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Article de méthode

Échantillonnage, tri et caractériser les microplastiques dans les milieux aquatiques avec les charges de sédiments en suspension haute et les gros débris flottant

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DOI :

10.3791/57969

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28 juillet 2018

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1Department of Physical and Environmental Sciences, Texas A&M University-Corpus Christi, 2Department of Earth and Atmospheric Sciences, Saint Louis University, 3Department of Oceanography and Coastal Sciences, Louisiana State University, 4Department of Biology, University of Central Florida

Dans cet article

Résumé

La plupart des recherches microplastic à ce jour s’est produite dans les systèmes marins, où les niveaux de solides suspendus sont relativement faibles. Mise au point est maintenant passer à des systèmes d’eau douce, qui peuvent comporter des charges élevées de sédiments et débris flottants. Ce protocole traite de recueillir et d’analyser les échantillons microplastic de milieux aquatiques qui contiennent des hautes charges solides suspendues.

Résumé

L’omniprésence des débris en plastique dans l’océan est largement reconnu par les collectivités publiques, scientifiques et des organismes gouvernementaux. Cependant, seulement récemment ne microplastiques dans les systèmes d’eau douce, tels que des rivières et des lacs, ont été quantifiées. Échantillonnage de Microplastic à la surface généralement consiste à déployer des filets maillants dérivants derrière soit un bateau stationnaire ou en mouvement, ce qui limite l’échantillonnage aux environnements ayant de faibles niveaux de sédiments en suspension et des débris flottants ou immergés. Des études antérieures qui employait des filets maillants dérivants pour recueillir les débris microplastic généralement utilisant filets avec ≥300 µm maillage, permettant des débris en plastique (particules et fibres) inférieure à cette taille pour passer à travers le net et échapper de quantification. Le protocole détaillé ici permet : 1) prélèvement dans des environnements à haute suspendu charges et flottantes ou immergées débris et 2) la capture et la quantification des fibres et de particules de microplastic < 300 µm. les échantillons d’eau ont été recueillies selon une pompe péristaltique dans des contenants de polyéthylène basse densité (PE) pour être stockée avant le filtrage et l’analyse en laboratoire. Filtration a été faite avec un dispositif de filtration sur mesure microplastic contenant des joints union détachables qui abritait des tamis de maille en nylon et mélangés de cellulose filtres de membrane d’ester. Tamis de maille et membranes filtrantes ont été examinés avec un stéréomicroscope à quantifier et à séparer les fibres et particules microplastic. Ces matériaux ont été ensuite examiné en utilisant une réflexion totale atténuée micro spectromètre infrarouge à transformée de Fourier (IRTF micro) pour déterminer le type de polymère de microplastic. Récupération a été mesurée par la fortification des échantillons à l’aide de bleu PE particules et fibres de nylon vert ; pourcentage de récupération a été établie à 100 % pour les particules et 92 % pour les fibres. Ce protocole guidera des études similaires sur microplastiques dans les rivières de grande vitesse avec des concentrations élevées de sédiments. Avec des modifications simples à la pompe péristaltique et filtreur, utilisateurs peuvent recueillir et d’analyser les différents volumes d’échantillon et les tailles de particules.

Introduction

Plastique fut observée dans l’océan, dès les années 19301. Des estimations récentes de la gamme les débris marins en plastique de plus de 243 000 tonnes métriques (TM) de plastique sur la surface des Océans à 12,7 millions de-4,8 MT de plastique entrant dans l’océan de la terre des sources chaque année de2,3. Les premières études sur les débris marins en plastique a été consacrée macroplastics (> 5 mm de diamètre) car ils sont facilement visibles et quantifiables. Toutefois, on a récemment découvert que représentent des macroplastics < 10 % des débris en plastique, en nombre, dans l’océan, ce qui indique que l’écrasante majorité des débris en plastique est microplastic (< 5 mm de diamètre)2.

