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Article de méthode

Multiplex suivi thérapeutique pharmacologique par dilution isotopique HPLC-MS/MS des antibiotiques dans les maladies graves

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DOI :

10.3791/58148

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30 août 2018

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1Institute of Laboratory Medicine, University Hospital, LMU Munich

Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici un protocole de basé sur la spectrométrie de masse en tandem pour la quantification des antibiotiques fréquemment utilisés dans les unités de soins intensifs, nommément céfépime, méropénem, ciprofloxacine, la moxifloxacine, linézolide et pipéracilline.

Résumé

Il y a une demande croissante pour le suivi thérapeutique pharmacologique des antibiotiques dans de nombreuses installations cliniques, en particulier en ce qui concerne la mise en œuvre de programmes d’intendance aux antibiotiques de l’hôpital.

Dans les travaux en cours, nous présentons un Protocole multiplex haute performance liquid chromatography-spectrométrie de masse (HPCL-MS/MS) pour la quantification du céfépime, méropénem, ciprofloxacine, la moxifloxacine, linézolide et pipéracilline, couramment utilisés antibiotiques dans les unités de soins intensifs. La méthode était déjà complètement validée conformément aux lignes directrices de l’Agence européenne des médicaments.

Après un nettoyage rapide d’échantillon, les analytes sont séparés sur une colonne CLHP en phase inverse C8 en 4 minutes et quantifiés avec stables isotopes marqués internes normes correspondantes dans électrospray (ESI +) spectrométrie de masse en réaction multiples le temps de surveillance (MRM). La méthode présentée utilise une instrumentation simple offrant des conditions chromatographiques uniformes, ce qui permet le suivi quotidien et robuste thérapeutique antibiotique dans les laboratoires cliniques. La courbe d’étalonnage s’étend sur la plage de concentration pharmacocinétiques, donc y compris les montants antibiotiques à proximité de la concentration minimale inhibitrice (CMI) des bactéries sensibles et les concentrations maximales (Cmax) qui sont obtenues avec un bolus schémas d’administration. Sans la nécessité de la dilution du sérum avant le nettoyage de l’échantillon, l’aire sous la courbe pour un antibiotique administré peut être obtenue par le biais de mesures multiples.

Introduction

Bien que les antibiotiques ont révolutionné la pratique de la médecine, des infections bactériennes sévères demeurent des principales causes de morbidité et de mortalité dans les maladies graves1. À cet égard, l’administration rapide d’un anti-infectieux adapté à un dosage adéquat est de l’importance supérieure pour maladie contrôle2.

Un corps croissant d’évidence montre que le traitement empirique avec des antibiotiques à large spectre devient de plus en plus problématique avec la complexité des populations de patients. Ceci est particulièrement vrai pour les unités de soins intensifs (USI), où une énorme variabilité interindividuelle des principaux paramètres pharmacocinétiques de (PK) est fréquemment observée3,4. Par conséquent, les patients ICU courent un risque imminent de niveaux sous thérapeutiques avec le danger d’un succès thérapeutique insuffisant5,6. Là encore, les patients sont inutilement exposés à des concentrations d’antibiotique excessivement élevées pouvant entraîner des événements indésirables graves avec aucun des avantages cliniques7. L’abus d’antibiotiques et de la posologie insuffisante ont également alimenté la diffusion de la résistance aux antibiotique, qui devient une menace croissante pour la santé publique8.

D’améliorer l’utilisation des antibiotiques et de préserver leur effectivenessas longtemps que possible, l’Organisation mondiale de la santé a lancé un plan d’action global sur la résistance antimicrobienne en 20159. Programmes d’intendance antibiotiques constituent une pierre essentielle angulaire d’utilisation prudente des antimicrobiens en national de santé publique stratégies10, aider les cliniciens à améliorer sensiblement la qualité des soins aux patients11 et, en même temps, la réduire la résistance aux antibiotiques12. Antimicrobiens chez chaque patient par le biais de l’application du médicament thérapeutique suivi (TDM) est un instrument clé dans ce contexte13.

