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Article de méthode

Laser Microirradiation à l’étude In Vivo des réponses cellulaires aux dommages d’ADN simples et complexes

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DOI :

10.3791/56213

31 janvier 2018

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce protocole vise à décrire l’utilisation de laser microirradiation d’induire différents types de lésions de l’ADN, y compris relativement simples brins et lésions complexes, afin d’étudier l’ADN des dommages de signalisation et de réparation facteur Assemblée à sites de dommages in vivo .

Résumé

Dommages à l’ADN induit des réponses spécifiques de réparation et de signalisation dans la cellule, ce qui est essentiel pour la protection de l’intégrité du génome. Laser microirradiation est devenu un outil expérimental pour étudier la réponse (DDR) d’endommager ADN d' in vivo. Il permet en temps réel à haute résolution unicellulaire analyse dynamique macromoléculaires en réponse aux dommages causés par le laser limité à une région de SUBMICROMETRIQUES dans le noyau de la cellule. Cependant, diverses conditions de laser ont été utilisées sans appréciation des différences dans les types de lésions induites. En conséquence, la nature du dommage n’est souvent pas bien caractérisé ou contrôlés, causant des incohérences apparentes dans les profils de recrutement ou de la modification. Nous avons démontré que les conditions d’irradiation différentes (c'est-à-dire, différentes longueurs d’onde ainsi que différentes puissances d’entrée (irradiations) d’un laser femtoseconde (fs) (NIR) à proche infrarouge) induisaient assemblées distinctes de protéines DDR et de la réparation. Cela reflète le type de dommages à l’ADN produites. Ce protocole décrit comment titrage de puissance d’entrée du laser permet d’induction de différentes quantités et de la complexité des lésions de l’ADN, qui peut être facilement contrôlée par détection des dommages de base et réticulation, différentiel poly (ADP-ribose) (PAR) de signalisation, et réparation de voie spécifique les assemblys de facteur sur les sites de dommages. Une fois que les conditions de dommages sont déterminées, il est possible d’étudier les effets de la complexité des différents dommages et dégâts différentielle de signalisation ainsi que l’appauvrissement des facteurs en amont sur n’importe quel facteur d’intérêt.

Introduction

In Vivo Signalisation des dommages ADN, c’est pas bien comprise
In vivo, l’ADN est complexé avec des histones et d’autres facteurs à fibres de chromatine forme. Règlement de la structure de la chromatine est d’une importance primordiale pour le métabolisme de l’ADN. Par exemple, la variante de l’histone H2AX est phosphorylée par l’ataxie-télangiectasie muté (ATM) et d’autres kinases bicaténaires suivant rompt l’induction (ORD) et est important pour l’amplification du signal ORD dommages ainsi que fourniture d’un site d’amarrage pour d’autres facteurs. Propagation de choix de voie de signalisation et de réparation des dommages semb....

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Protocole

1. base cellulaire préparation

Remarque : Cette étape est pour détection par immunofluorescence standard du recrutement des protéines endogènes ou modification et l’utilisation d’une lignée de cellules exprimant une protéine recombinante fluorescent étiquetée de manière stable. Par exemple, les cellules épithéliales de rein marsupial de Potorustridactylus (PtK2) exprimant de manière stable EGFP-53BP11220-1711 ou TRF2-YFP ont été utilisés dans notre précédente étudient (Figure 1)32. Dans le premier cas, l’accent formant la région de 53BP1 (acide aminé 1220-1711) qui cont....

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Résultats

À l’aide de PtK2 cellules exprimant de manière stable EGFP-53BP11220-1711 ou TRF2-YFP, titrage de puissance d’entrée de laser a été réalisée afin de déterminer les conditions optimales pour leur recrutement (Figure 1)32.

Sites de laser de haute puissance d’entrée de dommages, le regroupement significatif des CPD (réticulation dommages typiquement généré par des dommages ultraviolet (UV)) ainsi que de la GFP-NTH1 DNA glycosylase q.......

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Discussion

Les avantages de l’utilisation de laser microirradiation pour recherche DDR sont :

1. il est possible d’induire différents types et quantités d’ADN dommages causés par les cassures simple brin pour dommages à l’ADN complexes, et pour détecter les réparation différents facteurs à l’ADN endommagent sites en ajustant les paramètres de l’irradiation laser. Il est également possible d’infliger des dommages à plusieurs reprises dans un même noyau de cellule afin d’évaluer les effets de trans

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions le Dr Akira Yasui à l’Université de Tohoku, Japon pour le plasmide d’expression de GFP-NTH1 et Dr. Eros Lazzerini Denchi au Scripps Research Institute, La Jolla, en Californie, pour la TRF2-YFP et EGFP-53BP11220-1711 plasmides d’expression. Ce travail a été soutenu par l’Air Force Office of Scientific Research (FA9550-04-1-0101) et la Fondation Beckman Laser Institut Inc. (pour M.W.B), la Ford Foundation Fellowship de la National Academy of Sciences (d’après) et NSF MCB-1615701 et CRCC CRR-17-426665 (de K. Y.).

