Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Génération de modifications génomiques définies à l'aide de CRISPR-CAS9 dans les cellules souches pluripotentes humaines

7.6K vues

DOI :

10.3791/60085

25 septembre 2019

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce protocole fournit une méthode pour faciliter la génération de changements définis de nucléotide hétérozygote ou homozygote à l'aide de CRISPR-CAS9 dans les cellules souches pluripotentes humaines.

Résumé

Les cellules souches pluripotentes humaines offrent un système puissant pour étudier la fonction génique et modéliser des mutations spécifiques pertinentes à la maladie. La génération de modifications génétiques hétérozygotes précises est difficile en raison de la formation d'indéléves médiées par CRISPR-CAS9 dans le deuxième allèle. Ici, nous démontrons un protocole pour aider à surmonter cette difficulté en utilisant deux modèles de réparation dans lesquels un seul exprime le changement de séquence souhaité, tandis que les deux modèles contiennent des mutations silencieuses pour empêcher la re-coupe et la formation d'indel. Cette méthodologie est plus avantageuse pour l'édition de gènes codant les régions de l'ADN pour générer le contrôle isogénique et les lignées de cellules souches humaines mutantes pour étudier la maladie humaine et la biologie. En outre, l'optimisation des méthodologies de transfection et de dépistage a été réalisée pour réduire le travail et le coût d'une expérience d'édition de gènes. Dans l'ensemble, ce protocole est largement applicable à de nombreux projets d'édition du génome utilisant le modèle de cellules souches pluripotentes humaines.

Introduction

Les cellules souches embryonnaires humaines (HESC) et les cellules souches pluripotentes induites (iPSC) sont des outils précieux pour modéliser les maladies humaines en raison de leur capacité de renouvellement, tout en maintenant la capacité de générer des types cellulaires de lignées différentes1,2 ,3,4. Ces modèles ouvrent la possibilité d'interroger la fonction génique, et de comprendre comment des mutations spécifiques et des phénotypes sont liés à diverses maladies5,6. Cepend....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

1. Conception et construction de l'ARN de guide (gRNA)

REMARQUE: Chaque gRNA est composé de deux 60 paires de base (bp) oligonucléotides qui sont annealed pour générer un 100 bp double échoué (ds) oligonucléotide (Figure 1A-C). Le délai pour la conception, la génération et l'efficacité de coupe de test de gRNA est d'environ 2 semaines (figure 2).

  1. Sélectionnez la région d'adn d'intérêt à modifier le génome et identifiez 3-4 23 bp séquences qui correspondent au format, 5'-G(N19)NGG-3'. Ces séquences devraient être situées à moins de 20 pb de la r....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

Génération de gARN et dépistage des indels

Chaque gRNA sera cloné dans un vecteur plasmide et exprimé à l'aide du promoteur U6. L'enzyme de restriction AflII est utilisée pour linéariser le plasmide (addgene #41824) et est située après le promoteur U6. La bande de 100 pb générée après l'annexion des deux oligos de 60 pb est clonée dans le vecteur d'expression gRNA à l'aide de l'assemblage de l'ADN. Une fois que les plasmides gRNA sont générés, ils sont transfectés en .......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Dans ce protocole, l'utilisation de CRISPR-CAS9 ainsi que de deux modèles de réparation ssODN pour générer des changements spécifiques du génome hétérozygote ou homozygotes est démontrée dans les cellules souches pluripotentes humaines. Cette méthode a eu comme conséquence la génération réussie des lignées cellulaires isogéniques exprimant des changements génomiques hétérozygotes avec une efficacité proche de 10%. Ce protocole a été optimisé pour les ESC humains et les iPSC cultivés sur des MEF irradiés qui soutiennent l.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Remerciements

Cette recherche a été financée par le National Heart, Lung, and Blood Institute (NHLBI), les National Institutes of Health par le biais de subventions U01HL099656 (P.G. et D.L.F.) et U01HL134696 (P.G. et D.L.F.).

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Tube à fond rond en polystyrène de 5 ml avec capuchon de filtre cellulaireCorning352235
Boîtes de culture tissulaire en polystyrène à 6 puitsCorning353046
AflII endonucléaseNew England BiolabsR0520
AgaroseVWRN605
DMEM/F12 moyenThermoFisher11320033
dNTPsRoche11969064001
tri de cellules activées par fluorescence (FACS)
Kit d’extraction de gelMacherey-Nagel740609
Gibson Kit d’assemblageNew England BiolabsE2611
gRNA_Cloning VectorAddgene41824
LB Plaques de gélose contenant 50 &mu ; g/ml de kanamycine
Réactif de tige de lipofectamineThermoFisher(STEM00001)
Matrigel à facteur de croissance réduit (DFG)Corning354230
Fibroblastes embryonnaires murins (MEF)
Extraction de gel de nucléospine et kit de nettoyage par PCRMacherey-Nagel
vecteur pCas9_GFPAddgene44719
Tubes de bandelettes PCRUSA Scientific1402-2900
Phusion Haute Fidélité ADN Polymérase et 5× ; Tampon PhusionNew England BiolabsM0530
PurelinkTM Kit de minipréparation rapide de plasmideInvitrogenK210011
Proteinase KQiagenQiagen 19133
StellarTM Cellules Escherichia coli électrocompétentesTakaraTM
SOCNew England BiolabsB9020S
Enzyme express TrypLEThermoFisher12605036
Dichlorhydrate de Y-27632/inhibiteur de ROCK (ROCKi)Tocris1254
Appareil de Incubateur à agitation orbitale 740609 Milieu 636763

Références

  1. Srivastava, D., Dewitt, N. Review In Vivo Cellular Reprogramming: The Next Generation. Cell. 166 (6), 1386-1396 (2016).
  2. Clevers, H. Review Modeling Development and Disease with Organoids. Cell. 165 (7), 1586-1597 (2016).
  3. Murry, C. E., Keller, G.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Étiquettes

Édition génomiquelignées cellulaires isogéniquesmutations hétérozygotesmatrices de réparationoptimisation de la transfectionsélection de coloniestri cellulaire activé par fluorescencedigestion par enzyme de restriction