À ce jour, disponible dans le commerce TDM essais sont uniquement disponibles pour les antibiotiques glycopeptides et aminoglycosides. La quantification des substances des autres classes nécessite généralement un développement de la méthode interne ou une validation qui peut être encombrante. Nous avons, par conséquent, présenter en détail le protocole pour un dosage basé sur la spectrométrie de masse solide qui peut être utilisé pour la quantification des antibiotiques plus pertinents aux soins intensifs au sein de leurs gammes de concentration pertinente clinique14. La méthode a récemment mis en place dans nos installations de spectrométrie de masse et a été appliquée pour la TDM en réanimation de routine depuis lors. La procédure utilise un cadre analytique simple et direct avec un nettoyage uniforme échantillon, permettant la mise en oeuvre rapide des antibiotiques TDM dans de nombreuses installations avec des capacités de spectrométrie de masse.

Le protocole décrit ici a été optimisé pour la quantification du céfépime, méropénem, ciprofloxacine, la moxifloxacine, linézolide et pipéracilline dans le sérum humain, en utilisant la chromatographie liquide (LC) à dilution isotopique en combinaison avec un tandem mass spectrométrie (MS/MS). Pour la dilution isotopique méthodologie LC-MS/MS, composés marqués isotopes stables sont ajoutés à un échantillon d’intérêt avec une matrice spécifique (p. ex., sérum). Isotopes marqués normes peuvent distinguer de leurs homologues non étiquetées, à savoir l’analyte d’intérêt, en raison de différents poids moléculaires de la molécule naturelle et leurs produits de fragmentation, appelés une transition ion-pour-fille-ion parent. Comme composés marqués isotopes ont un comportement physico-chimique globalement presque identique par rapport à leurs homologues non étiquetées, ils sont des étalons internes idéales pour la SM/SM, ce qui permet une quantification de l’analyte presque indépendante de matrice avec un degré élevé de 15de précision. De nos jours, nombreux stables isotopes marqués normes interne qui peuvent être utilisés pour la quantification de petites molécules, y compris la TDM d’antimicrobiens, sont disponibles dans le commerce.

La séparation chromatographique de l’antibiotique analyser dans le protocole décrit est réalisée avec une colonne en phase inversée C8 alkyl-longueur de la chaîne analytique (100 mm x 2,1 mm, 3 µm taille des particules). Au cours du développement de la méthode, les éléments de la matrice normalisée standard interne pour tous les analytes était de 94,6 % à 105,4 %, avec un coefficient de variation de ≤8.3 %14.

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Protocole

Remarque : Il est recommandé de travailler sous une hotte lors de la manipulation de solvants organiques, comme le méthanol. Préparer tous les tampons et les phases mobiles dans des fioles jaugées. Si non précisés, les solutions peuvent être conservées à température ambiante pendant environ 1 mois après préparation.

1. préparation des étalons et des échantillons de contrôle de la qualité

Remarque : Une fiche d’analyse de données correspondant pour la préparation de solutions de stock et spike est donnée dans le Fichier supplémentaires. Pour des raisons de traçabilité, insérer le fabricant, numéro de catalogue et un numéro de lot de chaque antibiotique dans les colonnes correspondantes. Dissoudre tous les antibiotiques en une chambre froide à 4 ° C et garder le temps de travail le plus court possible.

