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Article de méthode

Purification et Reconstitution de TRPV1 pour analyse spectroscopique

7.7K vues

DOI :

10.3791/57796

3 juillet 2018

Dans cet article

Résumé

Cet article décrit des méthodes spécifiques pour obtenir des quantités biochimiques de TRPV1 solubilisée détergent pour analyse spectroscopique. Les protocoles combinés offrent des outils biochimiques et biophysiques qui peuvent être adaptées afin de faciliter les études structurales et fonctionnelles des canaux ioniques mammifères dans un environnement contrôlé en membrane.

Résumé

Canaux ioniques polymodal transduce multiples stimuli de différentes natures allostérique de l’évolution ; ces conformations dynamiques sont difficiles à déterminer et demeurent largement inconnus. Avec les progrès récents en lumière délestage de la particule cryo-electron microscopy (cryo-EM) sur les caractéristiques structurales des sites de fixation agoniste et le mécanisme d’activation de plusieurs canaux ioniques, le décor est planté pour une analyse approfondie et dynamique de leurs processus de blocage mécanismes utilisant des méthodes spectroscopiques. Techniques spectroscopiques comme la résonance paramagnétique électronique (RPE) et électron-électron double résonance (cerf) ont été principalement limités à l’étude des canaux ioniques procaryotes qui peut être purifié en grandes quantités. L’obligation pour les grandes quantités de protéines membranaires fonctionnelle et stable a entravé l’étude des canaux d’ion mammifères à l’aide de ces approches. EPR et DEER offre de nombreux avantages, y compris la détermination de la structure et des changements dynamiques des régions de la protéine mobile, mais à basse résolution, ce qui pourrait être difficile d’obtenir par cristallographie aux rayons x ou cryo-EM, et suivi d’une ouverture de porte réversible transition (c.-à-d., fermée, ouverte, sensibilisés et désensibilisés). Ici, nous fournissons des protocoles pour l’obtention de milligrammes de récepteur transitoire fonctionnel solubilisée détergent potentiels cation V membre du subfamily canal 1 (TRPV1) qui peut être marqué pour la spectroscopie RPE et le cerf.

Introduction

Avec les progrès récents dans la particule cryo microscopie électronique (cryo-EM), structures de canal ionique mammifères ont été obtenus à un rythme extraordinaire. En particulier, des études structurales des canaux ioniques de polymodal, tels que le récepteur transitoire potentiels VANILLOÏDE 1 (TRPV1), ont fourni davantage comprendre son activation des mécanismes1,2,3, 4 , 5. Toutefois, des informations dynamiques sur les canaux ioniques intégrée dans un environnement membranaire sont nécessaires pour c....

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Protocole

1. TRPV1 mutagenèse

Remarque : Une construction TRPV1 minimale pour l’analyse spectroscopique26 fut construite entre le canal de cystéine-moins long TRPV127 à l’aide de la méthode de réaction en chaîne (PCR) polymérase (Figure 1). Cette construction de cystéine-moins TRPV1 minime (ci-après comme eTRPV1) est composé de résidus 110-603 et 627-764. eTRPV1 a été cloné en pMO (un pcDNA3.1 vectoriel) pour l’analyse fonctionnelle et un vecteur recombinant donneur28 qui contenant 8 x protéines histidine-liant le maltose (MBP)-tabac etch virus (TEV), ....

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Résultats

Caractérisation fonctionnelle des minimes sans cystéine TRPV1 construire (eTRPV1) et Single-cystéine Mutants

La première étape vers des études spectroscopiques est d’ingénieur et de caractériser des constructions de cystéine-moins de protéine (Figure 2 a) qui sont fonctionnels et qui produisent des quantités biochimiques des protéines. eTRPV1 est fonctionnel, tel que déterminé par Ca2 + imag.......

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Discussion

Expression et purification des protéines membranaires chez les mammifères, les technologies actuelles ont permis d’obtenir des quantités suffisantes de protéines pour des études spectroscopiques14,15,16,,42. Ici, nous avons adapté ces technologies pour exprimer, purifier, reconstituer et effectuez des analyses spectroscopiques en TRPV1.

