Article de méthode

Avantages de la thérapie de resynchronisation cardiaque dans un modèle asynchrone insuffisance cardiaque induite par Ablation de branche gauche et une stimulation rapide

DOI :

10.3791/56439

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11 décembre 2017

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1Department of Cardiology, Shanghai Institute of Cardiovascular Diseases, Zhongshan Hospital, Fudan University, 2Department of Echocardiography, Shanghai Institute of Medical imaging, Shanghai Institute of Cardiovascular Diseases, Zhongshan Hospital, Fudan University, 3Department of Cardiac surgery, Shanghai Institute of Cardiovascular Diseases, Zhongshan Hospital, Fudan University

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La mise en place d’un modèle de l’insuffisance cardiaque chronique asynchrone (HF) par stimulation rapide combiné avec ablation de branche gauche est présenté. Deux dimensions speckle tracking intégrale de temps vitesse aortique et d’imagerie sont appliqués pour valider ce modèle HF stable avec asynchronisme ventriculaire gauche et les avantages de la thérapie de resynchronisation cardiaque.

Résumé

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Il est maintenant bien établi que les patients d’insuffisance cardiaque (IC) avec bloc de branche gauche (IMEST) dérivent des avantages cliniques importants de thérapie de resynchronisation cardiaque (CRT), et IMEST est devenu un des indices importants pour la réponse de CRT. Le modèle conventionnel de HF induite par le tachypacing a plusieurs limites importantes, y compris l’absence d’IMEST stable et rapide renversement de dysfonction du ventricule gauche (VG) après l’arrêt de la stimulation. Par conséquent, il est essentiel d’établir un modèle optimal de HF chronique avec IMEST isolé pour étudier les avantages de la CRT. Dans la présente étude, un modèle canin de HF asynchrone induite par ablation de branche (LBB) gauche et 4 semaines de rapide (RV) une stimulation ventriculaire droite est mis en place. Le RV et auriculaires droite électrodes de stimulation (RA) par l’intermédiaire de l’approche de la veine jugulaire, ainsi que d’un LV épicardique électrode de stimulation ont été implantés pour la performance de la CRT. Présentées ici sont les protocoles détaillés de l’ablation de cathéter de radiofréquence (RF), rythme fils d’implantation et la stratégie de stimulation rapide. Électrogrammes intracardiaques et surfaces au cours de l’opération ont également été fournis pour une meilleure compréhension de l’ablation de LBB. Bidimensionnelle speckle tracking imagerie et intégrale de temps vitesse aortique (aVTI) ont été acquis afin de valider le modèle de HF stable chronique avec l’asynchronie LV et les avantages de la CRT. En coordonnant la contraction et l’activation ventriculaire, CRT en uniforme le travail mécanique de LV et rétabli la fonction de pompe LV, qui a été suivie d’une inversion de dilatation LV. En outre, l’étude histopathologique a révélé une importante restauration du cardiomyocyte diamètre et collagène volumiques (CVF) après que la performance de CRT, indiquant une histologique et cellulaire reverse remodelage induites par la CRT. Dans ce rapport, nous avons décrit une méthode réalisable et valide pour élaborer un modèle HF asynchrone chronique, qui a été adapté pour l’étude de CRT à retouche inverse suivant structurel et biologique.

Introduction

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HF chronique avancée est des principales causes de mortalité pour les différentes maladies cardiovasculaires. Un sous-ensemble de patients atteints d’insuffisance cardiaque congestive (ICC) développent également discoordination conduction ventriculaire qui aggrave les symptômes et le pronostic. CRT, également appelée stimulation biventriculaire, a été présenté comme une thérapie alternative pour ces patients pendant plus de 20 ans1,2. Malheureusement, environ 20 à 40 % des patients montrent des mauvaise réponse à la CRT. Depuis lors, de nombreuses études ont été effectuées afin de maximiser la CRT réponse3. Il est maintenant bien reconnu que patients atteints IMEST pourraient bénéficier plus de CRT que celles avec non-IMEST4, car un modèle IMEST provoque une plus grande magnitude de DYSSYNCHRONIE cardiaque en raison de l’asymétrie dans la liberté de mouvement du mur entre les parois latérales et septales . Pendant ce temps, des études récentes ont commencé à explorer les changements dans l’expression des gènes et remodelage moléculaires associés à CRT5. Accompagnant la retouche inverse structurelles induites par la CRT, réversion cellulaire et moléculaire à un niveau normal est de grand intérêt6. Par conséquent, il est essentiel d’établir un modèle optimal de CHF avec IMEST isolé pour étudier les avantages de la CRT.

Chronique, une stimulation ventriculaire rapide était autrefois utilisée pour produire des CHF dans un modèle canin. RV stimulation pouvait produire sans aucun doute retardé LV contraction comme un modèle de la contraction IMEST-comme. Toutefois, ce type d’asynchronie fonctionnelle avec un système de conduction intact ne peut pas imiter IMEST anatomique et ne constitue pas un bon modèle pour étudier la performance de CRT, dont l’essence est de coordonner avec facultés affaiblies activation électrique et contraction myocardique. Restauration rapide de la contractilité de la LV et récupération partielle des dimensions LV après cessation de la stimulation ont été également signalés à7.

