Article de méthode

Analyse protéomique de polarisation des macrophages humains dans un environnement pauvre en oxygène

7.3K vues

DOI :

10.3791/58727

7 janvier 2019

Dans cet article

Résumé

Nous présentons un protocole visant à obtenir les signatures de protéomique des macrophages humains et cela s’applique à la détermination de l’impact d’un environnement pauvre en oxygène sur la polarisation de macrophages.

Résumé

Les macrophages sont des cellules immunitaires innées impliqués dans un certain nombre de fonctions physiologiques allant de réactions aux agents pathogènes infectieux à l’homéostasie tissulaire. Les différentes fonctions de ces cellules sont liées à leurs États d’activation, qui est aussi appelé polarisation. La description moléculaire précise de ces polarisations différentes est une priorité dans le domaine de la biologie du macrophage. Il est actuellement reconnu qu’une approche multidimensionnelle est nécessaire pour décrire comment la polarisation est contrôlée par des signaux environnementaux. Dans ce rapport, nous décrivons un protocole visant à obtenir la signature de la protéomique des polarisations différentes dans les macrophages humains. Ce protocole est basé sur une quantification exempte d’étiquette d’expression de protéine macrophage provenant de fractionnés en gel et le contenu de lyse cellulaire Lys C/trypsine-digéré. Nous fournissons également un protocole basé sur la solution en digestion et isoélectrique mise au point de fractionnement à utiliser comme solution de rechange. Parce que la concentration en oxygène est un paramètre environnemental pertinent dans les tissus, nous permet de découvrir la composition de l’atmosphère comment ce protocole ou un environnement pauvre en oxygène influe sur la classification de la polarisation du macrophage.

Introduction

Les macrophages sont des cellules immunitaires innées impliqués dans un certain nombre de fonctions physiologiques allant de réactions aux agents pathogènes infectieux à l’homéostasie tissulaire, y compris l’enlèvement de cellules apoptotiques et remodelage de la matrice extracellulaire1. Ces cellules sont caractérisées par une forte plasticité phénotypique2 qui se traduit par un nombreux États d’activation possible, qui sont aussi appelés les polarisations. La description moléculaire précise de ces polarisations différentes est une priorité dans le domaine des macrophages biologie3. Il a été prop....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Des échantillons de sang humain (LRSC) provenant de donneurs sains, dépersonnalisées proviennent de l’EFS (Français National Blood Service) dans le cadre d’un protocole autorisé (CODECOH DC-2018-3114). Donateurs ont donné le consentement signé pour l’utilisation du sang.

1. médias et préparation du tampon

  1. Préparer le milieu de macrophage [RPMI glutamax + 10 mM HEPES + 1 x non essentiels des acides aminés (NEAA)] et elle chauffé à 37 ° C.
  2. Préparer le milieu macrophage + 10 % de sérum humain du plasma AB (SAB), filtrer (filtre de 0,22 µm), puis le réchauffer à 37 ° C (dénommé moyen de macrophage + 10 % SAB ci-après).
  3. ....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

À partir de cellules mononucléaires du sang périphérique (PBMC) obtenus par centrifugation différentielle, le protocole permet l’obtention d’une population de CD14+ monocytes avec une pureté mises en recouvrement de plus de 98 % par cytométrie en flux (Figure 1). Ces monocytes sont différencient secondairement vers diverses polarisations (Figure 2). Quand un fractionnement sur gel est choisi, la migration sur gel SDS-p.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Parce que la protéomique est un outil puissant pour étudier l’expression des différentes protéines d’une cellule entière ou compartiments subcellulaires, optimisation du protocole de la lyse cellulaire et la digestion des protéines a été traitées par un certain nombre d’études. Il y a trois grandes classes de méthodes, qui incluent la digestion en gel (digestion des protéines en gel de polyacrylamide matrice)17, digestion en solution18 et filtre assistée par exemple prépara.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêt.

