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Article de méthode

Démêlé les acteurs clés de l’immunité humorale : avancé et optimisé protocole d’isolement de Lymphocyte de patchs murin de Peyer

13.5K vues

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DOI :

10.3791/58490

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21 novembre 2018

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Dans cet article

Résumé

Dans cette étude, nous présentons un roman et un protocole efficace pour isoler des lymphocytes de plaques de Peyer (PPs), qui peuvent être utilisés ultérieurement pour des essais fonctionnels in vivo et in vitro , mais aussi des études cytométrie en flux de T folliculaire d’assistance et des cellules germinales Centre B.

Résumé

Dans la muqueuse de l’intestin, cellules immunitaires constituent une entité unique immunologique, ce qui favorise la tolérance immunitaire tout en conférant simultanément des défenses immunitaires contre les agents pathogènes. Il est bien établi que de Peyer (PPs) ont un rôle essentiel dans le réseau de système immunitaire muqueux en accueillant plusieurs effecteur T et cellules B sous-ensembles. Une certaine fraction de ces cellules effectrices, les folliculaire T helper (TFH) et les cellules de B de centre germinatif (GC) sont professionnalisé dans la régulation de l’immunité humorale. Par conséquent, la caractérisation de ces sous-ensembles de cellules au sein du PPs quant à leur programme de différenciation et les propriétés fonctionnelles peut fournir des informations importantes concernant l’immunité des muqueuses. À cette fin, une méthode facilement applicable, efficace et reproductible d’isolement de lymphocyte de PPs serait utile aux chercheurs. Dans cette étude, nous avons cherché pour générer une méthode efficace pour isoler des lymphocytes de souris PPs avec rendement élevé cellulaire. Notre approche a révélé qu’évoluées telles que l’utilisation de réactifs digestifs et agitation de tissu, le tissu initial ainsi que cell coloration de conditions et de sélection des panneaux d’anticorps, ont une grande influence sur la qualité et l’identité des lymphocytes isolés et sur résultats expérimentaux.

Nous décrivons ici un protocole permettant aux chercheurs d’isoler efficacement les populations de lymphocytes de PPs permettant l’évaluation reproductible écoulement cytometry des sous-ensembles de T et les lymphocytes B se concentrant principalement sur des sous-ensembles de cellules TFH et GC B.

Introduction

Le tube digestif entier dès le début à la fin est paré avec un vaste réseau lymphoïde qui contient des cellules immunitaires plus que tout autre organe chez l’homme et la souris1. Peyer de patchs (PPs) constituent une composante majeure de la branche intestinale de cet organisme immunitaire cellulaire, ce qu’on appelle tissu lymphoïde associé au tube digestif (GALT)2,3. Au sein de PPs, des milliers de millions d’antigènes provenant des matières alimentaires, agents pathogènes et le microbiote commensal sont échantillonnés en permanence et quand nécessaire les réponses immunitaires appro....

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Protocole

Toutes les études et les expériences décrites dans le présent protocole ont été effectuées en vertu des lignes directrices selon Institutional Animal Care et utilisation Comité (IACUC) de Beth Israel Deaconess Medical Center.

1. conception de montage expérimental et des groupes de souris

  1. (Facultatif) La maison conjointement les souris expérimentales afin de faciliter la transmission horizontale du microbiote intestinal entre souris expérimentales et à réduire la variabilité non spécifiques au sein des lymphocytes PP. En outre, utiliser des contrôles de la même portée du même sexe afin de minimiser la variabilité.

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Résultats

Contrairement à un précédent protocole20, nous avons observé que le PPs ne sont pas répartis uniformément sur le SI mais sont localisées plus dense vers les extrémités proximales et distales de l’is, comme le montre Figure 1 a. Analyse en cytométrie en flux a montré que, si suivies correctement, notre protocole donne une population de lymphocytes PP illustrant la distribution de diffusion vers l’avant.......

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Discussion

Nous décrivons ici un protocole optimisé pour la caractérisation de cytométrie en flux des cellules TFH et GC B. Un des principaux avantages de notre protocole est qu’il permet l’isolement de jusqu'à 10 cellules PP totales7 (en moyenne 4 à 5 x 106 cellules) d’une seule souris (souche C57BL/6) sans n’importe quel processus de digestion. Nous avons observé que le rendement total de cellules est positivement corrélé avec le nombre de PPs et pouvait être estimé à partir de l’équation simple suivante ce .......

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Déclarations de divulgation

Aucun conflit d’intérêts ne déclarés.

Remerciements

Nous tenons à remercier Laura Strauss et Peter Sage pour discussions utiles et appuyer avec les analyses de cytométrie de flux.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
anticorps anti-souris CD4eBioscience, Biolegend*17-0041-81 ,10054*Pour plus d’informations, voir le Tableau 1
anticorps anti-souris CD19eBioscienceMA5-16536Pour plus d’informations, voir le Tableau 1
anticorps anti-souris-1eBioscience61-9985-82Pour plus d’informations, voir le Tableau 1
anticorps anti-souris ICOSeBioscience12-9942-82Pour des informations détaillées, voir le Tableau 1
Anticorps anti-souris GL7Biolegend144610Pour des informations détaillées, voir le Tableau 1
Anticorps anti-souris CXCR5Biolegend*, BD Bioscience145512*, 551960Pour des informations détaillées, voir le Tableau 1
Anticorps anti-souris BCL-6Biolegend358512Pour des informations détaillées, voir Tableau 1
Foxp3 anti-souris anticorpseBioscience17-5773-82Pour plus d’informations, voir le Tableau 1
Streptavidin-BV421BD Bioscience563259Pour plus d’informations, voir le Tableau 1
FixableViability DyeeBioscienceL34957Pour plus d’informations, voir le Tableau 1
7AADBiolegend420404Pour des informations détaillées, voir le Tableau 1
FcBlock (CD16/32)BD Bioscience553141Pour plus d’informations, voir le Tableau 1
Collagenase IIWorthingtonLS004176
Collagenase IVWorthingtonLS004188
Foxp3/Transcription Factor Staining Buffer SeteBioscience00-5523-00
Plaques à 6 puits, 12 puits et 96 puitsFalcon/Corning353046,353043/3596
Tubes coniques de 50 mLFalcon3520
40 & micro ; Filtre à cellules mFalcon352340
10 mL seringue-pistonExel INT26265
RPMICorning15-040-CV
PBSCorning21-040-CM
FBSAtlanta BiologicalsS11150
Agitateur orbitalVWRModèle 200
Ciseaux
dentelée fine
Petit ciseau
à extrémité incurvéePince courbé

Références

  1. van den Berg, T. K., van der Schoot, C. E. Innate immune ‘self’ recognition: a role for CD47-SIRPα interactions in hematopoietic stem cell transplantation. Trends in Immunology. 29 (5), 203-206 (2008).
  2. Mowat, A. M., Agace, W. W.

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Réimpressions et autorisations

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