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Article de méthode

Préparation et Immunostaining des cérébelleux Myélinisantes Organotypiques

11K vues

DOI :

10.3791/59163

20 mars 2019

Dans cet article

Résumé

Nous présentons ici une méthode pour préparer organotypique cultures tranche de cervelet de souris et de la gaine de myéline, la coloration par immunohistochimie approprié pour enquêter sur les mécanismes de la myélinisation et remyélinisation du système nerveux central.

Résumé

Dans le système nerveux, la myéline est une structure complexe membranaire générée par myélinisantes glial cells, les axones des cellules et facilite la conduction électrique rapide. Altération de la myéline s’est avérée de se produire dans diverses maladies neurologiques, où elle est associée à des déficits fonctionnels. Ici, nous fournir une description détaillée d’un ex vivo modèle composé de tranches de cervelet organotypique souris, qui peuvent être maintenues en culture pour plusieurs semaines et encore être étiquetés de manière à visualiser la myéline.

Introduction

Les neurones sont des cellules hautement polarisées, qui forment un compartiment somato-dendritique qui reçoit les entrées de son environnement et un axone qui assure la génération et la propagation des impulsions électriques à d’autres cellules. Propagation rapide et en temps opportun de l’information est essentielle au bon fonctionnement du système nerveux. Chez les vertébrés, elle est facilitée par la myélinisation, qui permet d’augmenter la vitesse de conduction axonale1. La myéline est une structure spécialisée, formée par des couches compactées de membrane de plasma généré par les cellules gliales myélinisantes, à savoir les oligodendrocy....

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Protocole

Tous les travaux impliquant des animaux respecté les politiques institutionnelles et aux lignes directrices établies par l’UPMC, INSERM et Français et communautaire européen, la Directive 86/609/CEE.

1. préparation du milieu de Culture et de la Culture insère (Hands-on temps ≈ 10 à 15 min)

Remarque : Effectuez cette étape dans une hotte à flux culture en conditions stériles

  1. Préparation de 40 mL de milieu de culture, qui se compose de 50 % afro-Caribéens, équilibré de Solution de 25 % Hank saline (1 x), 25 % inactivés par la chaleur cheval sérum, additionné de dérivé de glutamine 2 mM, 1....

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Résultats

Exemples de myéline représentant immunostainings en tranches de cervelet organotypique provenant de P9-P10 C57black6 sauvage (WT) (Figure 2 a), ainsi que les souris transgéniques PLP-GFP (Figure 2 b), ainsi que la coloration des cellules de Purkinje. Myéliniser de la substance blanche cérébelleuses tranches pistes région des tranches vers la périphérie de la folia et myélinisation des cellules de Purkinje est principalement obten.......

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Discussion

Ici, nous détaillons un protocole pour générer un ex vivo modèle correspondant aux souris cérébelleux organotypiques, adapté de précédemment méthodes publiées15,16,19 et la myéline ultérieure immunomarquage de ces préparations. Cette stratégie offre la possibilité de visualiser les composants de la myéline avec une haute résolution dans les États sains et pathologiques.

Organotypiques cervelet de sour.......

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Déclarations de divulgation

Aucun des auteurs ont des intérêts divergents ou conflits d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions le Dr Sean Freeman, Dr Nathalie Sol-Foulon et Dr Thomas Roux de précieux commentaires sur le manuscrit. Ce travail a été financé par l’INSERM, ICM, ARSEP subventions R13123DD, ANR R17127DD (d’après JC) et bourses de recherche FRM, SPF20110421435 (d’après JC), FDT20170437332 (à M.T.). Nous remercions les installations de culture de cellule CELIS et l’icm. Plate-forme d’imagerie quant.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
BME moyenThermoFisher Scientific41010026
Hank' s Solution saline équilibrée (10x HBSS)ThermoFisher Scientific14180046
GlutaMAX (100x)ThermoFisher Scientific35050038
Sérum de cheval inactivé par la chaleurThermoFisher Scientific26050088
Pénicilline&ndash ; Streptomycine (10.000 UI/mL)ThermoFisher Scientific15140122
Gey' s Solution saline équilibréeSigma AldrichG9779-500ML
Solution de D-glucose (45 %)Sigma AldrichG8769-100ML
Lysophosphatidylcholine (LPC)Sigma AldrichL4129-100MG
Paraformaldéhyde (PFA)Microscopie électronique Sciences15714
Éthanol absolu (100 % éthanol)VWR Chemicals20821.330Refroidi à -20° ; C
Triton® ; X-100Sigma AldrichX100-500ML
10 % Sérum de chèvre normal (NGS)ThermoFisher Scientific500622
Phosphate Buffer SolutionEuroMEDEXET330-ApH 7.4
Anticorps anti-GFP (polyclonal, poulet)Merck Millipore06-896Dilution 1/300
Anticorps anti-protéine basique de myéline (MBP) (polyclonal, poulet)Merck MilliporeAB9348Dilution 1/150
Anticorps anti-myéline basique (MBP) (monoclonal, souris IgG2b)Merck MilliporeNE1019Dilution 1/200
Anticorps anti-PLP (rat, hybride)Don du Dr K. Ikenaka ; Okasaki, JaponDilution 1/5 à 1/10
Canal antisodique, anticorps Pan (monoclonal, IgG1 de souris, clone K58/35)Sigma AldrichS8809Dilution 1/150
Anticorps anti-Caspr (polyclonal, lapin)Abcamab34151Dilution 1/500
Anticorps secondaires de chèvre conjugués à Alexa Fluor 488, 594, 647 ou 405ThermoFisher Scientific1/500
FluoromountSouthernBiotech0100-20
Hachoir à tissusMcIlwain
Lames de
Grands ciseauxF.S.T14101-14
Petits ciseauxF.S.T91500-09
Pince fine-droiteF.S.T91150-20
Pince courbée-fineF.S.T11297-00
Boîtes de culture cellulaire (60 mm et 100 mm)TPP
4, 6 puitsInserts
(0,4 µ ; m, 30 mm de diamètre)Merck MilliporePICM0RG50
Incubateur de37° ; C, 5 % CO2
Pointes de pipette à extrémité fineDutscher134000CL
Pointes de pipette à alésage largeThermoFisher Scientific2079G
Seringue stérileTerumo Europe20 ou 50 mL
Filtres à seringue stérilesTerumo Europe0.22 µ ; m
ScalpelSwann-Morton0510
Brosse
Lames de microscopeRS France76 mm x 26 mm x 1,1 mm
Lamelles en verreRS France22 mm x 22 mm Kimtech
Sciences Essuie-glacesKimberly-Clark Professional5511
Microscopebinoculaire
Dilution rasoirPlaques de culture de culture Millicell culture cellulaire

Références

  1. Monje, M. Myelin Plasticity and Nervous System Function. Annual Review Neuroscience. 41, 61-76 (2018).
  2. Desmazières, A., Sol-Foulon, N., Lubetzki, C. Changes at the nodal and perinodal axonal domains: a basis for multiple scleros....

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

Immunomarquage de la my lineDissection tissulaireIsolation du cerveletPr paration de culture de coupesD my linisation au LPCProc dure d immunohistochimieRemy linisation de la my lineN ud de RanvierTransg nique PLP GFP