Article de méthode

Mouvement de la fusillade du traceur CFDA chargé dans les tissus de l’évier inférieur de l' Arabidopsis

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DOI :

10.3791/59606

11 mai 2019

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Le but de ce protocole est de montrer comment charger la CFDA dans différents sites des parties inférieures de l' Arabidopsis. Nous présentons ensuite le modèle de distribution de CF dans les pousses.

Résumé

Le traceur symplastique 5 (6)-carboxyfluorescéine diacétate (CFDA) a été largement appliqué dans les plantes vivantes pour démontrer la connexion intercellulaire, le transport de phloème et le modelage vasculaire. Ce protocole montre le mouvement de la carboxyfluorescéine de bas en haut (CF) dans l' Arabidopsis à l’aide de la procédure de découpage des racines et de l’hypocotyle-pincement respectivement. Ces deux procédures différentes résultent en différentes efficacités du mouvement des FC: environ 91% de l’apparition de CF dans les pousses avec la procédure d’hypocotyle-pincement, alors que seulement environ 70% de l’apparition de CF avec la procédure de coupe des racines. Le simple changement des sites de chargement, entraînant des changements significatifs dans l’efficacité mobile de ce colorant symplastique, suggère que le mouvement des FC pourrait être soumis à la régulation symplasique, probablement par la jonction racine-hypocotyle.

Introduction

De nombreux traceurs fluorescents avec une gamme de propriétés spectrales, comme l’acide 5 (6)-carboxyfluorescéine (CF) 1,8-hydroxypyrène-1, 3, 6-trisulphonique2, Lucifer Yellow ch (Lych)3, esculine et cter4, ont été développés et appliqué dans les plantes pour surveiller le mouvement symplastique et l’activité de phloème. En général, un colorant symplastique est chargé dans une coupe dans le tissu cible et la dispersion séquentielle du reporter dans d’autres parties de la plante démontrera la communication intercellulaire. Bien que le mécanisme d’absorption des colorants n....

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Protocole

1. Arabidopsis croissance verticale dans le milieu MS

  1. L’intérieur de l’armoire à écoulement laminaire doit être traité avec 30 min de lumière UV et 15 min d’air avant utilisation. Assurez-vous de fermer la porte vitrée lorsque la lumière UV est allumé. Vaporisez tous les outils et plaques avec 70% d’éthanol avant de les placer dans l’armoire.
  2. Préparer le milieu Murashige et Skoog (MS) dans une boîte de Petri standard de 90 mm de diamètre sous une armoire à flux laminaire.
    NOTE: le médium MS contient les éléments suivants: 20,6 mM NH4no3, 18,8 mm kno3, 1,25 mm KH2po4, 1,5 mM MgSO

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Résultats

Le mouvement symplastic est souvent soumis à des fluctuations environnementales. Perturbation de l’état de culture de la plante, et même le processus de préparation tissulaire affectera la limite d’exclusion de la taille des plasmodesmes, affectant ainsi le transport symplastique22. Pour améliorer l’efficacité de coloration, nous limitons notre fonctionnement dans la salle de croissance, où la température et l’humidité est étroitement contrôlée, et aussi effectuer .......

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Discussion

Des études émergentes ont montré que les plantes peuvent réagir rapidement aux stimuli externes23, y compris la manipulation introduite dans les procédures expérimentales22. Dans notre expérience initiale, notre surveillance de cette connaissance conduit souvent à l’échec de coloration. Avec ces leçons, nous suggérons que les précautions suivantes doivent être maintenues à l’esprit lors de l’exécution de cette expérience: (1) les semences après la récolte doivent être conse.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été financé par la Fondation nationale des sciences naturelles de la Chine (31671257) et le centre d’innovation collaborative Hubei pour l’industrie céréalière (LXT-16-18).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
KNO3  ;   ;Réactif chimique Sinopharm10017218
KH2PO4  ;Réactif chimique Sinopharm10017608
MgSO4· ; 7H2ORéactif chimique Sinopharm10013018
CaCl2· ; 2H2ORéactif chimique Sinopharm20011160
MnSO4· ; H2O  ;Réactif chimique Sinopharm10013418
Na2MoO4· ; 2H2ORéactif chimique Sinopharm10019818
Acide boriqueRéactif chimique Sinopharm10004818
ZnSo4· ; 7H2ORéactif chimique Sinopharm10024018
CuSO4· ; 5H2ORéactif chimique Sinopharm10008218
CoCl2· ; 6H2ORéactif chimique Sinopharm10007216
KIRéactif chimique Sinopharm10017160
FeSO4· ; 7H2ORéactif chimique Sinopharm10012118
EDTA  ;Réactif chimique Sinopharm10009717
Réactif chimique NaOHSinopharm10019718
KOHRéactif chimique Sinopharm10017018
SaccharoseRéactif chimique Sinopharm10021418
Myo-inositol  ;   ;MACKLINI811835
Acide nicotinique  ;MACKLINN814565
Pyridoxine HClMACKLINV820447
Thiamine HClMACKLINT818865
GlycineMACKLING800880
Poudre de géloseNovonZZ14022
Microscope à fluorescenceZeissAxio Zoom V16
Microscope à dissectionSDPTOPSRE-1030
200&mu ; l pipetteDragon Laboratory Instruments713111110000-20-200ul
2.5&mu ; l pipetteEppendorf3120000011
Pince fine  ;PINCEST-15
ParafilmPARAFILMPM-996
Lame double face en acier inoxydableGillettePlatinum-Plus Lame
à double tranchant

Références

  1. Grignon, N., Touraine, B., Durand, M. 6(5)Carboxyfluorescein as a tracer of phloem sap translocation. American Journal of Botany. 76, 871-877 (1989).
  2. Wright, K. M., Oparka, K. J. The fluorescent ....

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Mots-clés

Transport symplastiquemouvement du phlo mecoupe de racinepincement de l hypocotyleplants d Arabidopsissonde fluorescentetransport via les plasmodesmescoloration vasculaire

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