Des études expérimentales ont incité IMEST chronique par ablation RF pour établir une contraction ventriculaire asynchrone8. Une combinaison de réduction de la fonction pompe global et régional travail mécanique non valide pourrait exacerber CHF en générant l’inefficacité cardiaque ainsi que le remodelage cardiaque dans les tissus, les niveaux cellulaires et moléculaires. Dans les coeurs IMEST, charge de travail est plus faible dans le septum et le plus élevé dans la paroi latérale de la LV. En conséquence, le remodelage cardiaque est plus prononcée dans la paroi latérale9. Le but de cette étude est : (i) pour faire avancer un modèle HF stable et chronique avec interventriculaire et intraventriculaire asynchronisme mécanique au moyen d’une stimulation rapide RV en combinaison avec l’ablation de la LBB ; (ii) pour confirmer dyssynchronous HF dans notre modèle et avantages CRT dans la coordination de la contraction de deux dimensions speckle tracking échocardiographie et aVTI ; et (iii) d’examiner préalablement retouche inverse cellulaires induites par la CRT.

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Protocole

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Quinze beagles mâles (12 à 18 mois, pesant environ 10,0-12,0 kg) ont été achetés et soumis à des expériences. Toutes les procédures ont été effectués en conformité avec le Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire publiée par le National Institutes of Health (Publication n° 85-23, 1996 révisée) et ont été approuvés par le Comité de protection de l’Animal à l’hôpital Zhongshan, Fudan Université. La figure 1 illustre le flux de travail schématique pour toutes les étapes du protocole.

1. pré-opératoire préparation et collecte de données de base

  1. Se raser les cheveux d’un membre postérieur pour la ponction veineuse. Mettre en place un accès veineux via la branche latérale de petite saphène de beagles expérimentale à l’aide d’un cathéter veineux (22 G, 0,9 mm × 25 mm). Injecter lentement le pentobarbital de sodium (30 mg/kg) par l’intermédiaire de la voie veineuse pour induire une anesthésie est confirmée par la perte des réflexes de cils. Donner le pentobarbital de sodium supplémentaire à la posologie de 10 mg/kg dans le cas de récupération de l’anesthésie au cours de la chirurgie.
  2. Sécuriser les membres à la table d’opération avec corde grossière et maintenir l’animal en position couchée.
  3. Couper les cheveux des extrémités de la branche et poitrine. Collez les électrodes de plomb branche aux extrémités de la branche et les électrodes précordiales plomb à six endroits désignés sur la paroi thoracique. Enregistrement de l’électrocardiogramme de base (ECG).
  4. Évaluation échocardiographique
    1. Collez les électrodes en plomb de l’échocardiographe aux membres de l’animal.
    2. Procéder à un examen échocardiographique standard. Parmi les quatre classiques apicales de la chambre (A4C) et deux apicale (A2C) vues de la chambre, obtenir le volume télédiastolique LV (préopératoire), volume télésystolique LV (LVESV) et la fraction d’éjection LV (FEVG) calculée à l’aide de la méthode de Simpson le biplan.
    3. Évaluer déformation longitudinale LV en deux dimensions speckle tracking d’imagerie. Effectuer speckle tracking sur le A4C, A2C et apicales axe long view (APLAX).
    4. Obtenir les courbes de la déformation longitudinale des trois vues apicales ci-dessus au niveau basal, mi-ventriculaire et apical dans chaque paroi (A4C : septum et la paroi latérale ; A2C : paroi antérieure et paroi inférieure ; APLAX : mur de cloison antérieure et postérieur). Le logiciel intègre automatiquement ces données pour produire une carte de l’oeil de boeuf de 17-segment, y compris les 6 segments au niveau basal (cloison, paroi latérale, paroi antérieure, paroi inférieure, cloison antérieure et paroi postérieure), 6 segments à la mi-ventriculaire niveau (cloison, paroi latérale, paroi antérieure, paroi inférieure, cloison antérieure et paroi postérieure), de 4 segments au niveau apical (cloison, paroi latérale, paroi antérieure, paroi inférieure) et un bouchon apical.
    5. Temps à souche PIC (TTP) est défini comme l’intervalle de temps depuis le début du complexe QRS jusqu’au point le plus bas de la courbe de déformation, ce qui indique la déformation longitudinale maximale. Calculer l’écart type du TTP 17 / segment (PSD) pour évaluer le synchronisme mécanique de LV.
    6. Enregistrer les vitesses de flux Doppler transaortic dans la vue de cinq chambre apicale. Mesurer et l’aVTI dans 3-4 battements consécutifs en moyenne.
  5. Orotrachéale intubation et ventilation mécanique
    1. Doucement, tirez sur la languette et maintenir l’extension de la langue en préparation pour l’intubation orotrachéale. Placer l’animal dans une position de « renifler ».
    2. Avancer lentement la lame courbe du laryngoscope jusqu'à ce que la pointe de la lame positionnée entre la base de la langue et l’épiglotte. Soulevez le laryngoscope vers le haut pour exposer les cordes vocales. Insérer une sonde endotrachéale dans la bouche et passez le tube au-delà des cordes vocales. Fixer le tube à la tête d’animal à l’aide de ruban adhésif.
    3. Ausculter les deux poumons pour confirmer le placement de la sonde endotrachéale appropriée comme en témoignent les bruits de respiration bilatérale et symétrique au cours de la ventilation à pression positive.
    4. Connectez l’extrémité extérieure du tube endotrachéal à un respirateur volume pédalé. Démarrer et maintenir une ventilation mécanique auxiliaire avec l’air ambiant. Régler la fréquence de respiration à 8 à 20 fois par minute avec un volume de marée à 8 à 15 mL/kg. Réglez les paramètres selon SpO2 mesurée par oxymétrie de pouls.