Parmi les étapes cruciales dan.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous sommes très reconnaissants à m. H. Mchaourab pour accéder à des spectromètres EPR et cerfs et Dr T. Rosenbaum pour fournir le plasmide de TRPV1 cystéine-moins long.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Kit de mutagénèse dirigée par la foudre QuikChangeAgilent Technologies210519-5
2-Propanol (isopropanol)Fisher ScientificA416
Sérum bovin à l’albumine (BSA)GoldBio.comA-420-10
Résine d’amyloseNEBE8021L
AprotinineGoldBio.comA-655-25
Asolectine du sojaSigma11145
Système d’expression de baculovirus Bac-à-BacInvitrogen Life Technologies10359016
Biobeads SM-2 Adsorbants  ;Bio-Rad152-3920
Pipettes en verre borosilicaté (3.5'') (inyection des ovocytes)Drummond Scientific3-000-203 G/X
Pipettes en verre borosilicaté (enregistrements d’ovocytes)Sutter InstrumentB150-110-10HP
CaCl2 2H2OFisher ScientificC79
Carbenicilline (disodique)GoldBio.comC-103-5
Réactif CellfectinInvitrogen Life Technologies10362-010
cellSensOlympus
ChloroformFisher ScientificC606SK
Collagénase Type 1Worthington-BiochemLS004196
CritisealVWR18000-299
D-(+)-GlucoseSigma  ;G8270
D-(+)-Maltose MonohydratéFisher ScientificBP684
DDM (n-Docecyl-B-D-Maltopyranoside)AnatraceD310S
Milieu à haute teneur en glucose (Dulbecco' s Aigle modifié' s Medium)SigmaD0572  ;
Colonnes de dessalage jetables-10GE Healthcare45-000-148
EGTAFisher ScientificO2783
Sérum de veau fœtalInvitrogen Life Technologies10082-147
Fluo-4 AMLife TechnologiesF-14201
GenCatch Plus Plasmid DNA Mini-PrepKit Epoch Life Science, Inc2160250
Kit de nettoyage PCR GenCatchEpoch Life Science, Inc2360050
Sulfate de gentamicineLonza17-518Z
Capillaire en verre (25 µ ; l)VWR53432-761
Flacon en verre 2800 mLPyrex USA4423-2XL
GlycérolFisher BioReagentsBP229
HEK293S GnTl-ATCCCRL-3022
HEPESSigma  ;H4034
IPTG (isopropyl-thio-B-galactoside)GoldBio.comI2481C25
Sulfate de kanamycineFisher ScientificBP906-5
KClFisher ChemicalP217
LB Bouillon, MillerFisher bioReagentsBP1426
Hémisulfate de leupeptineGoldBio.comL-010-5
Lipofectamine 2000Invitrogen Life Technologies11668-019
MgCl2 6H2OFisher ScientificBP214
MgSO4 7H2OFisher ScientificBP213
mMESSAGE mMACHINE T7 KitAmbionAM1344
MOPSFisher bioReagentsBP2936
MTSL (1-Oxyl-2,2,5,5-tétraméthylpyrrolidine-3-yl) Méthyl MéthanétiosulfonateToronto Research Chemicals, IncO873900
NaClFisher ChemicalS271
Opti-MEMLife Technologies31985-062
Pepstatine AGoldBio.comP-020-5
Acide pluronique F-127 (20 %)PromoKine  ;   ;CA707-59004
PMSFGoldBio.comP4170
Solution de poly-L-lysineSigma-AldrichP4707
Rneasy Mini KitQiagen74104
Capillaire scelléVitroComcommande
SF-900 II SFM (milieu cellulaire d’insecte)Gibco, Life Technologies10902-088
Sf9 Cellules (adaptées SFM)Invitrogen Life Technologies11496-015
Extrait de lipides polaires de sojaAvanti Polar Lipids, Inc541602C
SaccharoseFisherScientific S25590
Superose 6 Increase 10/300 GLGE Healthcare29091596
TCEP HClGoldBio.comTCEP1
Chlorhydrate de tétracyclineFisher ScientificBP912-100
Tris BaseFisher BioReagentsBP152
TryptoneDifco0123-01
X-galGoldBio.comX4281C
Ovocytes de xénopeNascoLM00935M
XL1 - Blue Competent CellsAgilent Technologies, Inc200249
Levure ExtraitDifco0127-01-7
Colonne de chromatographie Econo-PackBio-Rad7321010
Mini-PROTEAN TGX Gels préfabriqués sans colorationBio-Rad17000436
pFastBac1 Vecteur d’expressionInvitrogen Life Technologies10360-014
DH10Bac Cellules compétentesInvitrogen Life Technologies10361-012
Scellant pour tubes capillaires CritisealLeica Microsystems02-676-20
ABI Modèle 3130XL Analyseurs génétiquesApplied Biosystems4359571
Pipette de transfertFishebrand13-711-9AM
Nanoject IIDrummond Scientific3-000-204
spéciale

Références

  1. Liao, M., Cao, E., Julius, D., Cheng, Y. Structure of the TRPV1 ion channel determined by electron cryo-microscopy. Nature. 504, 107-112 (2013).
  2. Cao, E., Liao, M., Cheng, Y., Julius, D. TRPV1 structures in distinct conformations reveal activation mechanisms. Nature.

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Réimpressions et autorisations

Étiquettes

Purification du TRPV1Résonance paramagnétique électroniqueRésonance double électronique-électroniqueSolubilisation par détergentReconstitution protéiqueMutagenèse dirigéeExpression par baculovirusChromatographie d'exclusion stériqueFormation de protéoliposomes