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Ti :Sapphire NIR laser femtoseconde pulsé Mira-900Coherent Inc.Mira 900
  ;Carl ZeissAxiovert 200M
63X/1.4 Objectif NAZeissAPOCHROMAT Ph3  ;
Platine de rotation compacteNewport CorpPR50PP
Régulateur de températureWarnerTC-344B
Système de chauffageIbidi  ;10918
Système d’incubation de gazIbidi  ;11920
Compteur de puissance et d’énergie laser (RoHS)ChampcohérentMaxII-TOP  ;
ORCA-R2 Caméra CCD numériqueHamamatsuC10600
LSM 510 META Microscopes à balayage laserCarl Zeiss
100X/1.3 NA Zeiss Plan APOCarl Zeiss
35mm Quadrillé Plats  ;MatTekP35G-1.5-14-CGRD-D
PtK2 cellules épithéliales rénalesATCCCCL 56  ;
Cellules HeLaATCCCCL-2
DMEMLife Technologies11885-092
Milieu indépendant du CO2  ;Life Technologies18045-088
MEM avancé  ;Life Technologies12492-013complété par de la L-Glutamine, 4 % FBS
pénicilline/streptomycineFisher Scientific15140122
L-GlutamineFisher Scientific25030081
FBSOmega ScientificFB-02
Thymidine  ;  ; SIGMAT9250
sérum sans media  ;   ;   ;   ; (Milieu sérique réduit Opti-MEM I)Fisher Scientific11058021
Dimère de pyrimidine anti-cycolbutance (CPD) (souris)Kamiya Biomedical CompanyMC-062
Anti-XRCC1 (souris)Gene Tex IncGTX72311
Anti-53BP1 (lapin)Santa Cruz Biotechsc-22760
Anti-CtIP (lapin)Abcamab70163
Polymères anti-PAR (souris)Enzo Life SciencesBML-SA216-0100
Anti-PAR (lapin)Trevigen4336-BPC-100
Anti-TRF2 (souris)Novus Biological  ;NB100-56506
Anti 6-4PP (souris)Kamiya Biomedical
Anti-Rad21 (Lapin)  ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ; (pour la détection de la cohésine)généré dans le laboratoire
Anti-Rad51 (Lapin)Santa Cruz BiotechnologySC-8349
Anti-Ku70 (souris)  ; Novus BiologicalsNB100-102
8-oxiguanine  ;Trévigen, Inc.
Anti-PARP1  ; (Lapin)  ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;généré dans le laboratoireref 43
  ; Anti-hCAPG (Lapin)  ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ;   ; (pour la détection de condensine)généré en laboratoireref 42
Cy3 AffiniPure Donkey Anti-Rabbit IgG  ; Jackson ImmunoResearch Inc711-165-152
Âne Anti-Souris Alexa Fluor 488 IgGThermo Fisher ScientificA-21202
HiPerFect siRNA Réactif de transfectionQiagen301705
Lipofectamine 2000 ThermoFisher Scientific11668019
GFP-SMC1 lignée cellulaire stable   ;   ;   ;généré dans le laboratoireref 49  ;
Lignée cellulaire stable GFP-NEIL2générée dans le laboratoireref 54
Lignée cellulaire stable GFP-NTH1générée dans le laboratoireref 32
Plasmide GFP-SMC1généré dans le laboratoire
Plasmide GFP-Kugénéré dans le laboratoire
Anti-MDC1 (lapin)  ; Novus BiologicalsNB100&ndash ; 395
Anti-gH2AX (lapin)  ; Millipore07&ndash ; 164
EGFP-53BP1(1220-1711) Lignée cellulaire stable PtK2générée dans le laboratoireref 32
TRF2-YFP Lignée cellulaire stable PtK2générée dans le laboratoireref 32
DMSOSigmaD2650-100ML
Inhibiteur de PARGTrevigen4680-096-03
ADN&ndash ; Inhibiteur de PKcs  ; NU7026  ;Inhibiteur de l’ATM SigmaN1537
KU55933  ; Calbiochem118500
Olaparib  ;Apexbio TechnologyA4154
Paraformaldéhyde  ;MICROSCOPIE ÉLECTRONIQUE SCIENC MS100503-916 (EA)
Quantité Un Logiciel d’analyse 1-D Version 4.6.9Bio-RadSOFT-LIT-70-9600-Q1-469PC  ;Programme d’analyse d’images
Tableur ExcelMicrosoft
Triton X100Fisher ScientificBP151-500détergent
Solution saline tamponnée au phosphate (DPBS) de Dulbecco 10X sans calcium ni magnésiumFisher Scientific14200166diluer à 1X  ;
Microscope inversé de Yokomori (KY) KY KY KY KY KY KYKY de Berns de Berns

Références

  1. Altmeyer, M., Lukas, J. To spread or not to spread--chromatin modifications in response to DNA damage. Curr. Opin. Genet. Dev. 23 (2), 156-165 (2013).
  2. Ciccia, A., Elledge, S. J. The DNA damage response: making it safe to play with knives. Mol. Cell. 4....

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

R ponse aux dommages de l ADNcassure double brindommage aux basespoly ADP ribosylationmicroscopie confocalemarquage par prot ine fluorescentesynchronisation du cycle cellulaireinhibition des PARPimagerie sur cellules vivantes