  1. Préparation de 100 mL de méthanol à 25 % dans l’eau : pré-remplir une fiole jaugée de 100 mL avec 25 mL de méthanol absolu et remplissez-le à 100 mL d’eau distillée.
  2. Préparer 10 mL d’acide acétique 200 mM dans l’eau : pré-remplir une fiole jaugée de 10 mL avec 9 mL d’eau de qualité HPLC, ajouter 115 µL d’acide acétique (pureté de 99,5 %, 17,4 M) et ajouter de l’eau distillée jusqu'à 10 mL.
  3. Préparer 25 mL de méthanol à 25 % dans l’eau avec l’acide acétique 20 mM : pré-remplir une fiole jaugée de 25 mL avec 2,5 mL de la solution d’acide acétique aqueux de 200 mM, ajouter 6,25 mL de méthanol absolu et remplir le flacon de 25 mL d’eau distillée.
  4. Utiliser une balance de précision pour peser les montants appropriés des antibiotiques dans les tubes coniques 15 mL comme indiqué dans le Fichier supplémentaire dans la colonne poids initial.
  5. Préparer les solutions des fluoroquinolones, la ciprofloxacine et moxifloxacin dans le méthanol / eau de 25 % dont 20 mM d’acide acétique. Pour ce faire, ajoutez le volume correspondant aux quantités pondérées tel que décrit dans le Fichier supplémentaire dans la colonne « volume final ». Rapidement dissoudre les antibiotiques fluoroquinolones dans un bain à ultrasons pendant 2 min et au vortex intense.
  6. Préparer les solutions de céfépime, méropénem, linézolide et pipéracilline dans le méthanol / eau de 25 %. Pour ce faire, ajoutez le volume correspondant aux quantités pondérées comme décrit dans le Fichier supplémentaire dans la colonne volume final et dissoudre rapidement les antibiotiques au vortex intense. Dissoudre le Méropénem comme la dernière substance.
  7. Combiner les solutions mères de tous les antibiotiques tel que décrit dans le tableau correspondant volume de solution mère dans le Fichier supplémentaire pour produire dix fois spike-solutions concentrées.
  8. Spike neuf volumes de sérum exempt de drogues avec un volume des solutions concentrées spike dix fois pour obtenir les calibrateurs de sérum 0 – 7 et contrôle de qualité (QC) A – D. Par exemple, ajouter 0,5 mL de solution de spike à 4,5 mL de sérum dans un tube en polypropylène 10 mL et il incuber pendant 15 min dans l’entreposage au froid à 4 ° C sur un mélangeur à rouleaux à 50 tr/min.
  9. Utiliser une pipette à répétition pour générer 100 µL d’extraits des étalons et des QCs dans les tubes en polypropylène de 1,5 mL.
  10. Stocker les calibrateurs, contrôles qualité et antibiotiques solutions mères à-80 ° C jusqu'à six mois.
  11. Pour chaque antibiotique, également préparer une solution propre contenant 1 000 mg/L d’un seul antibiotique. Diluer la solution mère correspondante avec un diluant approprié (par exemple, pour la ciprofloxacine, utilisez 25 % méthanol-eau 20 mM d’acide acétique).
    Remarque : Les solutions soignées aux antibiotiques sont nécessaires pour l’instrument-tuning seulement.

2. préparation du mélange d’étalons internes

NOTE : Normes internes sont homologues isotopique marqué les analytes d’intérêt qui sont ajoutés à un échantillon pendant le nettoyage de l’échantillon. Comme les étalons internes ont des propriétés physico-chimiques globalement presque identiques à leurs homologues non étiquetées, ils compensent les effets de matrice d’un échantillon donné.

  1. Préparer 10 mL de méthanol à 50 % dans de l’eau en ajoutant 5 mL de méthanol absolu à une fiole de 10 mL shake et remplissez-le à 10 mL d’eau distillée.
  2. Préparer 10 mL de méthanol à 50 % dans l’eau, y compris l’acide acétique 20 mM. Pour ce faire, ajouter 1 mL d’acide acétique de 200 mM dans une fiole de 10 mL, ajouter 5 mL de méthanol absolu et remplissez-le à 10 mL d’eau distillée.
  3. Générer des solutions mères étalons internes (IS) avec 1 000 mg/L directement dans le flacon fourni par le fabricant. Dissoudre le céfépime -13C12D3 sulfate dans l’eau distillée, Méropénem-D6, linézolide-D3et pipéracilline-D5 dans une solution de méthanol-eau de 50 %. Dissoudre la ciprofloxacine-D8 à 50 % méthanol-eau avec 20 mM acétate et moxifloxacin hydrochloride -13C1D3 dans l’eau distillée avec de l’acétate de 20 mM.
  4. Combiner les solutions mères IS dans un tube en polypropylène de 1,5 mL pour donner un mélange concentré quintuplé, passant de standard interne. Ajouter 10 µL du céfépime -13C12D,3, 10 µL de Méropénem-D6, 1 µL de ciprofloxacine-D8, 2 µL de moxifloxacine chlorhydrate -13C1D3, 2 µL de linézolide-D 3et 10 µL de l’Association pipéracilline-D5 965 µL de méthanol / eau de 25 %.
  5. Stocker les solutions stocks standards internes et la quintuple mélange concentré de IS à-80 ° C.

3. échantillon stockage

Remarque : Assurez-vous que le sérum est obtenu aussi rapidement que possible et que la chaîne du froid des échantillons congelés est maintenue.

