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Article de méthode

Préparation de tranches médullaires aiguës pour l’enregistrement de Patch-clamp de la cellule entière dans les neurones de Substantia Gelatinosa

14.3K vues

DOI :

10.3791/58479

18 janvier 2019

Dans cet article

Résumé

Nous décrivons ici les étapes essentielles pour des enregistrements de patch-clamp de la cellule entière faites de neurones substantia gelatinosa (SG) dans la tranche de la moelle épinière en vitro . Cette méthode permet les propriétés membranaires intrinsèques, la transmission synaptique et la caractérisation morphologique des neurones de la SG à étudier.

Résumé

Des études récentes de patch-clamp de la cellule entière de neurones substantia gelatinosa (SG) ont fourni un grand nombre d’informations sur les mécanismes de la colonne vertébrale qui sous-tendent la transmission sensorielle nociceptive règlement et développement de douleur ou de démangeaisons chronique. Implémentations des enregistrements électrophysiologiques ainsi que des études morphologiques basées sur l’utilité des tranches médullaires aiguës ont encore amélioré notre compréhension des propriétés neuronales et la composition des circuits locaux au journal officiel. Nous présentons ici un guide détaillé et pratique pour la préparation de tranches de moelle épinière et d’enregistrement de germes entiers représentant spectacle et résultats morphologiques. Ce protocole permet la préservation neuronale idéale et peut imiter des conditions in vivo dans une certaine mesure. En résumé, la possibilité d’obtenir une préparation in vitro de tranches de moelle épinière permet aux enregistrements de courant et tension-bride stable et pourrait donc faciliter des enquêtes détaillées sur les propriétés membranaires intrinsèques, des circuits locaux et structure neuronale à l’aide de diverses approches expérimentales.

Introduction

La substantia gelatinosa (SG, limbe II de la corne dorsale de la colonne vertébrale) est un centre d’indiscutablement important relais de transmission et de régulation de l’information sensorielle. Il est composé des interneurones excitateurs et inhibiteurs, qui reçoivent des entrées des fibres afférentes primaires et le système inhibiteur descendant endogène1interneurones les. Ces dernières décennies, le développement de la préparation de tranches médullaires aiguës et l’avènement de l’enregistrement de patch-clamp de la cellule entière ont permis à diverses études sur les propriétés intrinsèques d’électrophysiologiques et morphologiques des S....

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Protocole

Tous les protocoles expérimentaux décrits ont été approuvées par l’Animal Ethics Committee de Nanchang University (Nanchang, Chine, éthiques No.2017-010). Tous les efforts ont été faits pour minimiser le stress et la douleur des animaux expérimentaux. Les enregistrements électrophysiologiques interprétés ici ont été réalisées à température ambiante (RT, 22 – 25 ° C).

1. les animaux

  1. Utiliser des rats Sprague-Dawley (âgés de 3 à 5 semaines) des deux sexes. Loger les animaux sous un cycle lumière-obscurité de 12 h et de leur donner accès ad libitum à l’eau et de nourriture suffisante.

2. prépa....

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Résultats

Tranches de médullaires aiguës ont été préparés selon le schéma indiqué à la Figure 1. Après le tranchage et la récupération, une tranche de la moelle épinière a été transférée à la chambre d’enregistrement. Les neurones en bonne santé ont été identifiés basé sur l’apparence de soma à l’aide de la microscopie IR-DIC. Ensuite, les potentiels d’action des neurones SG ont été provoquées par une série de dépolarisation des impulsions de courant (durée de 1 s) qua.......

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Discussion

Ce protocole détaille les étapes pour la préparation de tranches de moelle épinière, que nous avons utilisée avec succès lors d’expériences de patch-clamp de la cellule entière sur SG neurones18,19,20,21. En appliquant cette méthode, nous avons récemment rapporté que la minocycline, une deuxième génération de tétracycline, pourraient améliorer sensiblement la transmission synaptique inhibitrice.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêt.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par des subventions de la Fondation nationale des sciences naturelles de Chine (n ° 81560198, 31660289).