Microplastiques sont classées en deux groupes : les microplastiques primaires et secondaires. Microplastiques primaires consistant de matière plastique qui est fabriqués dans un diamètre < 5 mm et comprennent nurdles, les boulettes de bruts utilisés pour fabriquer des produits de consommation, microbilles utilisée comme exfoliants en produits de soins personnels (p. ex., lavage de visage, gommage du corps, dentifrice) et de produits abrasifs ou de lubrifiants dans l’industrie. Microplastiques secondaires sont créés au sein de l’environnement comme les débris en plastique est fragmenté par photolyse, à l’abrasion et la décomposition microbienne4,5. Fibres synthétiques sont également microplastiques secondaire et une préoccupation croissante. Un vêtement unique peut libérer > 1 900 fibres / cycle de lavage dans une machine à laver domestique6. Ces microfibres, mais aussi des microbilles de produits d’hygiène personnelle sont lavés dans égouts et dans les égouts, avant d’entrer dans les usines de traitements des eaux usées. Murphy (2016) constaté qu’une usine de traitement des eaux usées desservant une population de 650 000 réduit la concentration de microplastic par 98,4 % des affluents à l’effluent, pourtant microplastiques 65 millions sont restés dans les effluents et des boues chaque jour7. Même avec un pourcentage élevé de microplastiques être supprimés au cours des procédés de traitement, des millions, peut-être des milliards, des microplastiques passent par les usines de traitement des eaux usées par jour et entrer dans les eaux de surface dans les effluents6,8 ,9,10,11.

En raison de leur dissémination dans l’environnement, les microplastiques ont été trouvés dans les tissus digestifs et respiratoires des organismes marins à travers tous les niveaux trophiques12,13,14,15. Leur impact après que absorption est variable, avec quelques études dommage pas d’observation, tandis que d’autres démontrent de nombreux effets tels que les tissus physiques et chimiques des dommages4,6,14,15. En raison de ces découvertes, intérêt dans ce domaine a augmenté au cours des cinq dernières décennies. Toutefois, seulement récemment des études ont commencé à quantifier les débris en plastique, en particulier les microplastiques, dans les systèmes d’eau douce, tels que les rivières et les lacs, ou d’évaluer l’effet sur les organismes de logement dans ces habitats12,16, 17,18. Cours d’eau sont une source importante de débris en plastique trouvé dans l’océan qu’ils reçoivent les effluents d’eaux usées et de ruissellement de l’eau de surface qui contiennent microplastiques et macroplastics.

Le protocole détaillé ici peut être utilisé pour prélever des échantillons de microplastic où les filets dérivants ne sont pas réalisables ; plus précisément, dans les milieux aquatiques avec des concentrations élevées de sédiments en suspension et grandes flottant débris comme le fleuve Mississippi. Le bassin hydrographique du Mississippi est l’un des plus grands du monde et a une population de > 90 millions de personnes, probablement ce qui en fait une des plus importantes sources de débris en plastique à l’océan19,20. Chaque année, le fleuve Mississippi s’acquitte une moyenne de 735 km3 d’eau douce dans le golfe du Mexique, ainsi que de fortes concentrations de sédiments en suspension (~ 60 à > 800 mg/L) et gros débris13,21. Échantillons d’eau ont été prélevés à deux profondeurs (c.-à-d., surface et profondeur de 0,6) à divers endroits le long du fleuve Mississippi et ses affluents dans des contenants de polyéthylène basse densité (PE) 1 L translucide à l’aide d’une pompe péristaltique. En laboratoire, les échantillons ont été filtrés à l’aide de tamis de maille en nylon et mélangés de cellulose ester membranes filtrantes simultanément avec un cylindre de polychlorure de vinyle (PVC) sur mesure 63,5 mm (2,5 po) avec raccords union pour insérer le tamis et filtres22. L’inclusion des syndicats de PVC dans le dispositif de filtration permet de filtration par classes de taille de particules autant ou aussi peu que désiré. En outre, il peut être utilisé pour capturer les débris microplastic bas pour des tailles de sub-micronique utilisant des membranes filtrantes en étudiant des fibres synthétiques. Une fois filtré, les échantillons ont été séchés et plastiques présumés ont été identifiés et triés des tamis de maille et membranes filtrantes sous un stéréomicroscope. Plastiques présumés ont été examinés puis à l’aide de réflexion totale atténuée micro spectroscopie infrarouge à transformée de Fourier (IRTF micro) pour éliminer les matières non synthétique ou déterminer le type de polymère. Compte tenu de la taille de microplastic particules et de fibres, la contamination est monnaie courante. Sources de contamination comprennent les dépôts atmosphériques, vêtements, équipement de terrain et de laboratoire, ainsi que désionisée (DI) sources d’eau. Plusieurs étapes sont inclus dans le protocole visant à réduire la contamination provenant de diverses sources en effectuant toutes les étapes de l’étude.