  1. Collecter le sang dans les tubes de prélèvement de sérum.
  2. Laissez le caillot de sang pendant 20 à 30 min à température ambiante.
  3. Séparer le sérum du sang par centrifugation à 2 000 x g pendant 10 min.
  4. Transférer le surnageant dans un tube propre en polypropylène.
  5. Stocker le sérum jusqu'à six mois à-80 ° C jusqu'à ce qu’il est analysé. Vous pouvez également stocker les échantillons jusqu'à 3 jours à-20 ° C.

4. tampon de préparation pour la chromatographie

  1. Pour préparer le formiate d’ammonium 1 M dans l’eau, dissoudre 6,306 g de formiate d’ammonium dans 100 mL d’eau de qualité CLHP en utilisant un ballon de secousse de 100 mL. La solution de stocker jusqu'à 1 mois à 4 ° C.
  2. Préparer le mobile phase un [formiate d’ammonium 10 mM dans l’acide formique-eau (99.9:0.1 v/v)]. Pré-remplir une fiole jaugée de 1 000 mL avec environ 500 mL d’eau de qualité HPLC, ajouter 1 mL d’acide formique et 10 mL de la solution de formiate d’ammonium 1 M et remplissez-le à 1 000 mL avec l’eau de qualité HPLC. Transférer la phase mobile A dans une bouteille de verre propre et le raccorder au système HPLC. Stocker la phase mobile jusqu'à 2 semaines à température ambiante.
  3. Préparer la phase mobile méthanol absolu de qualité CLHP-B. de transférer dans une bouteille en verre propre et le raccorder au système HPLC.
  4. Utiliser du méthanol absolu comme l’aiguille laver solvant et connecter le tuyau correspondant à la bouteille en verre contenant une phase mobile B.
  5. Générer le sceau et un solvant de purge de l’acide formique-méthanol-eau (7:92.9:0.1, v/v/v). Pré-remplir une fiole jaugée de 1 000 mL avec environ 500 mL d’eau distillée, ajouter 70 mL de méthanol absolu, 1 mL d’acide formique et ajouter de l’eau distillée à 1 000 mL. Transférer le solvant dans une bouteille de verre propre et raccorder avec le système de CLHP.
    Remarque : Différents systèmes de l’échantillonneur automatique utilisent une forte et un solvant de lavage aiguille faible. Dans un tel cas, préparer les solutions de lavage selon les recommandations du fabricant. Par exemple, la fort lavage avec de l’alcool de méthanol-eau-leur (70:20:10, v/v/v) et les faibles laver avec eau-méthanol (95 : 5, v/v).

5. instrument Tuning

Remarque : Cette étape est réalisée pour la mise en place de la méthode sur un spectromètre de masse spécifique.

  1. Diluer l’analyte pur 1 000 mg/L et les solutions étalons internes 01:10 ou au 1/100 dans un mélange de la phase mobile A et B (50/50, v/v), selon l’intensité de signal du détecteur. Programmez le spectromètre de masse avec la fonction autotune ou faire un réglage manuel pour le suivant parent-à-fille ions transitions14: céfépime (481.0 > 167.0/395.7), céfépime -13C12D3 (485,1 > 167,1 / 400,0), Méropénem (384.1 > 114.0/141.0), Méropénem-D6 (390,1 > 114.0/147.2), ciprofloxacine (332,0 > 231.0/245.0), ciprofloxacine-D8 (340.1 > 235.1/249.3), la moxifloxacine (402.0 > 261.0/383.9), la moxifloxacine-13 C1D3 (406,1 > 265.1/388.0), le linézolide (338,0 > 235.0/296.0), le linézolide-D3 (341,1 > 235.1/297.1), pipéracilline (518.0 > 143.0/358.9) et pipéracilline-D5 (523,1 > 142.8/364.1).
  2. Pour les appareils avec réglage automatique, utilisez la fonction autotune pour ajuster automatiquement la tension et les paramètres de l’entrée de MS à travers les détecteurs.
  3. Pour les instruments à réglage manuel, régler les paramètres (p. ex., tension de collision et l’énergie de collision) jusqu'à l’optimum (généralement le maximum) intensité du signal est obtenue au détecteur pour chaque ion parent et sa fille. Par exemple, branchez un mélange tee, livrer la phase mobile A et B (50/50, v/v) à 0,5 mL/min et insuffler en permanence la norme antibiotique ou intérieure soignée avec un débit de 0,1 mL/min.