Remerciements

AM est financé par le programme Leader du groupe Young (ATIP/Avenir Inserm-CNRS), de la Ligue Nationale contre le Cancer et la Fondation ARC versez la recherche sur le Cancer. Nous remercions Mariette Matondo de la spectrométrie de masse pour plateforme de biologie (UTECHS MSBIO, Institut Pasteur, Paris). Nous remercions Lauren Anderson pour sa lecture du manuscrit.

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Hypoxie Poste de travailOxford OptronixHypoxylab
C6 Cytomètre en fluxBDAccuri C6
UréeAgilent Technologies5188-6435
Acide formique (FA)ARISTAR450122M
R-250 Bleu CoomassieBiorad1 610 436
Lipopolysaccharide, E.Coli (LPS)Calbiochem437627
2D kit de nettoyageGE Healthcare80-6484-51
RPMI 1640 moyen, supplément glutamaxGibco61870044
HEPES 1 MGibco15630-080
MEM Solution d’acides aminés non essentiels (NEAA) 100XGibco11140-035
Saline tamponnée au phosphate (PBS) 1XGibco14190-094
Harvard Apparatus column Reverse C18 micro spin columnHarvard Apparatus74-4601
EDTA 0.5 M, pH 8.0InvitrogenAM9260G
NuPAGE Bis-Tris 4-12 %Life Technologies SASNP0321 BOX
CD14 Microbilles humainesMiltenyi Biotec130-050-201
Colonne de séparation MACS LSMiltenyi Biotec130-042-401
Facteur de stimulation des colonies de macrophages (M-CSF)Miltenyi Biotec130-096-485
Interleukine 4 (IL4)Miltenyi Biotec130-093-917
Interleukine 13 (IL13)Miltenyi Biotec130-112-410
Interféron gamma (INF&gamma ;)Miltenyi Biotec130-096-482
CD14-FITC (clone TÜ ; K4)Miltenyi Biotec130-080-701
Rotateur de tube MACSmixMiltenyi Biotec130-090-753
Acide trifluoroacétique (TFA)Pierce28904
Trypsine/Lys-C MixPROMEGAV5073
Mini complet, sans EDTA Cocktail d’inhibiteurs de protéaseRoche11836170001
Density Gradient Solution ( Histopaque 1077)Sigma Aldrich10771-100ML
AccumaxSigma AldrichA7089-100ML
Sérum humain à partir de plasma AB humain mâle (SAB)Sigma AldrichH4522-100ML
Solution d’albumine sérique bovine (BSA) 30 %Sigma AldrichA9576-50ML
Trisma-baseSigma AldrichT1503
GlycérolSigma Aldrich49767
&beta ;-MercaptoethanolSigma AldrichM3148
Bleu de bromophénolSigma Aldrich114405
Dodécylsulfate de sodium (SDS) 20 %Sigma Aldrich5030
Bicarbonate d’ammoniumSigma Aldrich9830
AcétonitrileSigma Aldrich34888
DithiothreitolSigma Aldrich43819
IodoacétamideSigma Aldrich57670
ThiouréeSigma AldrichT8656
CHAPSSigma AldrichC9426
Micro BCA Kit de dosageThermoFisher23235
Pipette en plastique stérile 5 mLVWR612-1685
Thermomixeur C Eppendorf VWR460-0223
Sep-Pak tC18 cartouches en phase inverse, 100 mgWatersWAT036820

Références

  1. Okabe, Y., Medzhitov, R. Tissue biology perspective on macrophages. Nature Immunology. 17 (1), 9-17 (2016).
  2. Sica, A., Mantovani, A. Macrophage plasticity and polarization: in vivo veritas. The Journal of Clinical Investigation. 122 (3), 787-795 (2012).
  3. <....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Demander l’autorisation de réutiliser le texte ou les figures de cet article JoVE

Demander une autorisation

Mots-clés

Quantification sans marquagefractionnement en geldigestion la Lys C trypsinedigestion en solutionfocalisation iso lectriquecondition hypoxiqueisolement des monocytes CD14cytom trie en flux

Articles connexes