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Efficacité du Stripping Air dans deux poissons salmonidés, truite arc-en-ciel (Oncorhynchus Mykiss) et la truite brune (Salmo Trutta Morpha fario)

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DOI :

10.3791/56894

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16 septembre 2018

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1Department of Gamete and Embryo Biology, Institute of Animal Reproduction and Food Research, Polish Academy of Science, 2Department of Salmonid Fish Research, The Stanisław Sakowicz Inland Fisheries Institute

Dans cet article

Résumé

Le but principal de cette étude est de normaliser et de tester la méthode pneumatique (strippage à l’air) pour recueillir les oeufs de truite arc-en-ciel et la truite brune. Cette méthode permet simple et efficace de collecte des oeufs sans la nécessité de massage de ventre de poisson.

Résumé

Collecte des œufs est une des procédures plus cruciales au cours de la reproduction des poissons dans les écloseries de salmonidés. Méthodes classiques impliquent l’utilisation de massage des mains sur l’abdomen de poisson pour expulser les oeufs. Une autre méthode utilise la pression du gaz injecté dans la cavité du corps, ce qui provoque la libération subséquente des oeufs. Cette méthode est censée avoir des effets moins négatifs sur le bien-être et le œuf qualité des stocks de géniteurs. Ici, nous comparons les résultats de l’air et la main exhib méthodes en ce qui concerne la survie à un an et oeuf quantité et qualité en deux poissons salmonidés, truite arc-en-ciel (Oncorhynchus mykiss) et la truite brune (Salmo trutta morpha fario). Nos résultats indiquent que strippage à l’air ont donné une meilleure qualité des oeufs et des taux de survie à un an plus élevé chez la truite arc-en-ciel. En outre, strippage à l’air entraîné des taux de mortalité plus faible que dans le groupe soumis à la main de décapage (25 % vs. 35 %). Le taux de pH et l’éclosion de la main dépouillé a été inférieur à ceux du groupe air dépouillé. Dans le cas de la truite brune, la qualité des oeufs obtenus par main et méthodes strippage à l’air était similaire ; Cependant, les pertes d’un an chez les poissons sont élevés dans dépouillé Kokutai (15 % par rapport à 0 % chez les poissons main dépouillé). Bien que les avantages de l’air, méthode de décapage sur main décapage en termes de qualité de le œuf ne peuvent pas être observées chez toutes les espèces de salmonidés, la procédure de strippage à l’air peut être une option prometteuse à adopter dans les écloseries puisqu’il garantit un niveau élevé de reproductibilité et l’efficacité.

Introduction

La truite arc-en-ciel (Oncorhynchus mykiss) et la truite brune (Salmo trutta morpha fario) appartiennent à la famille des Salmonidae Salmoniformes1. La production de ces deux espèces en aquaculture mondiale a acquis une croissance rapide, en raison de leur importance commerciale et récréative. En Pologne, la production de poissons salmonidés atteint environ 20 000 tonnes, la truite arc-en-ciel est l’espèce dominante. En revanche, la truite brune représente une source importante de ressources de poissons d’eau douce en Europe en raison de sa valeur commerciale dans l’aquaculture et de l’importance pour la pêche sportive. Dans de nombreux écosystèmes aquatiques, l’existence des populations de truites brunes est menacée. En conséquence, reproduction artificielle a été appliquée pour reconstituer les populations locales de cette espèce2.

La truite arc-en-ciel et la truite brune atteignent la maturité sexuelle généralement à l’âge de trois, avec des mâles venant à échéance un an plus tôt que les femelles1. Dans des conditions artificielles, oeufs et du sperme de truite arc-en-ciel et la truite brune est généralement collectées par massage abdominal doux. En pratique, sur une petite échelle, une méthode de décapage à la main de la collecte des oeufs est rentable. Cependant, sur une grande échelle, la méthode de décapage à la main peut être fastidieuse et épuisante. En conséquence, cette technique peut entraîner des oeufs cassés à cause de la fatigue des travailleurs écloserie. Bris d’oeufs conduit souvent à une diminution du pH du liquide ovarien et la libération de jaune de œuf, qui affectent négativement la fécondation des oeufs3. En outre, cette méthode traditionnelle de collecte des œufs (en appuyant plusieurs fois sur de l’abdomen) peut également entraîner géniteurs mortalité causée par l’infection de la peau associée à la détérioration de la barrière protectrice de mucus.