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Protocole

1. prélèvement d’échantillons de l’eau

  1. Prélever des échantillons d’eau et qualité des données d’intérêt en bateau où la rivière est bien mélangée, idéalement aux endroits où le stade de rivière ou de la décharge est connu (par exemple, stations de jaugeage d’United States Geological Survey (USGS)) de l’eau. 20 pour vous assurer que l’eau est bien mélangée, guider le bateau à l’aide d’un mètre de poche plongé dans la rivière où la conductivité reste relativement constante.
  2. Aux sites d’échantillonnage, coordonnées d’enregistrement emplacement et profondeur. Pour trouver la profondeur de 0,6, il suffit de multiplier la profondeur totale de 0,6. Mesure des paramètres de qualité de l’eau d’intérêt (p. ex., turbidité, température, conductivité, pH et oxygène dissous (OD)) à l’aide d’un mètre de poche. Pour mesurer les paramètres, pomper de l’échantillon d’eau de la profondeur désirée dans un conteneur de large-bouche à l’aide de la pompe péristaltique et prendre immédiatement les mesures (étape 1.5).
  3. Utiliser une pompe péristaltique avec la tuyauterie pour obtenir des échantillons de la surface et la profondeur de 0,6. Fixer la longueur de tube correct à la pompe pour la profondeur donnée.
    1. En raison des forts courants dans les réseaux hydrographiques, attacher une chaîne de 6,4 mm soudé au tuyau de pompe à l’aide d’attaches pour aider le poids le tuyau. À la fin de la chaîne, placez un bloc de poids ou de ciment à poids la chaîne et le tube.
      Mise en garde : Ne pas fixer le bloc de ciment ou de poids directement sur le tuyau de la pompe.
  4. Placer l’extrémité effluent du tuyau par-dessus bord du bateau, de vêtements qui pourraient jeter des fibres. Abaissez lentement la fin dans les affluents du tuyau à la profondeur désirée (c.-à-d., la surface ou 0,6-profondeur). Ensuite, faites fonctionner la pompe en marche arrière pour purger la tuyauterie avec de l’air pendant au moins 30 s. Après la purge de l’air, l’inversion de la pompe et rincer la tubulure avec échantillon d’eau de la profondeur voulue tout en laissant l’eau s’écouler du bateau ou dans un conteneur à déchets. Arrêter la pompe, après que le tube a été rincé pendant au moins 30 s.
  5. Rincer le récipient utilisé pour des mesures de qualité de l’eau trois fois avec l’échantillon d’eau, dumping de l’eau de rinçage chaque fois. Une fois rincés, remplir le réservoir d’eau de l’échantillon et de mesurer les paramètres de qualité de l’eau d’intérêt à l’aide d’un mètre de poche (étape 1.2).
  6. Recueillir un sous-échantillon de microplastic en plaçant l’effluent d’un tube dans un récipient de 1 L étiquetés, qui a été rincé au préalable au moins 250 mL de l’eau distillée trois fois. Ensuite, rincer le contenant trois fois avec l’échantillon d’eau, jeter l’eau de rinçage chaque fois. Une fois que le conteneur microplastic est rincé, remplissez-le avec l’échantillon.
  7. Utilisant la même méthode de pompe péristaltique décrite à l’étape 1.6, recueillir un sous-échantillon de matières en suspension (TSS) dans une bouteille de 250 mL étiquetés, qui a été rincés au préalable au moins 100 mL de l’eau distillée trois fois. Rincez la bouteille trois fois avec l’échantillon d’eau, jeter l’eau de rinçage chaque fois. Une fois que le récipient de TSS est rincé, remplissez-le avec l’échantillon.
  8. Recueillir champ réanalysés et espaces au moins une fois par jour dans le champ, de la même manière décrite dans les étapes 1.6-1.7, à des fins de qualité assurance qualité/contrôle (AQ/CQ). Pour collecter un blanc, amener deux flacons de 1 L de DI l’eau sur le terrain. Après avoir purgé le tuyau de la pompe avec de l’air, ouvrez le premier récipient de l’eau distillée et rincer le tuyau de la pompe à l’aide de la méthode décrite à l’étape 1.4. Une fois que le tube est rincé, ouvrez la deuxième contenant de l’eau distillée et pompez dans un contenant vide de 1 L et une bouteille de 250 mL pour microplastic et flans de TSS, respectivement.
  9. Stocker les microplastic et les sous-échantillons de TSS sur la glace jusqu’au retour au laboratoire, où ils seront conservés à-20 ° C jusqu'à ce qu’elles sont traitées.
    Mise en garde : Veillez à laisser un espace de tête dans les contenants des échantillons afin qu’ils ne soient pas endommagés en raison de l’expansion de la glace en gelant.
    Remarque : Le protocole peut être suspendu ici.

