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Article de méthode

Isolement des sous-ensembles macrophages et des cellules stromales des spécimens myocardiques humains et de souris

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DOI :

10.3791/60015

17 décembre 2019

Dans cet article

Résumé

Présenté ici est un protocole pour isoler divers sous-ensembles de macrophages et d'autres cellules non immunisées du myocarde humain et de souris en préparant une suspension de cellules simples par la digestion enzymatique. Des schémas de gating pour l'identification et la caractérisation basées sur la cytométrie de flux sont également présentés.

Résumé

Les macrophages représentent les populations de cellules immunitaires les plus hétérogènes et abondantes dans le cœur et sont au cœur de l'inflammation et des réponses réparatrices après une blessure cardiaque. La façon dont divers sous-ensembles de macrophages orchestrent les réponses immunitaires après une lésion cardiaque est un domaine de recherche actif. Présenté ici est un protocole simple que notre laboratoire effectue régulièrement, pour l'extraction des macrophages à partir de spécimens de myocarde de souris et de myocardes humains obtenus à partir d'individus sains et malades. En bref, ce protocole implique la digestion enzymatique du tissu cardiaque pour générer une suspension de cellules simples, suivie de la coloration d'anticorps, et de la cytométrie de flux. Cette technique convient aux essais fonctionnels effectués sur les cellules triées ainsi qu'au séquençage de l'ARN en vrac et à cellule unique. Un avantage majeur de ce protocole est sa simplicité, la variation minimale au jour le jour et la grande applicabilité permettant l'étude de l'hétérogénéité macrophage à travers divers modèles de souris et entités de maladie humaine.

Introduction

Les macrophages représentent le type de cellules immunitaires le plus abondant dans le cœur, et ils jouent un rôle significatif dans la génération de réponses inflammatoires et réparatrices robustes à la suite d'une blessure cardiaque1,2,3,4. Auparavant, notre groupe a identifié deux sous-ensembles principaux de macrophages dans le coeur murine dérivé des origines développementales distinctes5,6. De façon générale, des populations distinctes de sous-ensembles de macrophage cardiaque ....

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Protocole

Le protocole présenté a été approuvé par l'Université de Washington à St. Louis Institutional Review Board (#201305086). Tous les sujets donnent un consentement éclairé avant la collecte de l'échantillon et les expériences sont effectuées conformément au protocole d'étude approuvé. Le protocole présenté est exécuté avec l'approbation du Comité institutionnel de soins et d'utilisation des animaux de la Washington University School of Medicine et suit les lignes directrices décrites dans le Guide des NIH pour les soins et l'utilisation des animaux de laboratoire.

1. Préparation de spécimens de tissus cardiaques humains

  1. Rincer les cœ....

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Résultats

Le protocole décrit permet l'isolement des macrophages de la souris et du myocarde humain. En utilisant le même protocole, mais avec une stratégie différente de coloration et de gating, les cellules stromales peuvent également être récoltées à partir du myocarde humain. Les résultats de FACS présentés ici ont été acquis soit sur la plate-forme BD LSRII ou BD FACS ARIA III. Des contrôles de compensation ont été produits à partir d'échantillons de contrôle de couleur unique des splenocytes .......

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Discussion

Le protocole permet l'extraction de divers sous-ensembles de macrophages à partir du myocarde humain. Le protocole est simple et prend de 3 à 4 heures pour préparer une suspension à cellule unique prête pour l'analyse FACS. Bien que le protocole soit relativement simple à exécuter, il y a certains aspects techniques qui doivent être considérés qui minimiseront la variabilité. Tout d'abord, travailler en temps opportun avec les tissus humains est nécessaire pour une viabilité cellulaire optimale. Il est important de garde.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce projet a été rendu possible grâce à un financement du Children's Discovery Institute de l'Université de Washington et de l'Hôpital pour enfants st. Louis (CH-II-2015-462, CH-II-2017-628), de la Fondation de l'Hôpital juif Barnes (8038-88) et de l'NHLBI (R01) HL138466, R01 HL139714). K.J.L. est soutenu par NIH K08 HL123519 et Burroughs Welcome Fund (1014782).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
15 mL Tubes conocauxThermo Fisher14-959-53A
40 & micro ; m Filtres à cellulesThermo Fisher50-828-736
50 mL Tubes coniquesThermo Fisher352098
Tampon de lyse ACKGibcoA10492-01
Albumine sérique bovineSigmaA2058
Collagénase 1SigmaC0130-1G
DAPIThermo FisherD1306
DMEM 1xGibco11965-084
DNAse 1SigmaD4527-20KU
DRAQ5Thermo Fisher62251
EDTA 0,5 M pH 8Corning46-034-CI
désactivation des enzymes490 mL HBSS, 10 mL FBS, 1 g BSA
FACS Tampon976 mL PBS, 20 mL FBS, 4 mL EDTA (0,5 m)
Fœtal Sérum bovinGibcoA3840201
ForcepsVWR82027-406
HBSS 1xGibco14175-079
HémostatiquesVWR63042-052
Hyaluronidase type 1-sSigmaH3506-500MG
PBS 1xGibco14190-136
Boîtes de PétriThermo Fisher
lame de rasoirVWR55411-050
CiseauxVWR82027-578
Tampon de172931

Références

  1. Pinto, A. R., et al. An abundant tissue macrophage population in the adult murine heart with a distinct alternatively-activated macrophage profile. PLoS One. 7 (5), e36814(2012).
  2. Hulsmans, M., et al. Macrophages facilitate electr....

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