2. épicardique LV Implantation d’électrodes de stimulation

  1. Connectez les fils de plomb défibrillateur/moniteur cardiaque pour les électrodes de la peau, qui sont attachés aux membres. Avant de soigner l’animal avec la lévofloxacine 0,3 g par voie intraveineuse guttae.
  2. Après vous vous rasez les poils du cou et du thorax, stériliser la région thoracique antérieure et la région cervicale gauche avec iodophore et ouvrir les feuilles stériles.
  3. Thoracotomie
    1. Effectuer la thoracotomie d’épargne musculaire en position de décubitus latéral droit. Après administration de fentanyl par une perfusion continue de taux (0,01 mg/kg/h) par voie intraveineuse, inciser la peau transversalement à partir de la ligne parasternale gauche à la quatrième espace intercostal.
    2. Après dissection non tranchante des 3 couches de muscles thoraciques (pectoralis major, pectoralis minor, lisses), ouvrir la cavité pleurale gauche à la quatrième espace intercostal (entre le 4ème et 5ème côtes) par dissection pointue. Placer un rétracteur de côtes dans l’espace intercostal. Pack de gaze stérile immergée dans 0,9 % NaCl dans les lobes pulmonaires à protéger les poumons et de maintenir un champ de vision clair.
    3. Soigneusement Inciser le péricarde latéraux à l’aide de bistouri électrique. Ouvert le péricarde pour exposer entièrement la paroi latérale du VG avec séjour sutures (0-suture).
  4. LV, implantation de l’électrode de stimulation
    1. Suturer le LV unipolaire stimulation électrode vers le myocarde sur la paroi latérale du VG avec une maille à l’aide d’une suture 4-0. Faire un noeud délicat sur la suture pour empêcher les tissus myocardiques lacération de le œil.
    2. Connecter la borne tige de métal de l’électrode de stimulation à un câble de raccordement pour tester les paramètres de plomb. Après plomb satisfaisant les paramètres sont obtenus avec le seuil de stimulation < 2,0 V à 0,48 ms et plomb impédance < 2 000 Ω, légèrement tirer le câble d’électrode pour garantir une fixation ferme.
  5. Enlever les sutures de séjour et examinez soigneusement la zone de chirurgie afin d’éliminer une hémorragie active.
  6. Ferme du péricarde avec deux points de suture à l’aide de sutures 2-0/T. Retirez la gaze farcie et le rétracteur de côtes.
  7. Utilisez deux sutures pericostal (0-suture) pour approximer la 4ème et 5ème côtes. Fermer le fascia intercostal avec plusieurs points de suture à l’aide de sutures 2-0/T. Gonfler les poumons adéquatement à l’aide d’un ballonnet auxiliaire par intubation orotrachéale avant la dernière suture. Regarder à travers les lisses pour confirmer le développement normal des poumons.
  8. Repositionner les couches musculaires remis en place avec sans sutures. L’électrode de stimulation pénètre le péricarde, fascia intercostal et couches de muscles successivement par le biais de l’écart entre les noeuds de la chirurgie.
  9. Inciser la peau de la région cervicale gauche et disséquer le tissu sous-cutané jusqu'à l’aponévrose profonde à l’aide d’une pince courbe. Construire un tunnel sous cutané au-dessus le facia profonde de la région précordiale à la région cervicale gauche avec une pince droite.
  10. Tirer la goupille terminale du plomb à travers le tunnel de la région cervicale gauche à l’aide d’une pince droite. Couvrir l’axe terminal avec un manchon d’isolation, qui est ligaturé à l’aide de sutures 2-0/T. Le fil autour de la gaine à l’aponévrose de suture et incorporer localement le plomb au côté gauche du cou.
  11. Fermer le tissu sous-cutané et la peau des deux incisions thoraciques et cervicales à l’aide de sutures-0.
  12. Arrêter l’induction de l’anesthésie, quand l’animal est de prendre des respirations spontanées, débrancher le ventilateur de la sonde endotrachéale. Après que l’animal se remet de l’anesthésie, retirez l’intubation trachéale et la voie veineuse. Garder l’animal en observation jusqu’au rétablissement complet.
  13. Injecter par voie intramusculaire 800 000 U de pénicilline toutes les 12 h pendant 2 semaines après l’opération.

