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Article de méthode

Fluorescence moléculaire tomographie pour l’imagerie In Vivo des xénogreffes de glioblastome

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DOI :

10.3791/57448

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26 avril 2018

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Orthotopique injection intracrânienne des cellules tumorales a été utilisée dans la recherche sur le cancer pour étudier la biologie de tumeur de cerveau, progression, évolution et réponse thérapeutique. Nous présentons ici la tomographie moléculaire de xénogreffes tumorales, à fluorescence qui fournit une imagerie intravitale en temps réel et la quantification d’une tumeur de masse dans des modèles précliniques de glioblastome.

Résumé

Tumorigénicité est la capacité des cellules cancéreuses pour former une tumeur masse. Une approche largement utilisée pour déterminer si les cellules sont tumorigènes est en injectant des souris immunodéficientes par voie sous-cutanée avec les cellules cancéreuses et de mesurer la masse de la tumeur, après qu’il devienne visible et palpable. Orthotopique injections de cellules cancéreuses visent à introduire la xénogreffe dans le microenvironnement qui ressemble le plus le tissu d’origine de la tumeur à l’étude. Recherche sur le cancer du cerveau nécessite une injection intracrânienne des cellules cancéreuses pour permettre la formation de tumeurs et d’analyse dans le microenvironnement unique du cerveau. L’imagerie in vivo des xénogreffes intracrâniennes surveille instantanément la masse de la tumeur de souris orthotopically greffée. Nous rapportons ici l’utilisation de la tomographie moléculaire de fluorescence (FMT) des xénogreffes de tumeurs de cerveau. Les cellules cancéreuses sont tout d’abord transduites avec près de protéines fluorescentes infrarouges et ensuite injectées dans le cerveau des souris immunodéficientes. Les animaux sont ensuite analysés pour obtenir des informations quantitatives sur la masse de la tumeur sur une longue période de temps. Cellule avant étiquetage permet de quantification rentable, fiable et reproductible de la charge tumorale au sein de chacune des souris. Nous avons éliminé la nécessité d’injecter des substrats d’imagerie et ainsi réduit le stress sur les animaux. Une limitation de cette approche est représentée par l’incapacité à détecter de très petites masses ; Toutefois, il a une meilleure résolution pour les plus grandes masses que les autres techniques. Il peut être appliqué afin d’évaluer l’efficacité d’un traitement médicamenteux ou des altérations génétiques des lignées de cellules de gliome et échantillons dérivés de patient.

Introduction

Le cancer est une des principales causes de décès par maladie chez l’homme dans le monde industrialisé. Avec un nombre extrêmement élevé de morts, les nouveaux traitements sont requis de toute urgence. Glioblastome multiforme (GBM) est un type extrêmement mortelle de cancer du cerveau, composé de populations hétérogènes tumeur stromale et immunitaire des cellules du cerveau. Selon le registre de tumeur de cerveau Central des Etats-Unis, l’incidence des tumeurs cérébrales malignes et bénignes primaires est environ 22 cas pour 100 000 habitants. Environ 11 000 nouveaux cas devraient être diagnostiqués aux Etats-Unis en 20171.

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Protocole

L’utilisation des animaux de recherches expérimentales et des agents infectieux, tels que les lentivirus à transmettre les cellules cancéreuses, requièrent l’approbation préalable par le programme institutionnel de soins aux animaux et par le Comité institutionnel de biosécurité. Ce protocole suit les directives de protection des animaux de l’Université de Californie à San Diego (UCSD).

1. marquage des cellules de glioblastome avec FP635 ou FP720 Construct

  1. Produire et purifier les lentivirus selon le protocole décrit par Tiscornia et al. 12
  2. La culture environ 2,0 x 106 cellule....

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Résultats

U87EGFRvIII de cellules de glioblastome (U87 cellules surexprimant la variante de récepteur de l’EGF III) ont été cultivés selon l’étape 1.2. Lentivirus a été produit et purifiée selon étape 1.1. La concentration virale était déterminée par p24 analyse ELISA. Les cellules étaient transduites avec lentivirus portant des protéines fluorescentes infrarouges selon étape 1.8. Le plasmide codant FP72010,11 a été aimablement fourni par D.......