2. TSS détermination

  1. Méthode d’utilisation United States Environmental Protection Agency (USEPA) 160,2 pour déterminer TSS avec les sous-échantillons de 250 mL recueillis dans le champ23. Comparer les valeurs calculées de TSS avec les plastiques totales trouvés.

3. Assemblée de dispositif de Filtration Microplastic

  1. Bien rincer les tamis de maille de filtration périphérique et en nylon (Figure 1) trois fois au moins 250 mL de l’eau distillée. Placez les tamis de maille de la taille des pores souhaitée (par exemple, 50 µm, 100 µm, 300 µm, 500 µm) dans chacune des unions en collaboration avec pore taille décroissant du haut vers le bas de l’appareil de filtration (Figure 1 a). Sceller chaque union mixte en tassant bien pour éviter des fuites.
  2. Plier les filtres de membrane d’ester cellulose mixtes (142 mm de diamètre) de format interstitiel souhaitée (par exemple, 0,45 µm) en forme de cône et placez-le dans le dispositif de filtration :
    Remarque : Pliage de la membrane filtrante fournira plus de superficie pour éviter tout colmatage du filtre.
    1. Mouiller le filtre à membrane avec l’eau distillée. Humide, plier le filtre à membrane en forme de cône ayant un diamètre qui s’insère dans le dispositif de filtration. En outre, plier un petit rebord le long du bord du cône afin qu’il tienne sur le dessus de l’union mixte (Figure 1 b).
      Mise en garde : Le filtre à membrane doit être humide avant de plier pour éviter le déchirement.
    2. Placez le panier de maille d’inox dans le dernier Syndicat mixte (Figure 1). Placez soigneusement le filtre à membrane en forme de cône dans le panier (Figure 1). Pliez le rebord de la membrane filtrante sur le bord de l’union mixte.
      Remarque : Le panier de maille soutiendra le filtre et réduire la rupture une fois que le vide a été appliqué.
  3. Place un maillage de tamis avec la plus petite taille de pore souhaitée (par exemple, 50 µm) sur le dessus de la membrane filtrante dans l’union dernière commune voit dans la Figure 1.
    Remarque : Cela fournira un soutien supplémentaire pour maintenir le filtre à membrane en place lors de la filtration.
  4. Une fois que tous les joints d’union sont scellés hermétiquement, raccorder le tuyau du haut de la fiole filtrante à la base de l’appareil de filtration. Ensuite, connecter le tuyau du côté de la fiole filtrante à la pompe à vide tel qu’illustré à la Figure 2.

