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Article de méthode

Un modèle sphéroïde 3D comme un système plus physiologique pour les fibroblastes associés au cancer différenciation et l'invasion des études in vitro

8.8K vues

DOI :

10.3791/60122

8 août 2019

Dans cet article

Résumé

L'objectif de ce protocole est d'établir un modèle in vitro 3D pour étudier la différenciation des fibroblastes associés au cancer (CAF) dans un environnement en vrac tumoral, qui peut être abordé dans différents systèmes d'analyse, tels que l'immunofluorescence, la transcription l'analyse et l'imagerie des cellules de vie.

Résumé

Définir le modèle idéal pour une étude in vitro est essentiel, principalement si l'étude des processus physiologiques tels que la différenciation des cellules. Dans le stroma tumoral, les fibroblastes hôtes sont stimulés par les cellules cancéreuses pour se différencier. Ainsi, ils acquièrent un phénotype qui contribue au microenvironnement tumoral et soutient la progression tumorale. En utilisant le modèle sphéroïde, nous avons mis en place un tel système de modèle in vitro 3D, dans lequel nous avons analysé le rôle de la laminin-332 et son récepteur integrin 3-1 dans ce processus de différenciation. Ce système de modèle sphéroïde reproduit non seulement les conditions de microenvironnement de tumeur d'une manière plus précise, mais est également un modèle très polyvalent puisqu'il permet différentes études en aval, telles que la coloration immunofluorescente de l'intra- et de l'extracellulaire marqueurs, ainsi que les protéines de matrice extracellulaire déposées. En outre, les analyses transcriptionnelles par qPCR, la cytométrie de flux et l'invasion cellulaire peuvent être étudiées avec ce modèle. Ici, nous décrivons un protocole d'un modèle sphéroïde pour évaluer le rôle de l'integrin de CAFs '3'1 et son ligand ectopique déposé, laminin-332, dans la différenciation et en soutenant l'invasion des cellules cancéreuses pancréatiques.

Introduction

Le microenvironnement tumoral est une niche très complexe et extrêmement importante pour le maintien et la progression des cellules tumorales1. Il est formé non seulement par les cellules cancéreuses, mais aussi par les fibroblastes stromaux. Les cellules tumorales sont entourées d'un stroma qui est spécifique et différent du stroma des tissus normaux2. Lalaminin-332 est une protéine de matrice extracellulaire ectopiquement exprimée dans le stroma de différentes tumeurs, telles que de l'adénocarcinome pancréatique3. En outre, la composition biochimique de l'ECM et aussi ses propriétés biophysiques....

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Protocole

1. Les sphéroïdes 3D comme modèle in vitro pour la différenciation fibroblaste/CAF à l'aide de différents composés inhibiteurs du TGF-1

  1. Mélanger 1 partie de la solution de méthylcellulose de 6 mg/mL et 3 parties du support de culture cellulaire, MEM complétée avec 1% de sérum bovin foetal inactivé par la chaleur (FBS) et 1% de pénicilline/streptomycine pour obtenir la solution de formation sphéroïde.
  2. Resuspendre les fibroblastes normaux immortalisés fraîchement décongelés (iNF), les CAF immortalisés (iCAFs) ou l'intégrine de l'iCAF KO 3-1 (passage jusqu'à 25) dans la solution de formation sphéroïde. Si vous préparez une plaque de puits de 96, prépa....

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Résultats

Les résultats de cette conception expérimentale sont publiés dans Martins Cavaco et al.13, qui est recommandé pour une lecture plus approfondie des conclusions qui ont été tirées de ces expériences.

Figure 1, image représentative d'un sphéroïde immunofluorescent, montre l'immunostaining de la sous-unité integrin no 3 des fibroblastes normaux immortalisés et des CAF immortalis.......

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Discussion

Développer un modèle in vitro approprié pour étudier la différenciation des FAC est une tâche difficile. Après avoir utilisé différentes approches, nous avons conclu qu'un modèle sphéroïde 3D est le modèle le plus pratique, physiologique et cliniquement pertinent, dans lequel l'interaction entre les cellules du carcinome pancréatique avec des CAF immortalisés peut être étudiée. Ce modèle a empêché la différenciation spontanée des fibroblastes, due aux facteurs de stress artéfactuels tels que la rigidité du plastique de c.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d'intérêts. Ce matériel ne reflète que les vues de l'auteur et l'Union européenne n'est pas responsable de toute utilisation qui peut être faite des informations qui y sont contenues.