3. RA et RV Implantation d’électrodes de stimulation

  1. L’implant RA et RV stimulation électrodes 2 semaines après l’implantation d’électrodes LV, lorsque l’animal se remet de la thoracotomie. Effectuer l’opération dans la salle de cathétérisme cardiaque chirurgie équipée d’un appareil de radioscopie.
  2. Induire l’anesthésie comme à l’étape 1.1. Sécuriser les membres à la table d’opération et de maintenir l’animal en position couchée. Avant de soigner l’animal avec la lévofloxacine 0,3 g par voie intraveineuse guttae.
  3. Couper les cheveux des extrémités de la branche. Connectez les fils de sortie du Moniteur ECG pour les électrodes de la peau et coller les électrodes de la peau aux extrémités de la branche. Allumez le Moniteur ECG et sélectionnez plomb II intra-procédure de surveillance.
  4. Après le rasage des poils du cou, stériliser la région cervicale gauche avec iodophore et drapez le drap stérile. Administrer le fentanyl par une perfusion continue de taux (0,01 mg/kg/h) par voie intraveineuse pendant toute la procédure.
  5. Approche veineux
    1. Faire une petite incision verticale à proximité de ce qui précède enroulé sur le côté gauche de la zone cervicale. Par dissection, séparer le fascia pour exposer la veine jugulaire externe gauche. Séparer la veine des tissus conjonctifs soigneusement avec une pince de moustique.
    2. Doucement, remonter la veine à l’aide d’une pince courbée et passer deux sutures 2-0/T au-dessous de la veine. Attacher la suture distale.
    3. Soulevez la suture distale doucement et découper un petit trou juste au milieu de deux sutures avec des ciseaux de l’iris. À l’aide d’une pioche de veine, insérez le cordon en forme de J RA passif et active RV dans la veine jugulaire externe gauche.
  6. Implantation de plomb RV
    1. Une fois que le plomb RV a été avancé à l’oreillette droite faible ou la veine cave inférieure sous fluoroscopie, retirer le stylet de droit de la tête de RV. Une forme de J à la partie distale du stylet et remettre en place via le fil de RV.
    2. Avec l’aide du stylet incurvé, introduire le fil à travers la valve tricuspide et dans les voies de sortie. Retirer doucement la tête tant le stylet, permettant à la pointe de plomb pour prolapsus vers l’apex de RV.
    3. Remplacez le stylet de la courbe par une droite. Faire avancer le fil vers l’apex.
    4. Tester les paramètres de plomb avec le stylet retiré tout à mi-chemin. Paramètres satisfaisants comprennent un seuil de stimulation < 1,0 V à 0,48 ms, amplitude de l’onde R > 5,0 mV et plomb impédance < 2 000 Ω. Une fois les paramètres électriques acceptables sont obtenus, étendre l’hélice active, retirer le stylet et re-mesurer les paramètres.
  7. Implantation de plomb RA
    1. En gardant la tête RA dirigée vers l’atrium antérieur élevé, retirer lentement le stylet de droit, permettant le retrait de la tête préformée en forme de J avec sa pointe entrant dans l’appendice. On peut observer un mouvement de va-et-vient caractéristique de l’électrode avec activité auriculaire.
    2. Les paramètres satisfaisants incluent un seuil de stimulation < 1.0V à 0,48 ms, amplitude de l’onde P > 2,0 mV et impédance de plomb < Ω 2 000. De même, lorsque des paramètres acceptables sont obtenus, régler le jeu de tête et retirer le stylet.
  8. Après avoir vérifié la stabilité de ces deux fils, serrer la suture proximale à la veinotomie. Arrimer les deux fils à l’aponévrose profonde sous-jacente avec deux ou trois sutures 2-0/T autour des manches de suture. Il faut vérifier les paramètres électriques et la position les deux fils sous contrôle fluoroscopique après suture.
  9. Faire une poche de générateur d’impulsion près de l’entrée veineuse et dans un plan juste au-dessus de la couche aponévrotique et au-dessous de la graisse sous-cutanée. Créer la poche par dissection avec une pince courbe. Il doit être juste assez grand pour accueillir le générateur et le fils redondants.
  10. Nettoyez et séchez les broches de plomb. Couvrir la tige terminale du plomb auriculaire avec un manchon d’isolation et suture de la tête sur le plancher de la poche. Insérer le fil ventriculaire dans un générateur d’impulsions de stimulateur cardiaque et le serrer avec la broche du connecteur distale passé les vis du générateur.
  11. Placer le générateur dans la poche avec les câbles redondants enroulement sous l’appareil. Attacher le générateur jusqu'à l’aponévrose avec une suture de 2-0/T dans le trou de fixation dans l’en-tête du générateur. Effectuer l’examen radioscopique de tout le système.
  12. Après vérification de l’hémostase, fermer la poche et le fascia superficiel en couches à l’aide de sutures 2-0/T. Enfin rapprocher les bords de la peau avec 0-sutures et programmer le stimulateur à un mode OVO à l’aide d’une baguette de télémétrie.
  13. Pour les animaux du groupe fictif, implanter les cordons de LV et RV RA de manière similaire, mais avec aucune insertion de générateur.