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
NaClSigmaS7653Utilisé pour la préparation d’ACSF et de PBS
KClSigma60130Utilisé pour la préparation d’ACSF, de saccharose-ACSF et de K+ solution intracellulaire à base de
NaH2PO4· ; 2H2OSigma71500Utilisé pour la préparation d’ACSF, de saccharose-ACSF et de PBS
CaCl2· ; 2H2OSigmaC5080Utilisé pour la préparation de l’ACSF et du saccharose-ACSF
MgCl2· ; 6H2OSigmaM2670Utilisé pour la préparation de l’ACSF et du saccharose-ACSF
NaHCO3SigmaS5761Utilisé pour la préparation de l’ACSF et du saccharose-ACSF
D-GlucoseSigmaG7021Utilisé pour la préparation de l’ACSF
Acide ascorbiqueSigmaP5280Utilisé pour la préparation de l’ACSF et du saccharose-ACSF
Pyruvate de sodiumSigmaA7631Utilisé pour la préparation d’ACSF et de saccharose-ACSF
SaccharoseSigmaS7903Utilisé pour la préparation de saccharose-ACSF
K-gluconateWako169-11835Utilisé pour la préparation de solution intracellulaire à base de K+
Na2-PhosphocréatineSigmaP1937Utilisé pour la préparation de la solution intracellulaire
EGTASigmaE3889Utilisé pour la préparation de la solution intracellulaire
HEPESSigmaH4034Utilisé pour la préparation de la solution intracellulaire
Mg-ATPSigmaA9187Utilisé pour la préparation de la solution intracellulaire
Li-GTPSigmaG5884Utilisé pour la préparation de solution intracellulaire
CsMeSO4SigmaC1426Utilisée pour la préparation de solutions intracellulaires à base de Cs+
CsClSigmaC3011Utilisée pour la préparation de solutions intracellulaires à base de Cs+
TEA-ClSigmaT2265Utilisée pour la préparation de solutions intracellulaires à base de Cs+ solution
Neurobiotine 488VecteurSP-11450,05 % de neurobiotine 488 pourrait être utilisé pour des études morphologiques
AgarSigmaA7002bloc de gélose à 3 % a été utilisé dans notre protocole
ParaformaldéhydeSigmaP6148paraformaldéhyde à 4 % a été utilisé pour le traitement immunohistochimique
Na2HPO4Hengxing Chemical Réactifsutilisés pour la préparation du
milieu de lamelle de montagePolyscience18606
UrethanNational Institute for Food and Drug Control301912281,5 g/kg, i.p.
Capillaires en verre borosilicatéWorld Precision InstrumentsTW150F-41,5 mm OD, 1,12 mm ID
Extracteur de micropipettesSutter InstrumentP-97Utilisé pour la préparation de micropipettes
VibratomeLeicaVT1000S
Table d’isolation des vibrationsTechnical Manufacturing Corporation63544
CaméraCCD infrarougeDage-MITIR-1000
Amplificateur patch-clampHEKAEPC-10
MicromanipulateurSutter InstrumentMP-285
Platine X-YBurleighGIBRALTAR X-Y
Microscope verticalOlympusBX51WI
OsmomètreAdvancedFISKE 210
PH mètreMettler Microscope ToledoFE20
ConfocolZeissLSM 700
Un Le PBS

Références

  1. Todd, A. J. Neuronal circuitry for pain processing in the dorsal horn. Nature Reviews Neuroscience. 11 (12), 823-836 (2010).
  2. Yoshimura, M., Nishi, S. Blind patch-clamp recordings from substantia gela....

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

Coupes au vibratomeenregistrement lectrophysiologiquepr paration de blocs d agarsolution ACSF au saccharosepropri t s de la membrane neuronaleanalyse des circuits locaux