Remerciements

Nous reconnaissons l'aide de Barbara Schedding dans la préparation du BM2 et du lebein-1. Nous remercions Àgnes Noel d'avoir partagé son expertise dans les essais sphéroïdes. Nous remercions Sonja Schelhaas et Michael Schàfers pour leur aide dans la gestion de la transfection lentivirale dans des conditions S2. Nous reconnaissons l'insistance de Sabine von Ràden dans la préparation des CAF à partir de tissus cancéreux pancréatiques.

La recherche menant à ces résultats a reçu un financement du Programme des personnes (Actions Marie Curie) du septième programme-cadre de l'Union européenne, le 7e PC/2007-2013/ dans le cadre de l'accord de subv....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
4',6-Diamidino-2-Phénylindole, Dichlorhydrate (DAPI)SIGMA-ALDRICHD9542-10
6F12 anti-Laminine &bêta ; 3 sous-unité Souris (monoclonale)Maison
A3IIF5 Anti-&alpha ; 3 sous-unité d’intégrine Souris (monoclonale)Aimablement fourni par Prof. M. Hemler, Dana Faber-Cancer Institute, Boston
AcétoneSIGMA-ALDRICH32201
Albumine Fraction V - BSAAppliChemA1391
Alexa fluor 488 Chèvre (polyclonale) anti-sourisInvitrogenA11029
Alexa fluor 488 Chèvre (polyclonale) LapinInvitrogenA11034
Anti-laminine &gamma ; 2 sous-unité Souris (monoclonale)Santa Cruzsc-28330
Anti-NG2 Lapin (polyclonal) Millipore, AB5320MilliporeAB5320
Anti-&alpha ;-SMA-Cy3 Souris (monoclonale)SIGMA-ALDRICHC6198
AsPC-1 cell lineATCCAimablement donné par le prof. Jorg Haier
Lab Benchcentrifuge Fisher Scientific50-589-620Sprout
BM2 anti-laminine & alpha ; 3 sous-unité Souris (monoclonale)Aimablement fourni par le Prof. Patricia Rousselle, CNRS, Lyon
Chlorure de calcium (CaCl2)Fluka21074
CentrifugeuseThermo ScientificMultifuge 1S-R
Tubes à centrifuger 50 mLCorning430290
Collagénase BRoche11088831001
Collagène-I, queue de ratGibcoA10483-01
Microscope confocalZeissLSM 700 et 800
DMEM (High glucose 4,5 g/L)LonzaBE12-604F
Dnase IRoche10104159001
Cytomètre en fluxBD BiosciencesFACSCaliburTM
Matrice gélifianteThermoFisher ScientificA1413202Matrigel, Geltrex
Chèvre IgG, isotypeDAKOX 0907
Sérum de chevalSIGMA-ALDRICH12449-C
Fibroblastes pancréatiques primaires humainsPELOBiotechPB-H-6201
IncubateurHeraeusB6060
Laminin-332BiolaminaLN332
MEMSIGMA-ALDRICHM4655
Microplaque, 96 puits, fond en UGreiner Bio-One650101
Lames de microscopeThermo ScientificJ1800AMNZ
Souris IgG, isotypeSIGMA-ALDRICHI8765
Mélangeur rotatif multi-axesCATRM5 80V
PANC-IATCCAimablement offert par Prof. Jorg Le laboratoire de Haier
: le paraformaldéhydeRiedel-de Haëuml ; n16005
Pénicilline/streptomycineGibco15140-122
QuantiTect Kit de transcription inverseQiagen205310
IgG de rat, isotypeInvitrogen10700
Tubes de réaction, 1,5 mLGreiner Bio-One616201
Cycleur de PCR en temps réelQiagenRotor-Gene Q
RNeasy Mini KitQiagen74104
Rotor Gene SYBR Green PCR KitQiagen204074
RPMILonzaBE12-702FAjouter du glucose à 4,5 g (filtre de 0,2 μm) et du pyruvate de sodium à 1 %
TritonX-100SIGMA-ALDRICHX100RS
Vó ; rtexScientific IndustriesVortex-Genie 2
&mu ;-Slide Angiogenesis, non revêtuIbidi81501

Références

  1. Pietilä, M., Ivaska, J., Mani, S. A. Whom to blame for metastasis, the epithelial-mesenchymal transition or the tumor microenvironment? Cancer Letters. 380 (1), 359-368 (2016).
  2. Heldin, C. -H., Rubin, K., Pietras, K., Ostman, A. High inters....

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Modèle de sphéroïdes 3DIntégrine Alpha3 Bêta1Laminine-332Formation de sphéroïdesMarquage immunofluorescentAnalyse par qPCRCytométrie en fluxInvasion cellulaireFixation au paraformaldéhyde