4. LBB Ablation

  1. Procéder à l’ablation par cathéter sous la direction de fluoroscopie immédiatement après que RV et RA plomb implantation. Se raser les poils de la poitrine, le dos et la région inguinale droite. Maintenir l’animal en position couchée.
  2. Préparer un enregistreur électrophysiologique multicanaux pour simultanée ECG de surface et intracardiaque d’enregistrement, avec les paramètres de filtre de 30 à 400 kHz (bipolaire) ou 0,05-500 kHz (unipolaire) et une amplification du signal de 5 000 fois. Fixer l’électrode de retour sans fil à l’arrière et les électrodes de 12 dérivations standards aux membres et à la poitrine. Raccorder tous les fils à l’enregistreur électrophysiologique et enregistrer l’ECG à une vitesse de balayage de 100 mm/s.
  3. Approche veineuse et artériel
    1. Après désinfection systématique et drapés dans la région inguinale droite, faire une petite incision verticale à travers la peau. Par dissection, séparer le fascia afin d’identifier la veine fémorale droite et artère fémorale.
    2. Doucement, remonter la veine fémorale et placer deux sutures de séjour (2-0/T suture) sous la veine. Attacher la veine à l’extrémité distale. Effectuez la même manœuvre sur l’artère fémorale.
    3. Un peu ramasser de la veine fémorale et introduire une aiguille microponction proximal dans la veine entre les deux sutures. Tenez l’aiguille et insérer un embout souple (disquette en forme de J) Guide à travers l’aiguille.
    4. Lorsque suffisamment guidewire est passée dans la veine, retirer l’aiguille et faire avancer un dilatateur et gaine en combinaison (6-Fr) sur le guide dans la veine fémorale. Retirer le fil-guide et le dilatateur avec la gaine restant pour l’introduction du cathéter. Attacher une suture lâche autour de la veine proximale à la veinotomie avec la gaine veineuse en place.
    5. De même, insérez une gaine 7-Fr dans l’artère fémorale. Livrer un bolus de 100 U/kg sérum physiologique dilué l’héparine dans la gaine artérielle pour éviter la coagulation.
  4. Cartographie du côté droit de son potentiel de bundle
    1. Faire progresser un cathéter quadripolaire orientable 6-Fr dans la veine fémorale par la gaine veineuse. Branchez l’extrémité du cathéter à l’enregistreur électrophysiologique multicanal via le module d’entrée du cathéter par des câbles.
    2. Faire passer le cathéter dans l’oreillette droite et à travers la valve tricuspide jusqu'à ce qu’il est clairement dans le ventricule droit. Selon un droit antérieur oblique (RAO) 30° fluoroscopie, retirer le cathéter à travers l’orifice tricuspide jusqu'à ce qu’un potentiel auriculaire apparaît et devient plus grand. Un couple légèrement dans le sens horaire permet de garder les électrodes au contact de la cloison. Lorsque les potentiels auriculaires et ventriculaires sont peu près de même taille, une déviation biphasiques ou triphasiques apparaît entre eux, qui représente le côté droit de son bundle potentiel.
  5. Ablation et cartographie de gauche direction potentielle (LBP)
    1. Introduire un cathéter d’ablation orientable 7-Fr 4 mm-pointe dans l’artère fémorale par la gaine artérielle. Connectez l’extrémité du cathéter d’ablation au générateur HF et multi canaux enregistreur électrophysiologique par câbles.
