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Article de méthode

Création d’un modèle géométrique structurellement réaliste par éléments finis d’un Cardiomyocyte pour étudier le rôle de l’Architecture cellulaire en biologie des systèmes Cardiomyocyte

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DOI :

10.3791/56817

18 avril 2018

Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit une nouvelle méthode pour créer un modèle par éléments finis spatialement détaillée de l’architecture intracellulaire des cardiomyocytes de microscopie électronique et d’images de microscopie confocale. La puissance de ce modèle dans l’espace détaillé est démontrée à l’aide d’études de cas en signalisation calcique et la bioénergétique.

Résumé

Avec l’avènement des trois dimensions (3D) technologies d’imagerie telles que la tomographie électronique, serial-îlot balayage, microscopie confocale, microscopie électronique et la communauté scientifique a accès sans précédent aux grands ensembles de données au micromètre sous résolution qui caractérisent le remodelage architectural qui accompagne les changements dans la fonction cardiomyocyte sain ou malade. Cependant, ces ensembles de données ont été sous-utilisées pour enquêter sur le rôle de l’architecture cellulaire se transformant en fonction du cardiomyocyte. Ce protocole vise à décrire comment créer un modèle par éléments finis précis d’un cardiomyocyte à l’aide de la microscopie électronique à haute résolution et des images de microscopie confocale. Un modèle détaillé et précis de l’architecture cellulaire a un potentiel important d’offrir de nouvelles perspectives sur la biologie du cardiomyocyte, plus que peuvent recueillir des expériences seuls. La puissance de cette méthode réside dans sa capacité à fusionner des informations provenant des deux modalités d’imagerie disparates de l’ultrastructure du cardiomyocyte pour développer un modèle unifié et détaillé de la cardiomyocyte. Ce protocole décrit les étapes pour intégrer la tomographie électronique et des images de microscopie confocale de cardiomyocytes mâles adultes de rat Wistar (nom d’une race spécifique de rat albinos) d’élaborer un modèle de moitié-sarcomère par éléments finis de la cardiomyocyte. La procédure génère un modèle éléments finis 3D qui contient une description précise, haute résolution (sur l’ordre de ~ 35 nm) de la distribution des mitochondries, des myofibrilles et des grappes de récepteurs de la ryanodine qui libèrent du calcium nécessaire pour cardiomyocyte contraction du réseau réticulaire sarcoplasmique (SR) dans le myofibrillaire et le compartiment cytosolique. Le modèle généré ici comme une illustration n’intègre pas les détails de l’architecture de tubules transverses ou le réseau réticulaire sarcoplasmique et est donc un modèle minimal de la cardiomyocyte. Néanmoins, le modèle peut déjà s’appliquer dans les enquêtes basées sur des simulations dans le rôle de structure cellulaire en bioénergétique de signalisation et mitochondrial calcium, qui est illustrée et discutées à l’aide de deux études de cas qui se présentent après la Protocole détaillé.

Introduction

Couplage excitation-contraction (ECC) dans le coeur se réfère à l’important et complexe de couplage entre l’excitation électrique de la membrane du cardiomyocyte et la contraction mécanique ultérieure de la cellule au cours de chaque battement cardiaque. Des modèles mathématiques ont joué un rôle clé dans le développement d’une compréhension quantitative des processus biochimiques liées entre elles qui régulent le potentiel d’action1, calcium cytosolique,2,3de bioénergétique, de signalisation et suivantes génération de la force contractile. Ces modèles ont prédit avec succès les changements de la ....

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Protocole

Toutes les méthodes décrites ici ont été approuvés par l’Université d’Auckland Animal Ethics Committee et la University of California San Diego Institutional Animal Care et le Comité de l’urbanisme, où le protocole de tissus a été développé à l’origine.

1. préparation expérimentale

  1. Préparer les solutions de 0,15 M et 0,3 M sodium cacodylate tampons à pH 7,4 selon le tableau 1.
  2. Préparer le fixateur de glutaraldéhyde (glutaraldéhyde à 2,5 %, 2 % de paraformaldéhyde (PFA) + 0,2 % l’acide tannique dans le tampon de cacodylate de sodium de 0,15 M à pH 7,4) à l’aide de composants énumérés au tableau 1....

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Résultats

Figure 2 à la Figure 7 fournit des résultats représentatifs de plusieurs étapes clés dans le présent protocole : (i) visualisation et réorientation des blocs de tissus pour des vues transversales microscopie électronique ; (ii) générant une pile d’image de microscopie 3D ; (iii) segmentation subcellulaire ultrastructure des organites d’intérêt ; (iv) la génération d’un maillage éléments finis à l’aide d’iso2mesh ; (v) simulant un.......

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Discussion

Le protocole ci-dessus donne un aperçu des étapes clés pour générer un modèle géométrique de nouveaux éléments finis de l’ultrastructure du cardiomyocyte. La méthode permet aux modalités de calcul de fusion des différents microscopes (ni, en principe, autres données) à développer un modèle de calcul plus complète du cardiomyocyte dynamique qui inclut des détails de l’architecture cellulaire spatiale. Il n’y a actuellement aucun autre protocole disponible pour créer un tel modèle d’un cardiomyocyte.

