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Article de méthode

Unicellulaire quantification des ARNm et Expression de protéines de Surface CD4 infectées par le Virus d’immunodéficience simien+ T les cellules isolées de macaques rhésus

10.2K vues

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DOI :

10.3791/57776

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25 septembre 2018

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Dans cet article

Résumé

Décrit est une méthodologie pour quantifier l’expression des 96 gènes et 18 protéines de surface de cellules uniques ex vivo, permettant d’identifier de façon différentielle exprimée des gènes et des protéines dans les cellules infectées par le virus par rapport aux cellules non infectées. Nous appliquons la démarche d’étude CD4 infectés par le SIV+ T cellules isolées de macaques rhésus.

Résumé

Analyse de cellules individuelles est un important outil de dissection des populations hétérogènes de cellules. L’identification et l’isolement de cellules rares peuvent être difficiles. Pour relever ce défi, une combinaison de méthodologie indexé de cytométrie en flux et haut débit multiplex quantitative PCR (qPCR) a été développé. L’objectif était d’identifier et de caractériser le virus de l’immunodéficience simienne (vis)-infecté les cellules présentes au sein de macaques rhésus. Par dosage de la protéine de surface par un tri de cellule activée par fluorescence (FACS) et de l’ARNm par qPCR, cellules infectées par le virus sont identifiés par l’expression des gènes viraux, qui est combinée avec les mesures de gènes et des protéines hôte pour créer un profil multidimensionnel . Nous appelons l’approche, évaluation unicellulaires Proteo-transcriptional ciblée ou tSCEPTRE. Pour exécuter la méthode, des cellules viables sont colorées avec des anticorps fluorescents spécifiques de marqueurs de surface utilisés pour isoler les FACS d’un sous-ensemble de cellules et/ou d’analyse phénotypique en aval. Cellules individuelles sont triés suivis par lyse immédiate, multiplexe transcription inverse (RT), les pré amplification par PCR et haut débit qPCR de jusqu'à 96 transcrits. Les mesures de FACS sont enregistrées au moment du tri et liés ultérieurement pour les données d’expression de gène en position bien à créer une protéine combinée et le profil transcriptionnel. Pour étudier les infectés par le SIV cellules directement ex vivo, les cellules ont été identifiés par la détection de qPCR de multiples espèces d’ARN virales. La combinaison des transcriptions virales et la quantité de chaque fournissent un cadre pour la classification des cellules en étapes distinctes du cycle de vie viral (p. ex., productives et non productives). En outre, tSCEPTRE des cellules SIV+ ont été par rapport à des cellules isolées du même spécimen pour évaluer des protéines et gènes différentiellement exprimés hôtes. L’analyse a révélé précédemment incomprises hétérogénéité d’expression de RNA virale chez les cellules infectées comme in vivo la régulation des gènes post-transcriptionnels induite par le SIV avec résolution unicellulaire. La méthode tSCEPTRE est pertinente pour l’analyse d’une population cellulaire se prête à l’identification par l’expression du marqueur de la protéine de surface, ou des gènes pathogène ou d’un hôte ou une combinaison.

Introduction

De nombreux pathogènes intracellulaires dépendent de machinerie cellulaire hôte à répliquer, souvent modifier la biologie cellulaire hôte ou ciblage très certaines sous-populations de cellules de l’hôte pour maximiser leurs chances de propagation. Ainsi, les processus biologiques de cellule sont communément perturbés, avec des conséquences délétères sur la santé globale de l’hôte. Compréhension des interactions entre les virus et les cellules de l’hôte dans lequel ils répliquent élucidera les mécanismes de la maladie qui pourraient contribuer à l’élaboration de stratégies et d’amélioration des traitements pour prévenir l’infection. Les outils d’analyse directes qui pe....

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Protocole

Remarque : Un schéma du flux de protocole est illustré à la Figure 1. Il se compose de trois étapes principales : FACS, RT et préamplification ADNc et qPCR jusqu'à 96 gènes simultanément. Deux versions du protocole, tri des cellules en limitant les dilutions et le tri des cellules individuelles, sont décrites en détail dans les étapes 5 et 6, respectivement. Ces stratégies aborder des questions de recherche différents mais suivent des procédures similaires.

1. prérequis ou préalables des Analyses

  1. Valider tous les épreuves d’expression de gène pour être utilisé comme précédemment décrit

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Résultats

Le flux de travail pour l’ensemble du protocole est représenté dans la Figure 1. Il se compose de deux variations définies par le nombre de cellules triées : chaque dilution limitante ou en tant que simple de cellules, comme décrit dans le texte. Exemples d’apprêt-sonde analyse de qualification sur 2 fois des dilutions sériées de RNA sont indiquées à la Figure 2. La stratégie de blocage pour identifier les éventuelles cellules SI.......

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Discussion

Le protocole décrit ici, appelé tSCEPTRE, intègre le dosage de la protéine de surface monocellulaire par cytométrie multiparamétrique avec l’expression de l’ARNm unicellulaires quantitative par RT-qPCR hautement multiplexé. L’union de ces deux technologies permet à haute teneur instantanés du combiné transcriptionnelles et profil protéique des cellules individuelles dans un format haut débit. Nous utilisons la méthode pour identifier les cellules jusqu’ici insaisissables infectés par le SIV en vivoet décrire les.......