    2. Passer le cathéter artériel marqués à travers la valve aortique et d’avancer à la LV dans une vue de 30° RAO. Détourner l’extrémité du cathéter vers le septum interventriculaire. Tenir l’électrode en contact étroit avec le septum.
    3. Selon une gauche antérieur oblique (LAO) 45° fluoroscopie, lentement retirer le cathéter le long de la cloison jusqu’au côté gauche que son potentiel bundle est enregistrée entre ECG auriculaire et ventriculaire, juste en dessous de la valve aortique. Puis enfoncez doucement la sonde le long de la cloison et manipuler la pointe afin d’identifier un LBP discret, qui est enregistrée sous l’aorte valve, typiquement de 1 à 1,5 cm inférieure à la côté gauche son bundle enregistrement site.
    4. Lorsque l’intervalle de potentiel-à-ventriculaire ECG est plus courts que l’intervalle HV et un A environ 10 ms / ratio ECG V de < 01:10 est observée, la LBP est identifié. La LBP à l’intervalle plus tôt de l’ECG ventriculaire (LBP-V) est généralement inférieure à 20 ms, ce qui pourrait réduire le risque d’un blocage complet A-V.
    5. Lorsqu’on atteint une position de LBP satisfaisante, l’ablation par cathéter de commencer avec un générateur HF, délivrant 500 kHz non modulée sinusoïdale d’énergie (puissance allant de 30 à 40 W). Réglez la puissance pour obtenir une température cible de 60 ° C à l’interface électrode-tissus. Si la température ne dépasse pas 50 ° C dans les 15 s, interrompre la livraison de l’énergie, de régler l’extrémité du cathéter et recommencer.
    6. Surveiller l’impédance en permanence pendant l’application de l’énergie. Une goutte d’impédance supérieure à 6-8 Ω lors de la livraison de l’énergie est considéré comme un signe de tissu bon contact et d’un chauffage adéquat.
    7. IMEST typique est définie par : un allongement de la durée QRS ; QRS positive dans des chenaux I, II, V5, V6 avec encoche onde R et négative en fils aVR, V1 ; et une perte de LBP ECG. S’il n’y a aucun changement dans la morphologie des QRS après 10 s, arrêter la livraison d’énergie et d’ajuster le cathéter pour trouver une nouvelle cible LBP. Quand une morphologie typique de LBBB QRS apparaît sur l’ECG de surface, poursuivre l’application de l’énergie pendant 60 à 90 s ou jusqu'à une hausse soudaine d’impédance.
    8. Arrêter la livraison d’énergie immédiatement dans le cas de bloc auriculo-ventriculaire complet (3rd grade) ou fibrillation ventriculaire (FV). Implémenter la défibrillation électrique rapidement chaque fois que VF se produit.
    9. Lorsqu’une morphologie LBBB QRS est obtenue, observer l’ECG de surface pour une période de stabilisation de 30 min. Si une morphologie normale de QRS réapparaît, répéter l’ablation susmentionné.
  6. Une fois la procédure d’ablation par cathéter est terminée, retirer les deux cathéters. Retirer la gaine veineuse et artérielle et faire rapidement des nœuds serrés sur les sutures proximales pour prévenir l’hémorragie.
  7. Après un examen attentif pour prévenir une hémorragie active, fermer l’aponévrose en couches à l’aide de sutures 2-0/T. Enfin, fermez la peau 0-suturer.
  8. Débranchez toutes les électrodes de l’animal et surveiller l’animal fréquemment jusqu'à la guérison complète de l’anesthésie. Injecter par voie intramusculaire 800 000 U de pénicilline toutes les 12 h pendant 1 semaine après l’opération.
  9. Ablation de LBB n’est pas effectuée pour le groupe fictif.