figure-protocol-1
Figure 1 : Assemblage du dispositif filtration. (A) le dispositif de filtration est assemblé en plaçant des tamis de maille de la taille des pores désiré dans les articulations supérieures du syndicat. (B), la cellulose mixte ester membrane filtre doit être plié en un cône pour adapter le diamètre de l’appareil de filtration ; le cône devrait inclure un petit rebord pour s’adapter sur le bord de l’union mixte pour garantir le filtre en place. (C), un maillage panier est placé dans l’union d’accroître la stabilité de la membrane filtrante. (D), le filtre à membrane plissée est ajouté à l’ensemble de la maille et la plus petite taille de tamis de maille est placée sur le dessus de la membrane filtrante. Dispositif de filtration (E) l’entièrement assemblé. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

figure-protocol-2
Figure 2 : Assemblage du ballon et pompe filtrage. Une fiole filtrante est attachée à la filtration sous vide l’adaptateur de périphérique à l’aide d’un tuyau en vinyle transparent. La fiole filtrante est ensuite attachée à la pompe à vide. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

4. Filtration de l’échantillon

  1. Recueillir des ébauches de matériel avant la filtration chaque fois que l’appareil est assemblé. Bien rincer l’appareil trois fois au moins 250 mL de l’eau distillée avant l’essai à blanc est collecté. Ces flans sont collectées en suivant les étapes décrites aux étapes 4.2-4.4.
  2. Tourner sur la pompe à vide. Veiller à ce que la pression de la pompe à vide n’excède pas 127 mm Hg, ou le filtre à membrane peut se déchirer.
    Mise en garde : Fonction du débit de filtration de l’échantillon, la pression pourrait augmenter à l’intérieur de l’appareil de filtration si sédiments obstrue le tamis de maille ou des membranes filtrantes. Cela pourrait entraîner une rupture de la membrane filtrante avant d’arriver à une lecture de 127 mm Hg. Pour cette raison, attentif la pression qu’il peut devoir être ajustée inférieures à 127 mm Hg sur une base d’un échantillon de.
  3. Utiliser un vérin jaugée de 500 mL, triple rincé avec au moins 250 mL de l’eau distillée, pour mesurer le volume total de l’échantillon. Noter le volume et transférer l’échantillon de l’éprouvette graduée dans le dispositif de filtration.
    Mise en garde : Selon la taille de l’échantillon de l’eau et la fiole filtrante, la fiole filtrante devrez peut-être être vidé plusieurs fois lors de la filtration de l’échantillon.
    1. Pour vider la fiole filtrante, arrêter la pompe et détacher les deux flexibles du flacon. Vider le ballon dans un conteneur à déchets séparé.
      Mise en garde : Garder l’eau de l’échantillon filtré jusqu'à ce que la totalité de l’échantillon a été filtré et il est confirmé que le filtre à membrane est intact.
    2. Pour continuer le cycle de filtration, relier les tuyaux à la fiole filtrante, tel qu’il est décrit à l’étape 3.4 et tourner sur la pompe.
  4. Une fois que la totalité de l’échantillon a été filtré, rincez le récipient à échantillon et éprouvette graduée trois fois au moins 250 mL de l’eau distillée. Après chaque rinçage, filtrer l’eau pour rincer le récipient et le cylindre gradué pour s’assurer que toutes les particules ont été filtrés.