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Discussion

Xénogreffes tumorales ont été largement utilisés dans la recherche sur le cancer et un certain nombre de techniques d’imagerie bien établis a été développé : BLI ; résonance magnétique imagerie (IRM) ; tomographie d’émission de positons (TEP), calculée (CT) ; FMT. Chacune de ces approches est livré avec les avantages et les inconvénients, mais finalement se complètent mutuellement avec le type de renseignements fournis. Un des plus couramment utilisés en vivo technologie d’imagerie est BLI5

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions le Dr Frederick Lang, MD Anderson Cancer Center pour GBM-PDX neurospheres. Ce travail a été soutenu par la défaite GBM recherche Collaborative, une filiale de la société nationale de cerveau tumeur (Frank Furnari), R01-NS080939 (Frank Furnari), le James S. McDonnell Foundation (Frank Furnari) ; Jorge Benitez a été soutenue par un prix de l’Association américaine de tumeur cerveau (ABTA) ; Ciro Zanca était partiellement soutenue par une bourse de recherche postdoctorale de Fondation américaine-italien d’un Cancer du sein. Frank Furnari reçoit des traitements et un soutien supplémentaire de Ludwig Institute for Cancer Research.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
DMEM/Glycémie élevée  ;HyClone/GESH30022.1
DMEM/F12 1:1  ;Gibco11320-082
FBSHyClone/GESH30071.03
AccutaseTechnologies cellulaires innovantesAT-104
TrypsineHyClone/GESH30236.01
Supplément de B27Gibco17504044
EGF recombinant humain  ;Stemcell Technologies2633
humain recombinant FGFStemcell Technologies2634
DPBSCorning21-031-00
Tubes FACSFalcon352235
DAPIThermoFisher Scientific62248
BlasticidineThermoFisher ScientificA1113903
p24 ELISA  ;Clontech632200
XylazineAkornNDC 59399-110-20
KétamineZoetisNADA 043-403Substance contrôlée
PommadeDechronNDC 17033-211-38
Suture résorbableCpMedicalVQ392
5 ul seringueHamilton26200-UNuméro de catalogue tel que vendu par Sigma-Aldrich
Cell SorterSonySH8007
Souris cadre stéréotaxique  ;Stoelting51730
Injecteur stéréotaxique motoriséStoelting53311
Perceuse à main à micromoteurForedomK1070
Coussin chauffant pour souris  ;Ken Scientific CorporationTP-22G
Système de tomographie par fluorescencePerkinElmerFMT 2500 XL
TrueQuant Logiciel d’imagerie  ;Perkin Elmer  ;
Ultra-centrifugeuse Optima L-80 XPBeckman Coulter392049
Culture tissulaire Boîtes 100mm OlympusPlastics25-202
Boîtes 150mm OlympusPlastics25-203
Flacons de culture tissulaire T75Corning430720U
50 mL Tubes coniquesCorning430290
Tubes coniques de 15 mLOlympus Plastics28-101
Centrifugeuse Avanti J-20Beckman CoulterJ320XP-IM-5
Tube, Polypropylène, Paroi mince, 5,0 mLTube Beckman Coulter326819
, Paroi mince, Polypropylène, 38,5 mL, 25 x 89 mmBeckman Coulter326823
Souris nues athymiquesCharles River LaboratoriesCode de souche  ; 490 (Homozygote)Approbation préalable du Programme de soins aux animaux de l’établissement et du Comité de biosécurité de l’établissement.   ;   ;
7005319

Références

  1. Ostrom, Q. T., et al. CBTRUS Statistical Report: Primary Brain and Other Central Nervous System Tumors Diagnosed in the United States in 2009-2013. Neuro-Oncology. 18 (suppl_5), v1-v75 (2016).
  2. Pauli, C., et al.

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Réimpressions et autorisations

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