Les œufs immatures de Drosophila sont appelés chambres d'oeufs, et leur structure ressemble aux organes primitifs qui subissent des changements morphologiques d'un rond à une forme ellipsoïde pendant le développement. Ce processus de développement est appelé oogenesis et est crucial pour générer des œufs matures fonctionnels pour sécuriser la prochaine génération de mouches. Pour ces raisons, les chambres à œufs ont servi de modèle idéal et pertinent pour comprendre le développement des organes animaux.
Plusieurs protocoles de culture in vitro ont été développés, mais il y a plusieurs inconvénients à ces protocoles. L'une consiste à appliquer diverses couvertures qui exercent une pression artificielle sur les chambres d'œufs imageafin de les immobiliser et d'augmenter le plan d'acquisition imagede de la surface circonférence des chambres d'oeufs analysées. Une telle approche peut influencer négativement le comportement de la machinerie actomyosine mince qui génère la puissance de faire pivoter les chambres d'oeufs autour de leur axe plus long.
Ainsi, pour surmonter cette limitation, nous culture Drosophila chambres d'oeufs librement dans les médias afin d'analyser de façon fiable machines actomyosin le long de la circonférence des chambres d'oeufs. Dans la première partie du protocole, nous fournissons un manuel détaillant comment analyser la machinerie d'actomyosine dans un plan d'acquisition limité à l'échelle cellulaire locale (jusqu'à 15 cellules). Dans la deuxième partie du protocole, nous fournissons aux utilisateurs un nouveau plugin basé à Fidji qui permet l'extraction simple d'une mince couche définie de la surface circonférence des chambres d'oeufs. Le protocole suivant décrit ensuite comment analyser les signaux d'actomyosine à l'échelle des tissus (cellules de 50). Enfin, nous repérons les limites de ces approches à la fois à l'échelle cellulaire et tissulaire locale et discutons de son développement futur potentiel et des applications possibles.