6. HPLC-MS/MS Set-up

NOTE : Comprend le spectromètre de masse, système de CLHP (y compris l’échantillonneur automatique), et le logiciel correspondant dépend du fabricant. Adapter les paramètres de spectromètre de masse et la procédure de lavage selon les recommandations du fabricant.

  1. Stocker les paramètres de spectromètre de masse à un correspondant 'MS paramétrer le fichier '. Utilisez l’ionisation par électrospray en mode positif (ESI +) pour tous les analytes. Adapter les paramètres de source d’ion de l’instrument utilisé (par exemple, une tension capillaire de 1,5 kV, une source température de 120 ° C, une température de désolvatation de 400 ° C, un débit de gaz de désolvatation de 600 L/h, une tension de lentille de RF de 0,1 V et un temps de pause de 80 ms).
  2. Spécifiez l’analyte et normes internes ajuster les paramètres (p. ex., tension capillaire, énergie de collision) dans un «fichier MS'.
  3. Fixer les conditions de l’échantillonneur automatique comme suit dans le 'fichier d’entrée ': la température de l’échantillon à 10 ° C, avec une limite de ± 5 ° C ; la séquence de lavage à 1 x purge-lavage-purge avec une 600 µL purge remplacement de volume.
  4. Dans ce qui précède 'fichier d’entrée ', régler le débit à 0,4 ou 0,5 mL/min, le temps d’exécution à 4 min, le limiteur de pression à 345 bar et la température de la colonne à 30 ° C, avec une limite de ± 5 ° C. Ajoutez le nom de solvant de phases mobiles A et B et leur valeur A B/93% de 7 %, respectivement.
  5. Programmer le gradient chromatographique dans le 'fichier d’entrée ' comme suit : 0,00 – 0,10 min avec la phase mobile 7 % B/93% A, 0,11 à 0,60 min avec 65 % de phase mobile B/35% A, 0,61 – 2.10 min avec 95 % de phase mobile B/5% A, 2.11 – 4,00 min avec la phase mobile 7 % B/93% A.
    Remarque : Calculer le volume de la colonne extra, le volume de la retenue pour la plate-forme instrumentale et les facteurs de rétention analyte tel que décrit dans l’USP < 621 > chromatographie orientation16.

7. échantillon mesure Master File

Remarque : Avec le 'exemple de fichier maître de mesure ', sérums des patients sont spécifiés, l’analyse HPLC-MS/MS est démarré et l’évaluation des données est effectuée. Deux fichiers de modèle distinct comprenant une paire de contrôle de basse et de haute qualité sont générés ; un modèle inclut QC paire A et C, l’autre paire QC un B et D.

  1. Créer un nouveau 'exemple de fichier maître de mesure '. Sélectionnez les clauses mentionnées ci-dessus 'MS paramétrer le fichier ', 'fichier MS'et « fichier d’arrivée » (article 6), insérez-les dans chaque ligne de l’échantillon et spécifiez le volume d’injection avec 15 µL.
  2. Dans l’ordre croissant, ajouter le texte « sample » de calibrateurs 0 – 7 et contrôle de la qualité (CQ) paire a/c ou paire QC b/j.
  3. Spécifiez le type d’échantillon. Sélectionnez le type d’échantillon « standard » pour des étalons et des « QC » pour les paires de contrôle de la qualité.
  4. Spécifiez la concentration de chaque substance antibiotique pour étalons correspondants et des contrôles de qualité (voir la feuille de calcul, concentration [µg/mL] Cal 7 – Cal 0, QC a/c ou b/j,).
  5. Programme de la 'méthode d’évaluation de données '. Utiliser les transitions qui ont été optimisées au cours de l’instrument tuning (section 5). Correspondre à chaque antibiotique avec la norme correspondante isotopique marqué (p. ex., Méropénem - Méropénem-D6).

