Nous présentons un protocole visant à obtenir les signatures de protéomique des macrophages humains et cela s’applique à la détermination de l’impact d’un environnement pauvre en oxygène sur la polarisation de macrophages.
Article de méthode
Nous présentons un protocole visant à obtenir les signatures de protéomique des macrophages humains et cela s’applique à la détermination de l’impact d’un environnement pauvre en oxygène sur la polarisation de macrophages.
Les macrophages sont des cellules immunitaires innées impliqués dans un certain nombre de fonctions physiologiques allant de réactions aux agents pathogènes infectieux à l’homéostasie tissulaire. Les différentes fonctions de ces cellules sont liées à leurs États d’activation, qui est aussi appelé polarisation. La description moléculaire précise de ces polarisations différentes est une priorité dans le domaine de la biologie du macrophage. Il est actuellement reconnu qu’une approche multidimensionnelle est nécessaire pour décrire comment la polarisation est contrôlée par des signaux environnementaux. Dans ce rapport, nous décrivons un protocole visant à obtenir la signature de la protéomique des polarisations différentes dans les macrophages humains. Ce protocole est basé sur une quantification exempte d’étiquette d’expression de protéine macrophage provenant de fractionnés en gel et le contenu de lyse cellulaire Lys C/trypsine-digéré. Nous fournissons également un protocole basé sur la solution en digestion et isoélectrique mise au point de fractionnement à utiliser comme solution de rechange. Parce que la concentration en oxygène est un paramètre environnemental pertinent dans les tissus, nous permet de découvrir la composition de l’atmosphère comment ce protocole ou un environnement pauvre en oxygène influe sur la classification de la polarisation du macrophage.
Les macrophages sont des cellules immunitaires innées impliqués dans un certain nombre de fonctions physiologiques allant de réactions aux agents pathogènes infectieux à l’homéostasie tissulaire, y compris l’enlèvement de cellules apoptotiques et remodelage de la matrice extracellulaire1. Ces cellules sont caractérisées par une forte plasticité phénotypique2 qui se traduit par un nombreux États d’activation possible, qui sont aussi appelés les polarisations. La description moléculaire précise de ces polarisations différentes est une priorité dans le domaine des macrophages biologie3. Il a été prop....
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Des échantillons de sang humain (LRSC) provenant de donneurs sains, dépersonnalisées proviennent de l’EFS (Français National Blood Service) dans le cadre d’un protocole autorisé (CODECOH DC-2018-3114). Donateurs ont donné le consentement signé pour l’utilisation du sang.
1. médias et préparation du tampon
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À partir de cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC) obtenus par centrifugation différentielle, le protocole permet l’obtention d’une population de CD14+ monocytes avec une pureté mises en recouvrement de plus de 98 % par cytométrie en flux (Figure 1). Ces monocytes sont différencient secondairement vers diverses polarisations (Figure 2). Quand un fractionnement sur gel est choisi, la migration sur gel SDS-p.......
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Parce que la protéomique est un outil puissant pour étudier l’expression des différentes protéines d’une cellule entière ou compartiments subcellulaires, optimisation du protocole de la lyse cellulaire et la digestion des protéines a été traitées par un certain nombre d’études. Il y a trois grandes classes de méthodes, qui incluent la digestion en gel (digestion des protéines en gel de polyacrylamide matrice)17, digestion en solution18 et filtre assistée par exemple prépara.......
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Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêt.
AM est financé par le programme Leader du groupe Young (ATIP/Avenir Inserm-CNRS), de la Ligue Nationale contre le Cancer et la Fondation ARC versez la recherche sur le Cancer. Nous remercions Mariette Matondo de la spectrométrie de masse pour plateforme de biologie (UTECHS MSBIO, Institut Pasteur, Paris). Nous remercions Lauren Anderson pour sa lecture du manuscrit.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Hypoxie Poste de travail | Oxford Optronix | Hypoxylab | |
| C6 Cytomètre en flux | BD | Accuri C6 | |
| Urée | Agilent Technologies | 5188-6435 | |
| Acide formique (FA) | ARISTAR | 450122M | |
| R-250 Bleu Coomassie | Biorad | 1 610 436 | |
| Lipopolysaccharide, E.Coli (LPS) | Calbiochem | 437627 | |
| 2D kit de nettoyage | GE Healthcare | 80-6484-51 | |
| RPMI 1640 moyen, supplément glutamax | Gibco | 61870044 | |
| HEPES 1 M | Gibco | 15630-080 | |
| MEM Solution d’acides aminés non essentiels (NEAA) 100X | Gibco | 11140-035 | |
| Saline tamponnée au phosphate (PBS) 1X | Gibco | 14190-094 | |
| Harvard Apparatus column Reverse C18 micro spin column | Harvard Apparatus | 74-4601 | |
| EDTA 0.5 M, pH 8.0 | Invitrogen | AM9260G | |
| NuPAGE Bis-Tris 4-12 % | Life Technologies SAS | NP0321 BOX | |
| CD14 Microbilles humaines | Miltenyi Biotec | 130-050-201 | |
| Colonne de séparation MACS LS | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
| Facteur de stimulation des colonies de macrophages (M-CSF) | Miltenyi Biotec | 130-096-485 | |
| Interleukine 4 (IL4) | Miltenyi Biotec | 130-093-917 | |
| Interleukine 13 (IL13) | Miltenyi Biotec | 130-112-410 | |
| Interféron gamma (INF&gamma ;) | Miltenyi Biotec | 130-096-482 | |
| CD14-FITC (clone TÜ ; K4) | Miltenyi Biotec | 130-080-701 | |
| Rotateur de tube MACSmix | Miltenyi Biotec | 130-090-753 | |
| Acide trifluoroacétique (TFA) | Pierce | 28904 | |
| Trypsine/Lys-C Mix | PROMEGA | V5073 | |
| Mini complet, sans EDTA Cocktail d’inhibiteurs de protéase | Roche | 11836170001 | |
| Density Gradient Solution ( Histopaque 1077) | Sigma Aldrich | 10771-100ML | |
| Accumax | Sigma Aldrich | A7089-100ML | |
| Sérum humain à partir de plasma AB humain mâle (SAB) | Sigma Aldrich | H4522-100ML | |
| Solution d’albumine sérique bovine (BSA) 30 % | Sigma Aldrich | A9576-50ML | |
| Trisma-base | Sigma Aldrich | T1503 | |
| Glycérol | Sigma Aldrich | 49767 | |
| &beta ;-Mercaptoethanol | Sigma Aldrich | M3148 | |
| Bleu de bromophénol | Sigma Aldrich | 114405 | |
| Dodécylsulfate de sodium (SDS) 20 % | Sigma Aldrich | 5030 | |
| Bicarbonate d’ammonium | Sigma Aldrich | 9830 | |
| Acétonitrile | Sigma Aldrich | 34888 | |
| Dithiothreitol | Sigma Aldrich | 43819 | |
| Iodoacétamide | Sigma Aldrich | 57670 | |
| Thiourée | Sigma Aldrich | T8656 | |
| CHAPS | Sigma Aldrich | C9426 | |
| Micro BCA Kit de dosage | ThermoFisher | 23235 | |
| Pipette en plastique stérile 5 mL | VWR | 612-1685 | |
| Thermomixeur C Eppendorf VWR | 460-0223 | ||
| Sep-Pak tC18 cartouches en phase inverse, 100 mg | Waters | WAT036820 |
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