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Les interactions dynamiques protéines-protéines contrôlent le comportement cellulaire, de la motilité à la réplication de l'ADN en passant par la transduction du signal. Cependant, il est techniquement difficile de surveiller les interactions dynamiques entre plusieurs protéines dans un réseau d'interaction protéique. Ici, nous présentons un protocole pour l'immunoprécipitation multiplexe quantitative (QMI), qui permet l'évaluation quantitative des changements de pli dans les interactions protéiques basées sur des mesures relatives de fluorescence des protéines dans les complexes partagés détectés par Exposed Épitopes de surface (PiSCES). Dans QMI, les complexes protéiques des lysates cellulaires sont immunoprécipités sur les microsphères, puis sondés avec un anticorps étiqueté pour une protéine différente afin de quantifier l'abondance du PiSCES. Les anticorps immunoprécipitations sont conjugués à différentes régions spectrales magbead, ce qui permet à un cytomètre de flux de différencier plusieurs immunoprécipitations parallèles et de quantifier simultanément la quantité d'anticorps de sonde associée à chacune. QMI n'exige pas le marquage génétique et peut être effectué en utilisant un biomatériau minimal par rapport à d'autres méthodes d'immunoprécipitation. QMI peut être adapté pour n'importe quel groupe défini de protéines en interaction, et a jusqu'à présent été utilisé pour caractériser les réseaux de signalisation dans les lymphocytes T et les synapses neuronales de glutamate. Les résultats ont mené à la nouvelle génération d'hypothèse s'est chargée d'applications diagnostiques et thérapeutiques potentielles. Ce protocole comprend des instructions pour effectuer QMI, de la sélection initiale du panneau d'anticorps jusqu'aux essais en cours d'exécution et à l'analyse des données. L'assemblage initial d'un test QMI consiste à filtrer les anticorps pour générer un panneau et à déterminer empiriquement un tampon de lyse approprié. La préparation subséquente de réactif inclut covalently accouplement des anticorps d'immunoprécipitation aux MagBeads, et anticorps de sonde de biotinylating de sorte qu'ils puissent être étiquetés par un fluorophore streptavidin-conjugué. Pour exécuter l'essai, le lysate est mélangé avec des MagBeads pendant la nuit, puis les perles sont divisées et incubées avec différents anticorps de sonde, et puis une étiquette de fluorophore, et lues par cytométrie de flux. Deux tests statistiques sont effectués pour identifier les PiSCES qui diffèrent considérablement entre les conditions expérimentales, et les résultats sont visualisés à l'aide de cartes thermiques ou de diagrammes de nœuds.