, S. A., Driver, S. E., Mello, C. C. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature

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Mots-clés

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