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Déclarations de divulgation

Ce travail a été soutenu par un accord de coopération (W81XWH-07-2-0067) entre le Henry M. Jackson Foundation pour la promotion de la médecine militaire, Inc et le département américain de la défense (DOD). Les opinions exprimées sont celles des auteurs et ne doivent pas être interprétées pour représenter les positions de l’armée américaine ou le ministère de la défense. Recherche a été effectuée en vertu d’un protocole approuvé l’utilisation des animaux dans une installation AAALACi accrédité dans le respect de l’Animal Welfare Act et autres lois fédérales et les règlements relatifs aux animaux et expériences impliquant des animaux et adhère aux principes indiqué dans le Guide pour l’édition 2011 de soins et utilisation des animaux de laboratoire, Publication du CNRC.

Remerciements

Les auteurs aimeraient remercier le NIAID VRC Flow Cytometry Core et les installations du MHRP Flow Cytometry Core pour l’entretien et le fonctionnement des instruments de FACS et des appareils à tri ; Maria Montero, Vishakha Sharma, Kaimei Song for expertise assistance technique ; Michael Piatak, Jr. (décédé) d’assistance avec un modèle SIV qPCR dosage ; et Brandon Keele et Matthew Scarlotta pour SIV isoler les séquences. Les opinions exprimées sont celles des auteurs et ne doivent pas être interprétées pour représenter les positions de l’armée américaine ou le ministère de la défense. Recherche a été effectuée en vertu d’un protocole approuvé l’utilisation des anima....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires

Réactifs et consommables d’extraction d’ARN

Genemate Plaque PCR semi-jupe à 96 puits

BioExpress/VWR

T-3060-1

Joints adhésifs pour plaques PCR

ThermoFisher

AB0558

Armadillo 384-well PCR Plate

ThermoFisher

AB2384

MicroAmp Optical Adhesive Film

Applied Biosystems/ThermoFisher

4311971

DEPC Eau

Quality Biological

351-068-101

eau distillée en verre

<
p>Teknova

W3345

Superscript III Platinum One-Step qRT-PCR Kit

Invitrogen/ThermoFisher

11732088

SUPERase-In Inhibiteur de la rnase

Invitrogen/ThermoFisher

AM2696

Platinum Taq

Invitrogen/ThermoFisher

10966034

dNTP Mix

Invitrogen/ThermoFisher

18427088

ROX Teinture de référence (si séparé du kit)

Invitrogen/ThermoFisher

12223012

Tampon de suspension

ADN

Teknova

T0223

RNAqueous kit

Invitrogen/ThermoFisher

AM1931

TaqMan tests d’expression génique non répertoriés dans le tableau 2

CD6

Applied Biosystems/ThermoFisher

Hs00198752_m1

TLR3

Applied Biosystems/ThermoFisher

Hs1551078_m1

Réactifs Biomark

Control Line Fluid Kit

Fluidigm

89000021

TaqMan Universal PCR Mix

Applied Biosystems/ThermoFisher

4304437

Assay Loading Reagent

Fluidigm

<
p>85000736

Sample Loading Reagent

Fluidigm

85000735

Dynamic Array 96.96 (chip)

Fluidigm

BMK-M-96.96

FACS réactifs

SPHERO COMPtrol Goat anti-souris (lambda)

Spherotech Inc.

CMIgP-30-5H

CompBeads Anti-souris Ig,k

BD Biosciences

51-90-9001229

5 ml Tube en polystyrène avec capuchon de crépine

FALCON

>

352235

Aqua Live/Dead stain

Invitrogen/ThermoFisher

L34976

dilué 1:800

souris anti-humain CD3 BV650 clone SP34-2

BD Biosciences

563916

dilué 1:40

souris anti-humaine CD4 BV786 clone L200

BD Biosciences

563914

dilué 1:20

souris CD8 Clone BUV496 RPA-T8

BD Biosciences

564804

dilué 1:10

souris anti-humaine CD28 BV711 clone CD28.2

Biolegend

302948

diluer 1:20

>

souris CD95 BUV737 clone DX2

BD Biosciences

564710

dilué 1:10

clone CD14 BV510 souris M5E2

Biolegend

301842

diluer 1:83

souris Clone CD16 BV510 3G8

Biolegend

302048

dilué 1:167

souris CD20 BV510 clone 2H7

Biolegend

302340

dilué 1:37

Clone PE anti-CD38-R OKT10

<
Réactif p>NHP recource

N/A

dilué 1:100

>

Souris Anti-Humain CD69 BUV395 clone FN50

BD Biosciences

564364

dilué 1:10

Souris Anti-Humain HLA-DR APC-H7 clone G46-6

BD Biosciences

561358

dilué 1:20

souris anti-humain ICOS Alexa Fluor 700 clone C398.4A

Biolegend

313528

dilué 1:80

Instruments

BioPrptect Containment Enclosure

Baker

BD FACS Aria

BD Biosciences

ProtoFlex Système PCR double à 96 puits

Applied Biosystems/ThermoFisher

4484076

Quant Studio 6 instrument qPCR

Applied Biosystems/ThermoFisher

contrôleur

4485694

IFC HX

Fluidigm

IFC-HX

Biomark HD

Fluidigm

BMKHD-BMKHD

Références

  1. Macaulay, I. C., Ponting, C. P., Voet, T. Single-Cell Multiomics: Multiple Measurements from Single Cells. Trends Genet. 33 (2), 155-168 (2017).
  2. Pasternak, A. O., Lukashov, V. V., Berkhout, B. Cell-associated HIV RNA: a dynamic biomarker of viral persistence. Retrovirology

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Réimpressions et autorisations

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