5. rapide rythme pour Induction HF

  1. Quand l’animal se remet de l’opération, le compte rendu la surface ECG pour confirmer une présence permanente d’IMEST 1 semaine plus tard. Ensuite programmer le stimulateur à un mode VVI à 260 battements par minute (bpm) à l’aide d’une baguette de télémétrie.
  2. Induire l’anesthésie (comme à l’étape 1.1) et programmer le stimulateur en mode OVO après 4 semaines de stimulation rapide.
  3. Effectuer l’échocardiographie pour évaluer la FEVG (en ce qui concerne l’étape 1.4). Si la FEVG diminue en dessous de 35 %, préparer l’animal pour des performances de CRT. Si la FEVG est toujours supérieure à 35 %, de soumettre l’animal à RV rapide rythme nouveau de reprogrammer le stimulateur cardiaque au mode VVI à 260 bpm.
  4. Effectuer l’échocardiographie toutes les 2 semaines jusqu'à ce que la FEVG est inférieure à 35 %. Une fois que la réalisation de l’objectif de la FEVG, mettre fin à une stimulation rapide RV et préparer pour stratégie de CRT.
  5. Animaux du groupe fictif n’est pas soumises à une stimulation rapide.

6. Performance de thérapie de resynchronisation cardiaque

  1. Diviser les animaux avec HF dans le groupe témoin et le groupe CRT au hasard. Pour le groupe témoin de HF, laissez l’animal survivre un autre 8 semaines sans intervention. Pour le groupe de la CRT, dà CRT performances via la stimulation biventriculaire.
  2. Après l’induction de l’anesthésie (comme à l’étape 1.1), garder l’animal en position couchée en sécurisant les membres vers une table d’opération. Avant de soigner l’animal avec la lévofloxacine 0,3 g par voie intraveineuse guttae. Se raser les cheveux de la nuque, stériliser la région cervicale gauche et drapez le drap stérile.
  3. Après administration de fentanyl par une perfusion continue de taux (0,01 mg/kg/h) par voie intraveineuse, faire une petite incision verticale immédiatement à côté de la précédente blessure sur le côté gauche du cou. Par dissection, séparer le fascia pour isoler le générateur d’impulsions et stimulation conduit (y compris les fils de RA, LV et RV) avec aucune blessure.
  4. Dégager la tige terminale du plomb de la RV dans l’en-tête de la génératrice en desserrant les vis. Soigneusement couper les sutures serrés sur les fils de LV et RA et déboucher les broches des bornes. Nettoyez les broches de tous les prospects en immergeant dans de l’éthanol et à l’aide de gaze sèche successivement.
  5. Insérez les cordons RA, RV et LV correctement dans l’en-tête d’un générateur d’impulsions de CRT et serrer les vis. Agrandir la poche par dissection d’être en forme pour le nouveau générateur. Placer le générateur dans la poche et attachez le générateur vers le fond de la poche avec une suture de 2-0/T.
  6. Vérifier la poche pour l’hémostase. Fermez la poche et le fascia superficiel en couches à l’aide de sutures 2-0/T. Puis fermez la peau 0-suturer.
  7. Programmation du stimulateur cardiaque à un mode DDD avec un délai auriculo-ventriculaire (AV) est une valeur de 70 ms et interventriculaire retard (VV) de Mme 0 examiner l’animal fréquemment jusqu'à ce que de l’anesthésie. Injecter 800 000 U de pénicilline par voie intramusculaire toutes les 12 h pendant 1 semaine.
  8. Après 8 semaines de performance de la CRT, effectuez de nouveau l’échocardiographie transthoracique concernant les animaux de tous les groupes (comme dans l’étape 1.4).

7. sacrifier les animaux et faire une analyse histologique

  1. Fixer les branches de l’animal à la table d’opération sous anesthésie générale. Injecter 100 mg/kg de pentobarbital intraveineux pour effectuer des sacrifices d’animaux. Assurer la mort animale par absence de battements de coeur et le mouvement de respiration.
  2. Inciser la peau de la région cervicale gauche. Avec une combinaison de dissection tranchant et contondant, gratuit le générateur et les fils. Débranchez tous les câbles de la génératrice en desserrant les vis.
  3. Sans les fils de tissu sous-cutané progressivement et remonter jusqu’au point d’entrée veineux. Identifier les manches de suture et couper toutes les sutures de rétention. Retirer l’hélice fixation active du plomb RV pour faciliter le retrait.
  4. Pratiquez une incision transversale au quatrième espace intercostal depuis la ligne sternale jusqu'à la ligne claviculaire gauche. Gratuit le plomb LV de l’aponévrose précordiale, le long du tunnel sous-cutané, jusqu'à la région cervicale gauche, avec une pince droite.
  5. Après dissection non tranchante des muscles thoraciques, ouvrir la cavité pleurale gauche. Placer un rétracteur de côtes dans l’espace intercostal. Ouvrez complètement le péricarde.
  6. Couper la suture sur l’électrode de plomb LV épicardique. Séparer l’électrode du cœur en coupant un petit morceau d’enroulement de tissu myocardique sur l’électrode.
  7. Fend les chambres droite ainsi que le septum. Détacher les électrodes RA et RV du myocarde à l’aide de la dissection fois tranchant et contondant. Habituellement, les extrémités des électrodes sont encapsulées par des tissus fibreux et myocardiques. Couper les tissus environnants du cœur si nécessaire.
  8. Passer un stylet de droit à l’extrémité de chaque fil à travers la broche terminale. Extraire le RV et RA mène de l’entrée veineuse et retirer le plomb LV le tunnel sous-cutané. Si les câbles ne peuvent être tirés en raison d’adhérences fibreuses, dépouiller les adhérences fibreuses le long du conduit par dissection par clivage.
  9. Tirez doucement le cœur et mousquetonnez le tissu cardiaque à proximité de l’aorte à exciser le cœur. Placer le coeur dans un bol stérile et rincer plusieurs fois avec le sérum physiologique. Tranchez le myocarde transmural de la paroi latérale de la LV pour analyse histologique.
  10. Difficulté des tissus myocardiques avec formol tamponné, puis déshydrater et incorporez à la paraffine. Après le découpage en sections épaisses de 5 µm, Déparaffiner les échantillons et coloration à l’hématoxyline et éosine (HE) et Masson trichrome.
  11. Mesurer les diamètres cellulaires provenant des sections longitudinales colorées avec HE. Exprimer CVF en pourcentage de la surface tachée collagène divisé par zone tissulaire totale dans les sections de coloration trichrome de Masson. Sélectionnez et compter cinq champs haute puissants (400 x) au hasard pour chaque section. Prendre des photos numériques et les analyser à l’aide d’un système d’analyse des images numériques haute résolution.

