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Article de méthode

Multiphotonique Time Lapse imagerie de visualiser le développement en temps réel : visualisation de la migration des cellules neurales de crête dans des embryons de poisson-zèbre

7.2K vues

DOI :

10.3791/56214

9 août 2017

Dans cet article

Résumé

Une combinaison des techniques optiques avancées de lecture avec excitation de fluorescence multi-photons longue longueur d’onde de laser a été mis en œuvre pour capturer l’imagerie haute résolution, en trois dimensions, en temps réel de la migration de la crête neurale en Tg (sox10:EGFP) et les embryons de poissons zèbres Tg (foxd3:GFP).

Résumé

L’oeil congénitales et des anomalies cranio-faciales reflètent les perturbations dans la crête neurale, une population nomade de cellules souches migratrices qui donnent lieu à nombreux types de cellules dans tout le corps. Comprendre la biologie de la crête neurale a été limité, ce qui reflète un manque de modèles génétiquement tractable pouvant être étudié in vivo et en temps réel. Poisson zèbre est un modèle de développement particulièrement important pour l’étude des populations de cellules migratrices, comme la crête neurale. Afin d’examiner la migration de la crête neurale dans le œil en voie de développement, une combinaison des techniques optiques avancées de lecture avec excitation de fluorescence multi-photons de grande longueur d’onde de laser a été mis en place pour capturer des vidéos de haute résolution, en trois dimensions, en temps réel de le œil en développement chez les embryons de poisson-zèbre transgéniques, nommément Tg (sox10:EGFP) et Tg (foxd3:GFP), comme sox10 et foxd3 ont été présentés dans plusieurs modèles animaux de réglementer une différenciation précoce crête neurale et représentent probablement des marqueurs de cellules neurales de crête. Les Time-lapse imagerie multiphotonique servait à discerner le comportement et les habitudes migratoires des deux populations de cellules neurales de crête contribuant au développement d’oeil au début. Ce protocole fournit des informations pour générer des vidéos time-lapse pendant la migration de poisson-zèbre de crête neurale, à titre d’exemple et peut être davantage appliqué pour visualiser le début du développement de nombreuses structures dans le poisson-zèbre et autres organismes modèles.

Introduction

Les maladies oculaires congénitales peuvent causer la cécité chez l’enfant et sont souvent dues à des anomalies de la crête neurale crânienne. Les cellules de la crête neurale sont des cellules souches transitoires qui proviennent du tube neural et forment de nombreux tissus dans tout le corps. 1,2,3,4,5 Les cellules de la crête neurale, dérivées du prosencéphale et du mésencéphale, donnent naissance à l’os et au cartilage des régions médiane du visage et du front, ainsi qu’à l’iris, à la cornée, au réseau ....

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Protocole

Le protocole décrit ici a été réalisé conformément aux directives pour le traitement sans cruauté des animaux de laboratoire établies par le Comité de l’Université du Michigan sur l’utilisation et le soin des animaux (UCUCA).

1. Collection d’embryons pour l’imagerie en accéléré

  1. Entre 15 et 21 heures, installez le poisson zèbre transgénique adulte mâle et femelle Tg (sox10 :EGFP) ou Tg (foxd3 :GFP) dans un bassin d’élevage divisé pour un accouplement par paires.
    REMARQUE : Les poissons Tg(sox10 :EGFP) et Tg(foxd3 :GFP), aimables cadeaux de Thomas Schilling et Mary Halloran, respectivemen....

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Résultats

L’imagerie de fluorescence multi-photons Time-lapse a généré une série de vidéos qui a révélé les patrons de migration des cellules de la crête neurale crânienne qui donnent lieu à des structures cranio-faciales et les segment antérieur de le œil dans le Tg (sox10:EGFP) et Tg (foxd3:GFP) lignes de poisson-zèbre. À titre d’exemple, sox10 -cellules neurales de crête positive entre 12 et 30 hpf migrent du bord du tube neural dans la région cranio-faciale (V.......