Pneumatique méthode de collecte des œufs a été d’abord utilisé en Australie en 19574. La méthode repose sur l’injection de gaz (air, azote ou oxygène) dans la cavité du corps pour expulser les oeufs à l’aide de la pression du gaz. Cette technique rapide et facile a été appliquée avec succès chez les salmonidés sans effets secondaires négatifs sur les poissons de4. Récemment, cette méthode a été utilisée chez les espèces sauvages (le grand brochet, Esox lucius) à collecter des oeufs matures dans des conditions artificielles5. Il a été démontré qu’air dépouillé oeufs avaient fécondation supérieur et tarifs par rapport à la main l’éclosion dépouillé oeufs, quelle que soit la solution utilisée pour la fécondation (solution de Woynarovich, eau de tampon ou écloserie de Billard)5.

Le but principal de cette étude était de tester la méthode pneumatique (strippage à l’air) pour recueillir les oeufs de truite arc-en-ciel et la truite brune en comparaison avec la méthode de décapage traditionnel à la main. On a comparé l’efficacité de ces deux méthodes (volume d’oeufs obtenus) et l’heure de collecte, de la qualité des gamètes (pH liquide ovarien), mais aussi après la fraye et taux de mortalité à l’éclosion.

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Protocole

Des procédures ont été effectuées selon le Comité Local sur l’éthique de l’expérimentation animale à Olsztyn, Pologne.

1. matériel préparation

  1. Utiliser une seringue et une aiguille pour l’injection du gaz dans la cavité de corps de poisson.
  2. La valeur de la pression du gaz à 0,5 bar et maintenir cette pression inférieure à 1 bar tout au long.
  3. Contrôle le débit d’air. Pour les salmonidés, 1,5 L/min est la vitesse la plus efficace de l’épuisement du gaz. Maintenir la vitesse optimale car vitesse supérieure ne pourrait pas obtenir tous les oeufs alors qu’une vitesse plus lente pourrait prolonger inutilement la procédure.
  4. Connecter la seringue avec une aiguille vissée (0,8 à 1,2 mm de diamètre) pour éviter le détachement d’aiguille causée par la pression du gaz.

2. l’air frai

  1. Anesthésier les poissons avec 0,2 % Propiscin. Placer le poisson dans un bain d’eau avec le 0,2 % Propiscin et attendez que le poisson devient insensible.
  2. Sécher soigneusement avant le frai en l’essuyant avec un chiffon sec en coton.
  3. Placer le poisson sur le lit de la pente sur 35-40°, sur son côté de queue vers le bas. Avec une faible pression de l’abdomen des poissons, vérifier le débit de le œuf de l’appareil génital. Si les oeufs ne sont pas présents, le poisson ne doit pas pondu.
  4. Placer un récipient couvert d’un filet au-dessous de la papille de poissons pour recueillir les oeufs.
  5. Insérer rapidement l’aiguille sous les nageoires abdominales.
  6. Librement retirer les œufs par le gaz jusqu'à ce que les oeufs du singulier ont été retirés du corps du poisson.
  7. Masser doucement l’abdomen pour retirer les excès de gaz du corps du poisson.
  8. Après la ponte, doucement transférer les poissons dans un réservoir de jet d’eau. Poissons relâchés au réservoir après qu’air frai pourrait initialement nager sur la surface de l’eau. Après quelques minutes le poisson libère le gaz restant en nageant et commence à nager normalement.
    Remarque : Les œufs obtenus sont très propres et exempts de contamination sanguine ou de matières fécales.

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Résultats

Mâles adultes et femelles de la truite arc-en-ciel (âge 2 +, 1700 ± 328 g) et la truite brune (âge 3 +, 1900 ± 435 g) ont été extraites de l’écloserie de poissons salmonidés (Rutki-Żukowo, intérieure Institut pêche à Olsztyn, Pologne). Les mâles et les femelles ont été placées dans des réservoirs séparés avec un volume d’environ 5 m3. La température de l’eau était 12±1 ° C. Avant toute manipulation, les poissons ont été anesthésiés avec 0,2 % Propiscin. Les poisson...

