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Article de méthode

Analyse des N- glycans de Raphanus sativus Cultivars à l’aide de PNGase H+

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DOI :

10.3791/57979

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25 juin 2018

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Dans cet article

Résumé

Nous décrivons une méthode simple et rapide pour la préparation et l’analyse des N- glycans de différents cultivars de radis (Raphanus sativus).

Résumé

Ces dernières années, les fractions glucidiques de plantes ont reçu une attention considérable, car ils sont une source potentielle de la réponse immunitaire croisée, provoquant des allergies. En outre, structures glucidiques jouent également un rôle essentiel dans le métabolisme de la plante. Nous présentons ici une méthode simple et rapide pour la préparation et l’analyse des N- glycans de différents cultivars de radis (Raphanus sativus) à l’aide d’un N- glucanase spécifique pour la libération des structures végétales glucidiques. Pour y parvenir, brute de l’acide trichloroacétique précipités des homogénats de radis ont été traitées avec PNGase H+et étiquetées à l’aide de 2-aminobenzamide comme une balise fluorescente. Étiqueté N- glycanes échantillons ont été analysés par la suite par séparation par chromatographie liquide (UPLC) ultra performant et laser assistée par matrice desorption ionisation-temps de spectrométrie de masse (MALDI-TOF) de vol pour une structure détaillée évaluation et quantification relatives abundancies des N- glycanes structures dérivées de radis. Ce protocole peut également être utilisé pour l’analyse des N- glycans de diverses autres espèces végétales et peut-être être utile pour une enquête plus approfondie de la fonction et les effets des N- glycans sur la santé humaine.

Introduction

N- glycanes chez les plantes ont attiré l’attention accrue ces dernières années, que des recherches antérieures a souligné N- glycans comme une source potentielle des réactions immunologiques croisées qui peut provoquer des réactions allergiques1,2 . Il a été démontré précédemment que N- glycans sur les glycoprotéines de la plante peut affecter l’activité catalytique3,4, thermostabilité et pliage5,6 ou localisation subcellulaire et 7de sécrétio....

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Protocole

1. le prélèvement

  1. Acheter différents cultivars de frais radis (Raphanus sativus L.).

2. isolement des protéines de radis

  1. Homogénéiser environ 100 g de radis frais avec un mixeur de cuisine pendant 10 min.
  2. Transférer la pâte dans un tube à centrifuger de 50 mL et centrifuger à 14 000 × g à 4 ° C pendant 20 min enlever la matière insoluble.
  3. Transvaser le surnageant soigneusement dans un nouveau tube de centrifuger de 50 mL et ajouter un volume égal de solution d’acide trichloracétique (TCA) de 2 M.
    NOTE : Ajout des TCA précipitera soluble (glyco) protéines.
  4. Centrifug....

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Résultats

La figure 1 montre un aperçu schématique du protocole décrit, notamment l’isolement des protéines (glyco-) de radis, la préparation des N- glycans, l’analyse de l’UPLC et l’analyse de MALDI-TOF-MS de ces composants. La figure 2 montre les chromatogrammes UPLC représentatifs de dérivés N- glycans des cultivars radis analysées. La figure 3 montre les résultats obtenus des 2AB-dérivati.......

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Discussion

Le protocole que nous avons présenté ici permet la comparaison des profils N- glycanes de diverses variétés de radis. Un avantage important de cette méthode par rapport aux protocoles existants, c’est qu’aucun changement de tampon entre la libération enzymatique de N- glycanes et la réaction de dérivatisation avec 2-AB n’est requises. L’étape la plus critique de cette procédure est la purification des N- glycans utilisant la colonne SPE, comme un échec pour enlever les sels ou autres impuretés .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu en partie par la Fondation des sciences naturelles de Chine (accorder des numéros 31471703, A0201300537 et 31671854 à J.V. et L.L., octroyer le numéro 31470435 à G.Y.) et le Plan de Talents étrangers 100 (numéro de licence JSB2014012 à J.V.).

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
>
  ;SCR, Shanghai80132618
Acide acétique glacialHuada, Guangzhou64-19-7
AcétonitrileRéactif généralG80988C
Acide trifluoroacétiqueÉnergie chimiqueW810031
2-aminobenzamideHeowns, TianjinA41900
Cyanoborohydrure de sodiumJ& K Scientific Ltd314162
Dimethyl sulfoxideHuada, Guangzhou67-68-5
Échelle de dextran marquée 2AB, 200 pmolAgilent TechnologiesAT-5190-6998
6-Aza-2-thiothymine  ;Sigma275514
Outils/Matériaux :
Mélangeur de cuisineBear, GuangzhouLLJ-A10T1
CentrifugeuseTechcompCT15RT
Évaporateur centrifugeHualida, TaicangLNG-T120
Colonne SPESupelcoSupelclean ENVI Carb SPE
Spectromètre de masse MALDI-TOFBrukerAutoflex
HPLC Analyse :
Flacon HPLC à haute récupérationAgilent Technologies  ;# 5188-2788
Système HPLCShimadzuNexera
Détecteur de fluorescence pour HPLCShimadzuRF-20Axs  ;
Four à colonneHengxinCO-2000
HPLCColonne WatersAcquity UPLC BEH colonne glycane2.1 × ; 150 mm, 1.7 &mu ; Eau
qualité LCMSMerck Millipore#WX00011
Acétonitrile de qualité LCMSMerck Millipore# 100029
Acide formiqueAladdinF112034
Solution d’ammoniacAladdinA112080
fort de

Références

  1. Altmann, F. The Role of Protein Glycosylation in Allergy. International Archives of Allergy and Immunology. 142 (2), 99-115 (2007).
  2. Van Ree, R., et al. β (1, 2)-xylose and α (1, 3)-fucose residues have a strong contribution in IgE binding to plant glycoallergens. Journal of Biological Chemistry<....

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Réimpressions et autorisations

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