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Discussion

Les Time-lapse imagerie multiphotonique permet le suivi in vivo des populations de cellules migratrices et transitoire. Cette technique puissante permet d’étudier les processus embryonnaires en temps réel, et dans la présente étude, les résultats de cette méthode a amélioré les connaissances actuelles de la migration des cellules neurales de crête et le développement. Les études d’imagerie Time-lapse antérieures utilisent généralement laser confocal, microscopie à balayage. 29 ,

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Déclarations de divulgation

Ce travail a été soutenu financièrement par le biais de subventions accordées par le National Eye Institute du National Institutes of Health (K08EY022912-01) et Vision Research Core (P30 EY007003).

Remerciements

Les auteurs remercient Thomas Schilling pour gifting gentiment le poisson Tg (sox10:eGFP) et Mary Halloran pour gentiment gifting le poisson(foxd3:GFP) de Tg.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Réservoirs d’élevage avec séparateurs,AquaneeringZHCT100Crossing Tank Set (1,0 litre), Polycarbonate transparent avec couvercle et insert
M205 FA Combi-ScopeLeica Microsystems, CMS GmbHMicroscope à stéréofluorescence - FusionOptics et TripleBeam
SodiumChloride Millipore (EMD)7760-5KGDouble sac en PE. N° CAS 7647-14-5, n° CE 231-598-3
Chlorure de potassiumMillipore (EMD)1049380500Chlorure de potassium 99.999 Suprapur. N° CAS 7447-40-7, numéro CE 231-211-8.
Chlorure de calcium dihydratéFisher ScientificC79-500; 500 g. N° CAS 10035-04-8
Sulfate de magnésium (anhydre)Millipore (EMD)MX0075-1Flacon en polyéthylène ; 500 g. N° CAS 7487-88-9, numéro CE 231-298-2
Bleu de méthylèneMillipore (EMD)284-12Flacon en verre ; 25 g. Poudre, colorant biologique certifié
bicarbonate de sodiummillipore (EMD)SX0320-1Flacon en polyéthylène ; 500 g. Poudre, GR ACS. N° CAS 144-55-8, numéro CE 205-633-8
N-PhénylthiouréeSigmaP7629-25G>98 %. Numéro CAS 103-85-5, Numéro CE 203-151-2
DiméthylsulfoxydeSigmaD8418-500MLQualité Biologie moléculaire. Numéro CAS 67-68-5, numéro CE 200-664-3
Méthanesulfonate de tricaïneWestern Chemical Inc.MS222
Agarose à faible point de fusionISC BioexpressE-3112-25GeneMate Sieve GQA Agarose à faible point de fusion, 25 g
Chambre de bain ouverteWarner InstrumentsRC-40HPCouvre-couvercle en verre à profil élevé
Fisher Scientific12-545-102Verre de couverture circulaire. Graisse sous vide poussé de 25 mm de diamètre
Fisher Scientific14-635-5CTube de 2,0 lb. DOW CORNING CORPORATION
1658832 Plateforme d’échange
rapideWarner InstrumentsQE-1
Adaptateur de platine35 mm Warner InstrumentsSA-20LZ-AL16,5 x 10 cm
Leica Microsystems CMS GmbH
Mai Tai DeepSee Ti-Sapphire LaserSpectraPhysics
Laser Safety BoxLeica Microsystems CMS GmbH
Leica Application Suite X (LAS X)  ; LogicielLeica Microsystems CMS GmbH
Photoshop CS 6 Version 13.0 x64 LogicielAdobe
iMovie Version 10.1.4 LogicielApple
, , Flacon en polyéthylène Tricaine-S Microscope multiphotoniques TC SP5 MP

Références

  1. Barembaum, M., Bronner-Fraser, M. Early steps in neural crest specification. Sem Cell Dev Biol. 16, 642-646 (2005).
  2. Gage, P. J., Rhoades, W., Prucka, S. K., Hjalt, T. Fate maps of neural crest and mesoderm in the mammalian eye. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46 (11), 4200-....

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Réimpressions et autorisations

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