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Résultats

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Ablation de LBB réussie :

La figure 2 représente un ECG de surface et intracardiaque typique au cours de l’ablation par cathéter. La moyenne mesurée de LBP-V est 18,8 ±2, 8 ms, qui était plus courts que l’intervalle de référence H-V environ 10 ms (28,8 ms ±2.6, p < 0,01). La durée QRS prolongée de 59,2 ±6.8 ms à 94,2 ±8.6 ms (p < 0,01) après ablation de LBB. La perte de l’ECG LB...

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Discussion

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Cardiomyopathie dilatée constitue une cause majeure de CHF, qui se caractérise par une dilatation ventriculaire, dysfonction systolique avec FEVG réduite et des anomalies du remplissage diastolique11. Puisque chronique tachycardie induite par la HF est une condition clinique reconnue, une stimulation rapide de l’oreillette ou le ventricule pendant au moins 3 à 4 semaines sert d’un modèle animal fréquemment utilisé pour induire CHF11. Les modifications hémodynamiques se prod...

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Déclarations de divulgation

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Les auteurs déclarent qu’ils n’ont aucun intérêt financier concurrentes.

Remerciements

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Ce travail est financé par la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (81671685) et de Shanghai Commission de la santé et de planification familiale (no 201440538)

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Système de cathéter iv fermé (0,9 mm× ; 25mm)Becton Dickinson Medical5264442Utilisé comme aiguille de rétention veineuse
Pentobarbital de sodiumSigma-Aldrich Company130205Pour l’anesthésie
Tondeuse pour animaux de compagnieWuhan Shernbao pet supplies Co., Ltd.PGC-660Pour le rasage des cheveux
ÉlectrocardiographeInstrument électronique médical photoélectrique Shanghai Co., Ltd.ECG-6511Pour l’enregistrement de l’électrocardiogramme
ÉchocardiographeGE-Vingmed Ultrasound CompanyVIVID E9Pour l’évaluation échocardiographique
Logiciel EchoPACGE healthcareVersion201Analyse hors ligne
LaryngoscopeShanghai Medical Instrument Co., LtdIntubation orotrachéale
Tube endotrachéalSIMS Portex Inc, Royaume-Uni274093Intubation orotrachéale
Respirateur à cycle de volumeNewport CorporationC100Ventilation artificielle
HeartStart XL Défibrillateur/moniteurPhilips Medical SystemsM4735AMoniteur d’électrocardiogramme pendant le fonctionnement
Teinture de bromure de benzalkoniumShanghai Yunjia Pharmaceutical Co., Ltd.H31022694Utilisé pour la désinfection de la peau
Écarteur de côtesShanghai Medical Instrument Co., Ltd.Pour la thoracotomie
4-0 sutureShanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., LTD.24L1005Suture de l’électrode épicardique VG
2-0/T sutureShanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., LTD.11M0505Suture des fils de stimulation, du fascia, des vaisseaux, etc.
0-sutureShanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., LTD.11P0501Suture cutanée
poudre de pénicillineNorth China Pharmaceutical Co., Ltd.
appareil à rayons X DSAPhilipsAllura Xper FD10à rayons X pour fluoroscopie
Électrode de stimulation LVMedtronic, Inc.LBT 4965
RV Électrode de stimulationSt. Jude MedicalTendril 1888
RA Électrode de stimulationSt. Jude MedicalIsoFlex 1642T
Générateur d’impulsions de stimulateur cardiaqueMedtronic, Inc.Enpulse E2DR01Pour la stimulation rapide du VR Générateur d’impulsions
CRTSt. Jude MedicalAnthem PM 3212Pour les performances CRT
Enregistreur électrophysiologique multicanalGE Medical Systems2003232-004Pour électrogramme de surface et intracardiaque
Module d’entrée de cathéterGE Medical Systems301-00202-08Commutateurs multipolaires pour la stimulation ou l’enregistrement
Générateur de radiofréquenceJohnson-Johnson CompanyST-4460Pour la distribution de courant RF
Électrode de retour sans filCovidienE7509Pour la formation de circuits de courant
Gaine Cordis 6-FrJohnson-Johnson Company504-606XAccès pour cathéter de cartographie
Cordis 7-Fr GaineJohnson-Johnson Company504-607XAccès pour cathéter de cartographie et d’ablation
Cathéter quadripolaire 6-FrJohnson-Johnson CompanyF6QRA005RTCathéter de cartographie Cathéter
d’ablation orientable 7-Fr Cathéter d’ablation orientable à pointe de 4 mmSt. Jude Medical402823Cathéter de cartographie et d’ablation
Prucka Cardio-Lab® ; 2000GE Medical Systems6.9.00.000Progiciel pour l’enregistrement par électrogramme
HeparinHaitong Pharmaceutical Co., Ltd160505Anticoagulant lors de l’ablation par cathéter
Système d’analyse d’images numériquesLeica MicrosystemsQwin V3Pour l’analyse histologique
F6034105

Références

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