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont aucun intérêt financier concurrentes.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la Royal Society de New Zealand Marsden vite commencer Grant 11-LABNT-184, la subvention de recherche de programme de Science frontières humaines RGP0027/2013 et l’australien recherche Conseil découverte projet Grant DP170101358.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Materials
Chlorure de sodiumSigma-Aldrich746398
Chlorure de calciumSigma-AldrichC8106
Chlorure de magnésiumSigma-AldrichM2393
Bicarbonatede sodium Sigma-AldrichS5761
Chlorurede potassiumSigma-AldrichP5405
DextroseSigma-AldrichD9434
Hydroxyde de sodiumSigma-AldrichS8045
ProbénécideSigma-AldrichP8761
2,3-Butanedione MonximeSigma-AldrichB0753
25 % Glutaraldéhyde EM Grade (flacon de 500 ml)Merck354400-500ML
ParaformaldéhydeSigma-AldrichP6148
Acide tanniqueSigma-Aldrich403040-500G100g
Cacodylate de sodiumSigma-AldrichC0250
Solution saline tamponnée au phosphate (PBS)Sigma-AldrichP4593
Tétroxyde d’osmiumSigma-Aldrich75632-10ML4 % dans l’eau, flacon de 5 ml (ou flacon de 10 ml également disponible)
Acétate d’uranyleEM Sciences22400Bouteille de 25g
Ferrocyanure de potassiumMerck Millipore104973
Bleu de toluèneSigma-AldrichT3260
BoraxSigma-AldrichS9640également appelé borate de sodium
ÉthanolSigma-Aldrich792780Dilué à différents pourcentages avec eau pure
AcétoneEM SciencesRT10017
Kit résineEM Sciences14040ACM Durcupan fonctionne bien
Acide chlorhydriqueSigma-AldrichH98921Solution normale
Équipement
UltramicrotomeLeicaEM UC7
Électron de transmission microscopeThermoFisher ScientificTecnai F30http://www.leica-microsystems.com/
Support d’autoclaveProscitechT752
TubeBioStrategy75831-346pour appareil de perfusion de langendorff, un diamètre de 3 mm est recommandé mais pas indispensable
Robinets d’arrêtSDRQP13813pour tube de langendorff ; le produit n’est qu’un exemple, l’utilisateur peut sélectionner n’importe quel
pinces de support d’autoclaveProscitechT715
Seringues en plastiqueSDRQPC1108pour solutions sur appareil de Langendorff
Suture en soie de canulation, 7-0TeleFlex15B051000pour attacher le cœur sur l’appareil de langedorff
CanuleFabriqué à partir d’une aiguille en acier de 3 mm de diamètre extérieur Tapis de
boîte de Pétri en caoutchoucProscitechH068à utiliser comme planche à découper lors de la dissection à cœur fixe
Lames de rasoirProscitechL056pour couper le cœur fixe en petits blocs pour le traitement EM
Bouteilles en verreBioStrategy89000-236pour stocker des solutions pendant la fixation et le traitement des tissus pour
les béchersBioStrategy213-0477pour stocker des solutions temporairement et pendant la perfusion
Flacons à scintillationBioStrategy548-2170pour échantillons de tissus pendant le traitement EM
Kit de dissectionProscitechT161pour la dissection animale
Filtres à seringueProscitechWS3-02225Spour la purification de l’acétate d’uranyle
pâtisserie en aluminium/feuille d’argentDe n’importe quel magasin de produits de boulangerie
Couteau Dupont DiamondLa version à102680-780produit les meilleures sections.
Or colloïdalBBI SolutionsEM. GC1515 nm Grilles de maille EM en or colloïdal
ProscitechGCU150une variété de tailles peuvent être testées : GCU150h, GCU200h par exemple
Élimination du plastique PippettesProscitechLCH20le meilleur pour utiliser des jetables en plastique, en particulier lors du travail avec de la résine
Logiciel
SerialEMUniversité de Boulderacquisition de tomographie
MATLAB, MathWorkshttps://www.mathworks.com/products/matlab.html
IMOD,l’Université de Boulderl’alignement et la segmentation d’images
, iso2meshdisponible à http://iso2mesh.sourceforge.net
Fidji ou un logiciel de traitement d’images similaireImageJFiji est Just Image Jdisponible à https://fiji.sc pour la manipulation d’images binaires piles
RyR-Simulator codes/donnéesCellSMB groupedisponible à https://github.com/CellSMB/RyR-simulator
CardiacCellMeshGeneratorLe groupeest livré avec RyR-Simulator sous le dossier « gui-version"
R-statistics softwareR-projectTélécharger depuis https://www.r-project.org
spatstatR-projectinstaller via
le programme R rglR-projetinstaller via le programme R
doparallèleR-projetinstaller via le programme R
pour chaqueprojetinstaller via le programme R
doSNOWR-projetinstaller via
R itérateursprojetvia le programme R
de qualité EM EM Moules à angle de 35 degrés BioStrategy , CellSMB R de programme R installer le R

Références

  1. Noble, D., Rudy, Y. Models of cardiac ventricular action potentials: iterative interaction between experiment and simulation. Phil. Trans. R. Soc. A: Math., Phys. and Eng. Sci. 359 (1783), 1127-1142 (2001).
  2. Williams, G. S. B., Smith, G. D., Sobie, E. A., Jafri, M. S. Models of cardiac excitation-contraction coupling in ventricular myocytes. Math. Biosci.

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Réimpressions et autorisations

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