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Article de méthode

Phthalic Acid Ester-liaison ADN aptamère sélection, caractérisation et Application d’un Aptasensor électrochimique

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DOI :

10.3791/56814

21 mars 2018

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Un protocole de sélection de in vitro et la caractérisation de l’acide phtalique spécifique au groupe ester-liaison ADN aptamères est présenté. L’application de l’aptamère sélectionné dans un aptasensor électrochimique est également incluse.

Résumé

Phthalic acid esters (PAEs) areone des grands groupes de polluants organiques persistants. La détection de groupes spécifiques de PAEs est hautement souhaitée en raison de la croissance rapide des congénères. Aptamères ADN ont été appliquées de plus en plus en tant qu’éléments de reconnaissance sur les plates-formes de biocapteur, mais en sélectionnant aptamères pour atteindre les cibles hautement hydrophobes de petites molécules, telles que PAEs, sont rarement rapporté. Cet ouvrage décrit une méthode axée sur le talon conçue pour sélectionner les aptamères ADN spécifiques à un groupe de PAEs. Le groupement aminé fonctionnalisé phtalate de dibutyle (DBP-NH2) comme la cible de l’ancre a été synthétisée et immobilisée sur les perles de l’agarose époxy-activé, permettant d’afficher le groupe ester phtalique à la surface de la matrice de l’immobilisation, et par conséquent, le choix des liants spécifiques à un groupe. Nous avons déterminé les constantes de dissociation des candidats aptamère par réaction en chaîne de polymérisation quantitative couplée avec séparation magnétique. Les affinités relatives et la sélectivité des aptamères à autres PAEs ont été déterminées par les essais concurrentiels, où les candidats aptamère ont été préalablement délimitées à la DBP-NH2 attaché billes magnétiques et rejetés dans le surnageant après incubation avec la PAEs testée ou autres substances interférentes potentiels. L’analyse concurrentielle a été appliquée parce qu’il a fourni une comparaison facile affinité entre PAEs qui n’avait aucun groupes fonctionnels pour l’immobilisation de la surface. Enfin, nous avons démontré la fabrication d’un aptasensor électrochimique et utilisé pour détection ultrasensible et sélective de phtalate de 2-éthylhexyle. Ce protocole prévoit des idées pour la découverte d’aptamère d’autres petites molécules hydrophobes.

Introduction

Ainsi que le développement économique rapide, accélération de l’industrialisation et la construction urbaine, pollution de l’environnement est plus sévère que jamais. Les polluants environnementaux typiques comprennent les ions de métaux lourds, toxines, antibiotiques, pesticides, perturbateurs endocriniens et les polluants organiques persistants (POP). En plus des ions métalliques et des toxines, autres polluants sont de petites molécules qui sont souvent constituées d’une variété de congénères. Par exemple, la pop plus toxiques comprennent des hydrocarbures aromatiques polycycliques (HAP), les éthers biphényles polybromés (PBDE), des polychlorodibenzo-p-dioxines (PC....

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Protocole

1. Bibliothèque et de conception d’amorce et de synthèse

  1. Concevoir la bibliothèque initiale et les amorces.
    Bibliothèque (piscine0) : 5'-TCCCACGCATTCTCCACATC-N40-CCTTTCTGTCCTTCCGTCAC-3'
    Avant l’amorce (FP) : 5'-TCCCACGCATTCTCCACATC-3'
    Phosphorylée apprêt inverse (PO4- RP) : 5'-PO4- GTGACGGAAGGACAGAAAGG-3'
  2. Synthétiser la piscine0, FP et PO4- RP en utilisant le standard phosphoramidite chimie18,19,20et purifier tous les ADN par standard chromatographie liquide haute performance....

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Résultats

Nous avons conçu et synthétisé le groupement aminé fonctionnalisé de phtalate de dibutyle (DBP-NH2) comme cible d’ancrage (Figure 1F). Ensuite, nous avons effectué la sélection d’aptamère ADN du PAEs à l’aide de DBP-NH2 comme la cible de l’ancre et en suivant la méthode axée sur l’immobilisation de cible classique (Figure 2). À chaque tour, un pilote PCR a été réalisée à l’aide de la PAGE dénaturée afin d’op.......