8. nettoyage et analyse HPLC-MS/MS de l’échantillon

Remarque : Pour chaque lot d’échantillon, un contrôle de qualité jumelé avec une basse et à haute concentration d’antibiotique (QC ca ou QC b/j) est traité et analysé. Entre les différents lots, les échantillons appariés de QC sont utilisés dans une autre séquence (par exemple, le jour 1, sélectionnez le 'exemple de fichier maître de mesure ' y compris QC paire a/c ; le jour 2, sélectionnez la paire QC incluant un b/j. Le traitement des échantillons de sérum est illustré à la Figure 1.

  1. Préparer l’agent de précipitation 10 % méthyltert-butyl éther dans le méthanol (10 : 90, v/v) (par exemple, inscrire un 25 mL fiole jaugée avec 2,5 mL de méthyltert-butyl éther et remplissez-le à 25 mL avec du méthanol absolu).
  2. Placer la phase inversée C8 dans la chambre de la colonne. Connectez-le à l’HPLC et spectromètre de masse dans le sens de l’écoulement.
  3. Générer la liste d’exemples. Ouvrez le correspondant 'exemple de fichier maître de mesure ' modèle et ajouter les sérums des patients censés être traités à la liste. Générer des groupes de jusqu'à 20 échantillons de patients et de leur flanc avec la paire de contrôle de la qualité correspondante.
  4. Wet-prime le système HPCL utilisant le 'fichier d’entrée ' maitrise des logiciels : régler la fonction de « premier humide » à 50 % de phase mobile A/50% B et humide-premier pendant 2 min avec un débit de 1 mL/min.
  5. Actualiser la seringue. Pour ce faire, exécutez 6 coups de 600 µL dans le logiciel de commande.
  6. Equilibrer la colonne phase inverse de C8. En utilisant le logiciel, allumez le flux dans le 'fichier d’entrée ' et rincez-la avec 7 % mobile phase B/93% A un minimum de 5 min, à l’aide d’un débit de 0,5 mL/min. vérifier la température de la colonne de 30 ° C.
  7. Décongeler les échantillons de patients, une partie aliquote de calibrateurs 0 – 7 et une paire de contrôle de la qualité (A / B ou C/D).
  8. Avec une pipette à répétition, ajouter 25 µL du mélange standard interne à 100 µL calibrateur, échantillon QC ou sérum de patient dans un tube en polypropylène de 1,5 mL et vortex le tube pendant quelques secondes.
  9. Incuber le mélange pendant 5 min à température ambiante sur un dispositif trembleur de benchtop (p. ex., à 1 200 tr/min).
  10. Avec une pipette à répétition, ajouter 150 µL d’un réactif de précipitation au mélange échantillon-interne standard.
  11. Encore une fois, vortex le tube pendant quelques secondes et il incuber pendant 5 min à température ambiante sur un dispositif trembleur de benchtop (p. ex., à 1 200 tr/min).
  12. Centrifuger la suspension à 20 000 x g dans une centrifugeuse de table pendant 10 min à 4 ° C.
  13. Diluer le liquide surnageant 1:3 avec l’eau de qualité HPLC à l’aide d’un flacon en verre avec un insert-micro et charger les échantillons aussi traités dans l’échantillonneur automatique.
  14. Démarrer manuellement l’analyse HPLC-MS/MS le 'exemple de fichier de contrôle mesure '.
    Remarque : Pour une conservation prolongée, bien rincer la colonne analytique selon la recommandation du manufacturier [par exemple, 0,5 mL/min méthanol / eau (50/50, v/v)] pour empêcher l’effondrement de phase.

figure-protocol-1
Figure 1 : représentation schématique du nettoyage échantillon. Précipitation de protéines à la force centrifuge élevée donne une boulette dense et clair surnageant, indiquant que les précipitations protéine était complète. Tout le temps de traitement est environ 30 min, y compris le nettoyage de l’échantillon, la séparation chromatographique et l’analyse MS/MS. S’il vous plaît cliquez ici pour visionner une version agrandie de cette figure.