5. démontage de dispositif de Filtration Microplastic

  1. Rincer les parois de l’appareil de filtration trois fois avec au moins 250 mL de l’eau distillée pour s’assurer que toutes les particules ont été filtrés et aucun continuer à figurer sur le dispositif de filtration.
  2. Éteindre la pompe à vide, puis dévissez et retirez le premier syndicat. Remettez la pompe en marche et une bouteille de lavage d’eau DI permet de rincer les bords de l’articulation du syndicat. Laver les particules sur les bords de la tamis à mailles au Centre pour s’assurer qu’ils sont tous recueillis.
  3. Arrêtez la pompe et retirer le tamis à mailles soigneusement avec une pince propre, en veillant à ne pas y toucher les particules sur la surface du tamis à mailles de la. Placez le tamis de maille dans un couvert de Pétri et séchez-le à 60 ᵒC pendant 24 h. Une fois sèches, les échantillons peuvent être conservés jusqu'à ce que l’analyse peut commencer.
  4. Répétez les étapes 5.1-5.3 pour chaque conjoint Syndicat logement un tamis à mailles.
  5. Pour la dernière union mixte qui abrite un filtre à tamis tamis et membrane, répétez les étapes 5.1-5.3 pour le tamis de maille.
    Mise en garde : Soyez prudent lorsque rincer le tamis à mailles, comme échantillon peut être perdu si rincé sous le filtre à membrane.
  6. Allumer la pompe à vide et rincer les bords de la membrane filtrante à l’aide d’une bouteille de lavage d’eau DI. Particules de lavage sur les bords de la membrane filtrante dans le Centre afin d’assurer l’ensemble de l’échantillon est filtré. Avant d’enlever le filtre à membrane, veiller à ce que toute l’eau ait franchi et qu’aucune eau n’est usée à sa surface.
    Mise en garde : Encore une fois, soyez prudent lorsque le rinçage de la membrane filtrante comme échantillon peut être perdu si rincé sous elle.
  7. Retirez délicatement et se dérouler de la membrane filtrante avec la pince. Placez le filtre à membrane dans une boîte de Pétri ou enveloppe d’aluminium pour son diamètre.
    Remarque : Le filtre à membrane doit être humide tout en étant traitées pour éviter le déchirement.
  8. Sécher le filtre à membrane couverte dans le four à ᵒC 60 pendant 24 h. Une fois sec, conserver les échantillons jusqu'à ce que l’analyse peut commencer.
    Remarque : Le protocole peut être suspendu ici.

6. particules analyse

  1. Laisser le filtre tamis ou la membrane dans la boîte de Pétri et enlever seulement le couvercle pour commencer l’examen de l’échantillon pour microplastiques. Cela fera en sorte que si les particules tombent le filtre à tamis ou membrane tamis qu'ils resteront dans la boîte de Pétri, qui peut être analysé après toutes les particules sont retirés du filtre tamis ou de la membrane.
  2. Examiner le filtre à tamis tamis ou membrane sous un stéréomicroscope (grossissement de X 14-90) pour identifier les fibres et particules en plastique présumés. Utilisez les critères suivants lors de l’identification de suspects plastiques : aucune structure cellulaire, fibres sont tout au long de la même épaisseur et particules ne sont pas brillant24.
  3. Vous devez démonter les plastiques tout présumés du filtre à tamis ou membrane mesh et rangez-les dans un flacon contenant de l’éthanol à 70 %. Enregistrer la couleur et la forme (p. ex., particules, fibres, film, etc.) de chaque plastique présumé.
  4. Une fois que tous les plastiques présumés sont retirés le filtre tamis ou membrane et quantifiés, examinez le couvercle et le bas de la boîte de Pétri suivant étapes 6.2-6.3.
  5. Après la maille des tamis ou membrane filtrante et Pétri ont été examinés et tous les plastiques présumés enlevés et quantifié, placez les particules ou fibres à partir du flacon de collection sur une lame revêtus d’aluminium 12 emplacements pour analyse à l’aide d’un micro IRTF.
    Remarque : Il n’est pas toujours possible de tester chaque plastique présumé sur le micro IRTF. Par conséquent, « stratégiquement choisis » le montant qui portera sur les objectifs de l’étude et les anomalies dans les présumés plastiques (par exemple, un nombre élevé de particules ou de fibres similaires)25. Dans un sens général, essai de nombreux suspects plastiques que possible, mais pas moins de 20 %.
    1. Une fois les plastiques présumés sont analysées à l’aide de micro-IRTF, utilisation de bases de données spectrales pour déterminer si un échantillon donné est en plastique et, dans l’affirmative, déterminer le type de polymère de plastique.

