Article de méthode

Imagerie de la dynamique du calcium dans les sous-populations de cellules d'islet pancréatique de souris

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DOI :

10.3791/59491

26 novembre 2019

Dans cet article

Résumé

Ici, nous présentons un protocole pour la formation image et la quantification de la dynamique du calcium dans les populations cellulaires hétérogènes, telles que les cellules des isfètes pancréatiques. Les reporters fluorescents sont livrés dans la couche périphérique des cellules dans l'înet, qui est alors immobilisé et image, et l'analyse par cellule de la dynamique de l'intensité de fluorescence est effectuée.

Résumé

Les hormones pancréatiques d'istique règlent l'homéostasie de glucose sanguin. Les changements dans la glycémie induisent des oscillations du calcium cytosolique dans les cellules des îcles pancréatiques qui déclenchent la sécrétion de trois hormones principales : l'insuline (à partir des cellules de l'A), le glucagon (cellules de l'A) et la somatostatine (cellules). Les cellules, qui constituent la majorité des cellules des îcaux et sont couplées électriquement les unes aux autres, répondent au stimulus de glucose en tant qu'entité unique. L'excitabilité des sous-populations mineures, des cellules et des cellules (qui représentent environ 20 % (30 %) et 4% (10%) du nombre total total de cellules d'înce de rongeur1 (humain2) est moins prévisible et est donc d'un intérêt particulier.

Les capteurs de calcium sont livrés dans la couche périphérique des cellules dans l'înisolé. L'îlots ou un groupe d'îlots est ensuite immobilisé et photographié à l'aide d'un microscope à fluorescence. Le choix du mode d'imagerie se situe entre un débit plus élevé (champ large) et une meilleure résolution spatiale (confocale). Traditionnellement, la microscopie confocale de balayage laser est employée pour le tissu d'imagerie, car elle fournit la meilleure séparation du signal entre les cellules voisines. Un système à champ large peut également être utilisé, si le signal contaminant de la population dominante de cellules de l'A est réduit au minimum.

Une fois que la dynamique calcique en réponse à des stimuli spécifiques a été enregistrée, les données sont exprimées sous forme numérique comme intensité de fluorescence par rapport au temps, normalisée à la fluorescence initiale et corrigée de base, afin d'éliminer les effets liés au blanchiment de la Fluorophore. Les changements dans la fréquence de pointe ou la zone partielle sous la courbe (pAUC) sont calculés par rapport au temps, pour quantifier les effets observés. pAUC est plus sensible et assez robuste tandis que la fréquence de pointe fournit plus d'informations sur le mécanisme de l'augmentation du calcium.

Des sous-populations cellulaires mineures peuvent être identifiées à l'aide de réponses fonctionnelles à des composés marqueurs, comme l'adrénaline et la ghréline, qui induisent des changements dans le calcium cytosolique dans une population spécifique de cellules d'éclet.

Introduction

Le but de la méthode est d'imager les changements en temps réel de la concentration cytosolique de calcium ([Ca2']cyt) dans les sous-populations mineures des cellules pancréatiques d'îcle. Cela permet de découvrir les mécanismes régissant la sécrétion hormonale dans ces cellules, révélant des détails sur le cross-talk entre les différents types de cellules et, potentiellement, l'introduction d'une dimension populationdans l'image plus large de la signalisation des îîaux.

Les îlots se composent de plusieurs types de cellules. Outre les cellules plus connues de sécrétion d'insuline, il existe au moins deux sous-populatio....

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Protocole

Toutes les méthodes décrites ici ont été élaborées conformément à la Loi de 1986 sur les animaux (procédures scientifiques) du Royaume-Uni et aux lignes directrices éthiques de l'Université d'Oxford.

1. Isoler les îlots pancréatiques de souris

  1. Préparer le milieu de la culture et la solution d'isolement.
    1. Composent le milieu de culture : RMPI1640 (voir Tableau des matériaux),complété par 10 % de sérum fœtal de veau, 100 unités/pénicilline mL, 100 og/mL de streptomycine. Distribuer le milieu dans deux plats Petri en plastique de 60 mm (non traités avec un adhésif), et conserver la vaisselle dans l'incubateur ....

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Résultats

Les îlots se chargent assez bien avec les colorants trapoutables (figure 1A),à moins que la composition lipidique de la membrane n'ait été affectée (p. ex., par exposition chronique aux acides gras). Le vecteur humain de type 5 (Ad5) de type adénovirus (Ad5) cible également toutes les cellules des îîchers (figure 1B). Des problèmes peuvent survenir lorsque plus d'un capteur recombinant est exprimé dans la même cellule. En outre,.......

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Discussion

Il y a trois étapes dans le protocole qui sont essentielles au succès global. L'injection réussie de l'enzyme Liberase dans le conduit biliaire détermine non seulement le succès quantitatif de la procédure d'isolement, mais affecte également la qualité des îlots isolés. Pancreata non gonflé peut avoir comme conséquence l'absence de quelques réponses métaboliques importantes dans les îlots isolés. Deuxièmement, le chargement du colorant/l'expression du capteur définit le rapport signal-bruit de l'enregistrement time-lapse.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d'intérêts.

Remerciements

AH a reçu un doctorat sur le diabète au Royaume-Uni, EV a été soutenu par le programme de formation OXION-Wellcome Trust, AIT a tenu une bourse postdoctorale Oxford Biomedical Research Council.

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
40x/1.3
Axiovert 200
microscope émission
Excitation
Sérum fœtal bovinSigma-AldrichF7524-500ML
Fluo4Thermo Fisher (Life Technologies)F14201
GCaMP6f, in (type humain 5) vecteur adénoviralVector Biolabs1910
La solution de HanksThermo Fisher (GibCo, Life Technologies)
LiberaseSigma-Aldrich5401020001
pénicilline/streptomycineThermo Fisher (GibCo, Life Technologies)15140122
RPMI mediumThermo Fisher (GibCo, Life Technologies)61870044
Système confocal Zeiss LSM510-METACarl Zeiss
Objectif

Références

  1. Elayat, A. A., el-Naggar, M. M., Tahir, M. An immunocytochemical and morphometric study of the rat pancreatic islets. Journal of Anatomy. 186, Pt 3 629(1995).
  2. Cabrera, O., et al.

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Mots-clés

Microscopie fluorescenceMicroscopie confocaleImagerie champ largeFr quence des pics de calciumAire partielle sous la courbeStimulation l adr naline et la ghr lineImmobilisation des lotsAnalyse d imagerie calcique

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