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Article de méthode

Un optimisé Evans Blue protocole pour évaluer une fuite vasculaire chez la souris

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DOI :

10.3791/57037

12 septembre 2018

Dans cet article

Résumé

Un protocole simple, optimisé et économique décrit dans cet article, qui utilise la méthode du colorant bleu Evans pour évaluer l’extravasation plasmatique dans les organes des souris FVBN qui peuvent être adaptés à d’autres souches, espèces et autres organes ou tissus.

Résumé

Une fuite vasculaire ou l’extravasation plasmatique, a un certain nombre de causes et peut être une conséquence grave ou un symptôme d’une réaction inflammatoire. Cette étude pourrait déboucher sur les nouvelles connaissances concernant les causes du ou des nouveaux moyens d’inhiber ou de traiter l’extravasation plasmatique. Il est important que les chercheurs aient les outils appropriés, y compris les meilleures méthodes disponibles, pour étudier l’extravasation plasmatique. Dans cet article, nous décrivons un protocole, à l’aide de la méthode de colorant bleu Evans, pour évaluer l’extravasation plasmatique dans les organes des souris FVBN. Ce protocole est volontairement simple, à aussi grand un degré possible, mais fournit des données de haute qualité. Bleu Evans a été choisi principalement parce qu’il est facile pour le laboratoire moyen à utiliser. Nous avons utilisé ce protocole pour fournir des preuves et le soutien pour l’hypothèse que l’enzyme néprilysine pourrait protéger les vaisseaux contre l’extravasation plasmatique. Toutefois, ce protocole peut être expérimentalement utilisé et facilement adapté pour être utilisés dans d’autres souches de souris ou chez d’autres espèces, dans de nombreux différents organes ou tissus, pour les études qui peut impliquer des autres facteurs qui sont importants dans la compréhension, la prévention ou le traitement, extravasation plasmatique. Ce protocole a été grandement amélioré et modifiés de protocoles existants et combine fiabilité, facilité d’utilisation, économie et la disponibilité générale des matériaux et équipements, rendant ce protocole supérieur pour le laboratoire moyens à utiliser dans quantifier l’extravasation plasmatique des organes.

Introduction

Une fuite vasculaire dans les organes se réfère à l’extravasation, ou fuite du plasma sanguin par des fentes produites dans l’endothélium des post veinules capillaires dans les organes. Cette extravasation plasmatique ou augmentation de la perméabilité vasculaire, qui peut-être découler d’une réaction inflammatoire quelconque, peut avoir des conséquences graves. Ainsi, il est important que ce phénomène, ses causes, les modulateurs et les conséquences, sont étudiés et compris, et même, que les enquêteurs ont bien des outils et protocoles permettant de les étudier. Les lacunes endothéliales peuvent être produits par un certain nombre de stimuli, mais sont habituellement....

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Protocole

Toutes les directives internationales, nationales et/ou institutionnels pour le soin et l’utilisation des animaux (souris) ont été suivis dans les expériences décrites dans ce manuscrit.

Cette méthode utilise des souris adultes FVBN, âgés de 16 à 20 semaines, jugées optimales pour l’application de la présente étude. Jour 1 comprend les étapes 1 à 5 et 2 jours comprend les étapes 6 et 7 (Figure 1).

1. matériel préparation

  1. Garantir un approvisionnement suffisant de seringues stériles, jetables et aiguilles, si la kétamine/xylazine est utilisé comme l’anesthésie (comme recomma....

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Résultats

Dans la Figure 1, un schéma de la procédure est montré, qui a été trouvé pour entraîner les valeurs de l’extravasation plasmatique induite par la substance P plus fiable et cohérente des organes des souris FVBN. Cette procédure prend généralement deux jours de travail, séparés par au moins 48 h de délai d’attente. Il est possible de l’étendre encore plus, si cela est fait systématiquement pour toutes les expériences à comparer. Par exemple, après que les orga.......