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Résultats

Pour valider le taux de récupération du présent protocole, trois échantillons (V1V -3) de la baie de Oso, Corpus Christi, au Texas (à côté de la Texas A & M University Campus de Corpus Christi), ont été fortifiés avec 10 particules PE bleus (allant de 50 à 100 µm diamètre) et des fibres de nylon vert 50 de différentes longueurs (Figure 3). TSS de l’échantillon a été calculée (Section 2), puis les échantillons filtrés en utilisant les...

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Discussion

Collection de Microplastic à l’aide de filets maillants dérivants est la méthode conventionnelle dans des environnements comme l’océan où les sédiments et les concentrations en plastique sont des volumes faibles, nécessitant ainsi une large échantillon. Cependant, filets dérivants ne sont pas toujours pratique ou sécuritaire dans les rivières avec les charges de sédiments haute et grande flottant ou débris submergés. En outre, il n’est pas possible d’utiliser un filet dérivant lorsqu’une tentative de soigneusement captur...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Le projet pour lequel le présent protocole a été établi a été financé par la National Oceanic and Atmospheric Administration (NOAA) programme de débris marins (# NA16NO29990029). Nous remercions Miles Corcoran au National grand fleuves Research and Education Center (NGRREC) à Alton, Illinois, de l’aide avec l’opération de sélection et de bateau de site. Travail de terrain et de laboratoire a été réalisé avec l’aide de Camille Buckley, Michael Abegg, Josiah Wray et Rebecca Wagner.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Conteneurs Cubitainer de 1 L, polyéthylène basse densitéVWR89094-140Conteneurs utilisés pour la collecte et le stockage des échantillons.
2-1/2" Clear Schedule 40 Rigid PVC PipeUnited States Plastic Corporation34138Le tuyau en PVC utilisé pour fabriquer l’appareil se présente sous la forme d’un tuyau de 2,43 m. Le tuyau a ensuite été coupé à la longueur souhaitée pour chaque section séparée par des joints d’union. Les longueurs de section ont été décidées en prédisant que des pores plus petits obstrueraient le dispositif plus rapidement. Des sections plus longues ont été placées au-dessus des pores plus petits pour recueillir et retenir l’eau afin d’éviter d’avoir à démonter l’appareil pour changer un filtre pendant qu’un échantillon restait dans l’appareil. Pour un appareil de filtration, un de 18 po, un de 12 po et deux de 6 po sont nécessaires.
2-1/2" PVC SCH 40 Socket Union  ;Les joints de l’union de la maison d’approvisionnement457-025ont été collés à des tuyaux en PVC pour loger des tamis en nylon et des membranes de cellulose mixte.
Feuille de maille tissée en nylon 6, blanc cassé opaque, 12 » de largeur, 12 » de longueur, taille de maille de 500 microns, 38 % de surface ouverte (paquet de 5)Petites pièces via AmazonCMN-0500-C / 5PK-05Les feuilles de maille ont été coupées en cercles pour correspondre au diamètre du diamètre extérieur du tuyau en PVC. Les bords ont été collés pour s’assurer qu’il n’y aurait pas d’effilochage. Le diamètre de la colle ne doit pas s’étendre dans le diamètre intérieur du PVC afin qu’il ne soit pas affecté lors de la filtration.