9. quantification et évaluation de la qualité

  1. Pour traiter les échantillons, ouvrir le correspondant 'exemple de fichier de contrôle mesure ', sélectionnez les calibrateurs et contrôles de qualité des échantillons de patients et d’évaluer avec le 'méthode de quantification des antibiotiques '.
  2. Vérifier si les sommets pour un analyte spécifique sont correctement intégrés. Inspecter les pics pour chaque étalon, QC et échantillon de patients et réintégrer manuellement à la ligne de base si nécessaire.
  3. Étudier la courbe d’étalonnage et déterminer si elle remplit les critères de qualité suivants : a) linéarité sur la gamme d’étalonnage ensemble, b) un étalonnage coefficient r2 > 0,995, c) la déviation de chaque solution étalon ± 15 % de la valeur nominale, à l’exception de la limite inférieure de quantification (PPQM), où il faut ± 20 %.
  4. Rejeter un étalon ne respecte ne pas les critères susmentionnés et réévaluer la courbe d’étalonnage, y compris l’analyse de régression.
  5. Étudier les contrôles de qualité et d’examiner si les écarts sont ± 15 % de la valeur nominale.
  6. Si la concentration d’un échantillon de patients est supérieure à la concentration de l’étalon plus haut, diluer l’échantillon avec de l’eau distillée, jusqu'à 1:5 (par exemple, 100 µL de sérum plus de 400 µL d’eau distillée) avant le nettoyage de l’échantillon. Reperform étapes 8,8 – 8.14 pour cet échantillon spécifique et retraiter il.

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Résultats

En utilisant le protocole décrit, un chromatogramme typique est représenté sur la Figure 2. Selon l’United States Pharmacopeia (USP) chromatographie lignes directrices16, le volume mort de colonne dans le système actuel a été déterminé avec ~0.22 mL et le volume de la colonne extra (y compris l’injecteur, tuyaux et connecteurs) avec ~0.08 mL, ce qui donne un volume de braquage de ~0.30 mL. Les facteurs de rétention calculée pour tous l...

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Discussion

Dans ce manuscrit, les auteurs rapportent le protocole pour une méthode de basé sur la spectrométrie de masse tandem simple et robuste pour la quantification des antibiotiques fréquemment utilisés à l’ICU19, nommément céfépime, méropénem, ciprofloxacine, la moxifloxacine, linézolide, et pipéracilline14. Une feuille de calcul accompagne le manuscrit pour la préparation des solutions mères antibiotiques, calibrateurs et contrôles de qualité, compte tenu de la pureté des antib...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Les auteurs remercient Dr Schütze pour son aide à l’établissement de la méthode présentée et Dr. Zoller pour la précieuse contribution en ce qui concerne la gamme d’étalonnage approprié. Les auteurs remercient également le personnel technique de l’installation de spectrométrie de masse.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
chlorhydrate de céfépimeSigma-Aldrich1097636USP Étalon de référence
méropénème trihydratéSigma-AldrichY0001252EP Étalon de référence
ciprofloxacineSigma-Aldrich17850
chlorhydrate de moxifloxacineSigma-AldrichSML1581
linézolideToronto Research Chemicals
pipéracilline sel sodiqueSigma-Aldrich93129
céfépime-13C12D3 sulfateAlsachimC1297Étalon interne marqué par un isotope pour le mécropénème-D6
Toronto Research ChemicalsM225617Étalon interne marqué par isotope pour le mécopénème
ciprofloxacine-D8Toronto Research ChemicalsC482501Étalon interne marqué d’un isotope pour le chlorhydrate de ciprofloxacine
moxifloxacine-13C1D3Research ChemicalsM745003Étalon interne marqué d’un isotope pour la moxifloxacine
linézolide-D3Research ChemicalsL466502Étalon interne marqué d’un isotope pour
pipéracilline-D5de Toronto Research ChemicalsP479952Étalon interne marqué d’un isotope norme pour pipéracilline
méthanolJT Baker8402
Eau de qualité HPLCJT Baker4218
Acide formiqueBiosolve6914132
acide acétiqueBiosolve1070501
formiate d’ammoniumSigma-Aldrich70221-25G-F
tert-Butyl méthyl étherMerck101845
Fortis 3 &mu ; m C8 100 * 2,1 mmFortisF08-020503
Prifilter enrobé de Ti-PEEK (2 &mu ; m)Chromsystems15011
2795 Système HPLC AllianceWaters176000491
Quattro micro API Tandem Système quadripolaireWaters720000338
QuanLynx 4.1 LogicielWaters/Data fourni par le fabricant du spectromètre
de
L466500 Toronto Toronto la d’évaluation masse

Références

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