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Discussion

Comme indiqué ci-dessus, l’étude de l’extravasation plasmatique pourrait déboucher sur les nouvelles connaissances concernant les causes du ou des nouveaux moyens d’inhiber ou de traiter l’extravasation plasmatique. L’utilisation efficace du protocole extravasation plasmatique (ci-dessus), à l’aide de bleu Evans, a été démontrée dans le manuscrit actuel. Bien que les données affichées en arrière l’hypothèse que le NEP peut protéger les vaisseaux contre l’extravasation plasmatique, c’est un objectif secondaire actuellemen.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Andy Poczobutt et Dr Jori Leszczynski pour leur aide précieuse et les modifications à ce manuscrit.  Pris en charge par des subventions provenance du National Heart, Lung et Blood Institute (NHLBI RO1 HL078929, HL014985 de PPG et RO3 HL095439) et l’anciens combattants Ministère des (examen du mérite).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
isofluraneVet One200-070anesthésique inhalé
kétamineVet One200-055anesthésique injectable
xylazineLloyd Laboratories139-236anesthésiques injectables
(10,3 & 1 cc)Becton Dickinson309604, 309657, aiguilles 309659
(20G1,23G1 & 26G1/2)Becton Dickinson305178, 305193, 305111
chambre d’induction isofluraneVetEquip9414431 litre
cône de nez circuits respiratoires  ;VetEquipRC2Contrôleur de circuit pour rongeurs 2
réservoir d’oxygèneAirgasUN 1072100 % médical
coussin chauffantCWE Inc.Régulateur de températureTC-1000
sonde de température rectaleCWE Inc.10-09012de souris
(pour rongeurs)OhausCS 2000
outils chirurgicaux-ciseauxOutils de science fine15000-00Vannas Ciseaux à ressort 3mm lame droite (récipients de coupe)  ;   ;
outils chirurgicaux-pincesOutils de science fine11151-10Pince extra fine Graefe (isolant les vaisseaux de souris)
outils chirurgicaux-hémostatiquesOutils de science fine13009-12Hémostats de Halstead-mosquito (dissection émoussée, maintien des tissus)
outils chirurgicaux -pilotes de suturesOutils de science fine12502-12Pilotes de sutures Olsen-Hegar (suture)
outils chirurgicaux-pincesFine Outils scientifiques11627-12Pince crocodile Adson-Brown (suture de préhension tissulaire, rat)
outils chirurgicaux-ciseauxOutils de science fine14110-15ciseaux à coupe dure Mayo 15 cm (chirurgie, dissection, os, rat)
outils chirurgicaux-pinceOutils de science fine18025-10pince à attacher la suture (utilisée pour le cath Millar)
outils chirurgicaux-ciseauxOutils de science fine14078-10Lexer Ciseaux pour bébé droits (chirurgie, souris)
outils chirurgicaux-pincesOutils de science fine11254-20Dumont #5 pince à pointe fine (vaisseaux de rat, dissection)
outils chirurgicaux-ciseauxOutils de science fine14082-09Ciseaux de dissecteur 12 mm (chirurgie, souris rat
outils chirurgicaux-pinceOutils de science fine11051-10 10cm pince Graefe (préhension de tissus, souris rat)
outils chirurgicaux-pincesOutils de science fine11251-35Pince Dumont 5/45 (introducteur pour vaisseaux)
outils chirurgicaux-écarteursOutils de science fine17012-11écarteurs Weitlaner 2/3 dents (chirurgie du rat)
outils chirurgicaux-pincesOutils de science fine11294-00Pince Dumont #4 (isolation des vaisseaux rats, souris)
outils chirurgicaux-pinceFine Outils scientifiques11297-00Pince Dumont #7 (préhension tissulaire, dissection)
outils chirurgicaux-ciseauxOutils scientifiquesfins 14058-11ciseaux à iris à coupe dure (dissection de souris, os)
outils chirurgicaux-pincesOutils scientifiques fins11009-13pince Semken dentelée, incurvée (préhension tissulaire, rat de souris)
outils chirurgicaux-hémostatiquesOutils scientifiques fins13003-10Hartman hémostatiques incurvés (dissection émoussée, maintien des tissus)
outils chirurgicaux-pincesOutils de science fine11006-12Pince dentelée Adson (préhension des tissus)
tondeusesOsterA5
tapeFisherbrand159015G
pommade de larme artificielleAkorn Inc13985-600-03
lidocaïneHospira0409-4277-01
CathétersTygonPV-1
Evans bleuSigma AldrichE2129
Substance PBachem  ;H-1890
héparineSagent Pharmaceuticals25201-400-101000 U/ml
solution salineHospira0409-7138-090,9 % chlorure de sodium
phénobarbital  ;Vortech0298-9373-68
citrate de sodiumFisher ScientificBP327-1
PBSSigma AldrichP4417-50TAB  ;
Lingettes Kimwipes pour buvardFisher Scientific06-666A
formamideSigma Aldrich47670
microbalanceDenver InstrumentAPX-60
tubes microfugesFisher Scientific07-200-534
polystyrène 96 plaque à puitsBecton Dickenson351172
plaque d’absorbance lecteurBioTekSynergy 2
gels de polyacrylamideBio-Rad3450014  ;
protéine poids moléculaire étalonBio-Rad1610374
Protran soutenu nitrocelluloseAmersham (GE)10600015
boîte de gelBio-Rad1658005
TrisFisher ScientificBP152-1
Tween20Sigma AldrichP-1379
chlorure de sodiumFisher AnticorpsS271-1 de S271-1
.R & D SystemsAF1182
doxycycline chowTeklad (HARLAN)TD.130750  ;
FVB/NJ souris de type sauvageJackson001800
anticorps secondaire (chèvre anti-lapin)ZyMed81-6120
ECL solution-Western Lightening PlusPerkinElmerNEL104001EA
filmPierce34091
seringues de balance ) injectables en polyvinyle à 2 % polyclonal primaire NEP

Références

  1. Snijdelaar, D. G., Dirksen, R., Slappendel, R., Crul, B. J. Substance P. Eur J Pain. 4 (2), 121-135 (2000).
  2. Rubinstein, I., Iwamoto, I., Ueki, I. F., Borson, D. B., Nadel, J. A. Recombinant neutral endopeptidase attenuates substance P-induced plasma extravasation in the guinea pig s....

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

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