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Discussion

Un des avantages exceptionnels d’aptamères sont qu’ils sont identifiés par le biais de la méthode in vitro SELEX, tandis que les anticorps sont générés via in vivo immunoreactions. Par conséquent, aptamères sont sélectionnables avec spécificité de cible souhaitée dans des conditions expérimentales bien conçues, alors que les anticorps se limitent aux conditions physiologiques.

Pour faciliter la séparation des séquences liées des séquences gratuits, SELEX modifié plusieurs ont.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrente.

Remerciements

Nous sommes reconnaissants pour le soutien financier de la Fondation nationale des sciences naturelles (21675112), projet clé du plan sciences et technologies de la Commission de l’éducation de Pékin (KZ201710028027) et Yanjing jeune savant programme de Capital Normal University.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
UV-2550Protocole Shimadzu, Japon, section 3.8.2
Thermocycleur d’ADN Engnine, PTC0200BIO-RADsection 3.5.1.2 et 3.5.2
C1000 TouchBIO-RADsection 5.3.6 et 6.3
VMP3 Potentiostat multicanalBio-Logic Science, Claix, Francesection 7.4, 7.8 et 7.11
Sepharose 6Bactivé par l’époxyGE Healthcare (Piscataway, NJ, États-Unis)10220020billes d’argarose, section 2.3 et 3.3
Dynabeads M-270 billes magnétiques à acide carboxyliqueInvitrogen, États-Unis420420section 5.2. et 5.3
Premix Taq Hot Start VersionTakara, Dalian, ChineR028Apolymérase, section 3.5.1.1
PARAFILM Membrane d’étanchéitéBemis, États-UnisPM-996section 3.6.5
Lambda ExonucleaseInvitrogen, États-UnisEN0561section3.7.1.2.Le tampon de réaction 10 × est fourni avec l’exonucléase &lambda ; par le fournisseur.
Dr. GenTLE
Support de précipitation
Takara, Dalian, Chine9094section 3.6.2 et 3.8.1
UNIQ-10 PAGE Kit de récupération d’ADNSangon Biotech (Shanghai)B511135section 4.2
SYBR Gold colorant de gel d’acide nucléiqueInvitrogen, États-Unis1811838colorant d’acide nucelique, section 3.5.1.5
SYBR Premix Ex Taq IITakara, Dalian, ChineRR820Amélange de polymérase contenant de la polymérase et des dNTP, section 5.3.5
Acide 2-(N-morpholino)éthanesulfonique (MES)Sigma-AldrichCAS : 1132-61-2section 5.2.1
1-éthyl-3-(3-diméthylaminopropyl) chlorhydrate de carbodiimide (EDC)Invitrogen, USACAS : 25952-53-8section 5.2.2
N-hydroxysuccinimide (NHS)Sigma-Aldrich6066-82-6section 5.2.3
mercaptohexanol (MCH)Sigma-AldrichCAS : 1633-78-9section 7.7
Électrode d’orShanghai ChenhuaCHI101section 7.4. - 7.11
tris(2-carboxyéthyl) chlorhydrate de phosphine (TCEP)Sigma-AldrichCAS : 51805-45-9section 7.5
O-(2-Mercaptoethyl)-O'-methyl-hexa-(ethylene glycol)Sigma-AldrichCAS : 651042-82-9section 7.7
phtalate de diéthylhexyle (DEHP)Institut national de métrologie, ChineCAS : 117-81-7section 7.11
Tween 20Sigma-AldrichCAS : 9005-64-5polyoxyéthy-lène(20) monolaurate de sorbaitan
Triton X-100Sigma-AldrichCAS : 9002-93-1agent tensioactif non ionique
PBSSigma-AldrichP536810 mM tampon phosphate contenant 1 M de NaCl, pH 7,4
,

Références

  1. Vorkamp, K., Riget, F. F. A review of new and current-use contaminants in the Arctic environment: Evidence of long-range transport and indications of bioaccumulation. Chemosphere. 111, 379-395 (2014).
  2. Net, S., Sempere, R., Delmont, A., Paluselli, A., Ouddane, B.

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