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Discussion

La méthode pneumatique de collecte des œufs de poisson, bien que plus de temps que la méthode traditionnelle (main décapage), peut garantir une haute qualité des ovocytes ayant subi une maturation (cet ouvrage). Cela est lié au faible risque de rupture mécanique des oeufs tout en appliquant cette procédure. Un pH élevé du fluide de l’ovaire, mais aussi une augmentation du taux de fécondation, témoignent de l’utilité de la méthode pneumatique. Dans l’ensemble, l’air, méthode de collecte des œufs de décapage dans la reprod...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

L’étude présentée a été soutenue par projet « pneumatique méthode de décapage de poisson - application possible, influence sur le bien-être des poissons et la quantité et la qualité des gamètes » (acronyme : PNEUFISH) financés au titre de « opérationnelles programme développement de la pêche Secteur et les zones côtières 2007-2013"(OR-61724-OR1400001/10), les fonds affectés à l’Institut de Reproduction de l’Animal et de la recherche de nourriture Académie polonaise des Sciences, Olsztyn (Pologne) et soutenir en coût Bureau (Food and Agriculture coût Action FA1205 : AQUAGAMETE ). Nous tenons à remercier, Stanley imed Ugwu pour grand soutien dans l’édition anglaise. Nous tenons à remercier également les producteurs d’animation « Studio Filmowe mobile Obrazki ».

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Glycine pure P.A.Tampon d’activation des spermatozoïdesAVANTOR527560117
Base TrizmaSigma AldrichT1503Tampon d’activation des spermatozoïdes
Chlorure de sodium BioréactifSigma AldrichS5886Tampon d’activation des spermatozoïdes
Chlorure de calcium anhydreSigma AldrichC4901Tampon d’activation des spermatozoïdes
Propiscin (solution d’étomidate à 0,2 %)IRS Olsztyn, Polognenon indiqué
compresseurThomas  ; Sheboigan, WI, États-Unis  ;Réducteur DT/SR 070800001882
Camozzi  ;cRJUS U7J
tuyau d’airZEC T.P.U.  ; SH.98  ;
syrgineEFD7012118
Stade de ponte de l’airBiopasz, PolognePNEU001
Orion Ross Ultra électrodeThermo Scientific, Waltham, MA, États-Unis8102BNUWP

Références

  1. Nelson, J. S. Fishes of the World. , 4th, JohnWiley and Sons, Inc. Hoboken, NJ, USA. (2006).
  2. García-Marín, J. L., Sanz, N., Pla, C. Proportions of native and introduced brown trout in adjacent fished and unfished Spanish rivers. Conservation Biology. 12, 313-319 (1998).
  3. Dietrich, G. J., Wojtczak, M., Slowinska, M., Dobosz, S., Kuzminski, H., Ciereszko, A. Broken eggs decrease pH of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) ovarian fluid. Aquaculture. 273, 748-751 (2007).
  4. Zurbuch, P. E. A structure for easy fish recovery during drainage of an impoundment. Progressive FishCulturist. 27, 237-238 (1965).
  5. Cejko, B. I., et al. Effects of different stripping methods of female and activation medium on fertilization success in northern pike (Esox lucius). Czech Journal of Animal Sciences. 10, 481-486 (2016).
  6. Morisawa, S., Morisawa, M. Induction of potential for sperm motility by bicarbonate and pH in rainbow trout and chum salmon. Journal of Experimental Biology. 136, 13-22 (1988).
  7. Billard, R., Cosson, J., Perchec, G., Linhart, O. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. 129, 95-112 (1995).
  8. Iuchi, I., Ha, C. R., Sugiyama, H., Nomura, K. Analysis of chorion hardening of eggs of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Development Growth and Differentiation. 38, 299-306 (1996).
  9. Wojtczak, M. A., Kowalski, R. K., Dobosz, S., Goryczko, K., Kuźminski, H., Glogowski, J., Ciereszko, A. Assessment of water turbidity for evaluation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) egg quality. Aquaculture. 242, 617-624 (2004).
  10. Tabrizi, E. N., Khara, H., Nezami, S. A., Lorestani, R., Shamspour, S. Broken Eggs Influence on Fertilization Capacity and Viability of Eggs, Turbidity and pH of Ovarian Fluid and Fertilization Water in the Endangered Caspian Brown Trout, Salmo Trutta Caspius. International Journal of Biology. 3 (1), 161-166 (2011).
  11. Carl, G. C. Beware of the broken egg! A possible cause of heavy losses of salmon eggs. Progresive Fish-Culturist. 53, 30-31 (1941).

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