Feuille de maille tissée en nylon 6, blanc opaque, 12 » de largeur, 12 » de longueur, taille de maille de 100 microns, 44 % de surface ouverte (paquet de 5)Petites pièces via AmazonB0043D1TB4Les feuilles de maille ont été coupées en cercles pour correspondre au diamètre du diamètre extérieur du tuyau en PVC. Les bords ont été collés pour s’assurer qu’il n’y aurait pas d’effilochage. Le diamètre de la colle ne doit pas s’étendre dans le diamètre intérieur du PVC afin qu’il ne soit pas affecté lors de la filtration.
Feuille de maille tissée en nylon 6, blanc opaque, 12 » de largeur, 12 » de longueur, taille de maille de 50 microns, 37 % de surface ouverte (paquet de 5)Petites pièces via AmazonB0043D1SGALes feuilles de maille ont été coupées en cercles pour correspondre au diamètre du diamètre extérieur du tuyau en PVC. Les bords ont été collés pour s’assurer qu’il n’y aurait pas d’effilochage. Le diamètre de la colle ne doit pas s’étendre dans le diamètre intérieur du PVC afin qu’il ne soit pas affecté lors de la filtration.
Membrane mixte d’ester de cellulose, 0,45 um, 142 mm, 25/pqtVWR10034-914Un filtre à membrane de cellulose mixte de 0,45 um a été utilisé comme dernier filtre. Un grand diamètre a été utilisé pour permettre au filtre d’être plié en un cône afin d’augmenter la surface du filtre afin d’éviter le colmatage.
Panier en maille métallique Feuilles de thé Passoire Théière Filtre 76mm Dia 3pcsUxcell via Amazona15071600ux0260Le panier en maille utilisé pour fournir un support supplémentaire au filtre à membrane afin d’éviter la déchirure lorsque la pression était appliquée par une pompe à vide.
Maison d’alimentationl’adaptateur mâle à insert cannelé en PVC 1/2" 1436-005Un adaptateur à vide a été ajouté pour permettre la filtration sous vide dans le cas d’une filtration lente en raison d’une forte concentration de sédiments.
Tube en vinyle transparent en PVC de 1/2 po x 3/8 po de diamètre extérieur x 10 piDepot702229Tube utilisé pour connecter la pompe à vide au dispositif de filtration.
Appareil multiparamètre YSI Professional Plus avec câble QuatroYSI6050000Appareil de mesure portable utilisé pour mesurer des paramètres supplémentaires de la qualité de l’eau (par exemple, la turbidité, la température, la conductivité, le pH et l’oxygène dissous (OD)).
2100P Turbidimètre portableHach4650000Compteur portable utilisé pour mesurer la turbidité.
Tube PE doublé de FEPGeotech87050529Tube utilisé avec une pompe perestaltique pour collecter des échantillons d’eau à partir des profondeurs souhaitées.
Pompe péristaltique Geopump Series IIGeotech91350123Pompe utilisée pour collecter des échantillons d’eau.
Microscope MeiJi Techno EMZ-8TRMicroscope.comEMZ8TR-PLS2utilisé pour analyser les tamis à mailles et les filtres à membrane pour identifier les microplastiques suspects.
Spectromètre Nicolet iS10 FTIRThermo Electron North America912A0607FTIR utilisé pour analyser les microplastiques suspects.
Microscope FTIR Nicolet iN5Thermo Electron North America912A0895Microscope FTIR utilisé pour analyser les microplastiques suspects.
Germanium (Ge) ATRThermo Electron North America869-174400Geranium ATR accessoire utilisé avec le microscope FTIR Nicolet iN5 pour analyser les microplastiques suspects.
Micro-montures EZ-Spot en aluminium (paquet de 5)Thermo Electron North America0042-545Lames de microscope utilisées avec le microscope FTIR Nicolet iN5 pour analyser les microplastiques suspects.
Lames d’échantillon en verre revêtu d’aluminiumThermo Electron North America0042-544Lames de microscope utilisées avec le microscope FTIR Nicolet iN5 pour analyser les microplastiques suspects.
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Références

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