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In Vivo Optical Calcium Imaging of Learning-Induced Synaptic Plasticity in Drosophila melanogaster In Vivo Optical Calcium Imaging of Learning-Induced Synaptic Plasticity in Drosophila melanogaster In Vivo Optical Calcium Imaging of Learning-Induced Synaptic Plasticity in Drosophila melanogaster In Vivo

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DOI :

10.3791/60288

8 octobre 2019

Dans cet article

Résumé

Ici nous présentons un protocole avec lequel le calcium pré- et/ou postsynaptic peut être visualisé dans le contexte de l'apprentissage et de la mémoire de Drosophila. L'imagerie in vivo de calcium utilisant des capteurs de calcium synaptically localisés est combinée avec un paradigme olfactif classique de telle sorte que la plasticité synaptique sous-jacente à ce type d'apprentissage associatif peut être déterminée.

Résumé

Des décennies de recherche dans de nombreux organismes modèles ont conduit au concept actuel de plasticité synaptique sous-jacent à l'apprentissage et à la formation de la mémoire. Les changements induits par l'apprentissage dans la transmission synaptique sont souvent répartis dans de nombreux neurones et niveaux de traitement dans le cerveau. Par conséquent, des méthodes pour visualiser la plasticité synaptique dépendante de l'apprentissage à travers les neurones sont nécessaires. La mouche des fruits Drosophila melanogaster représente un organisme modèle particulièrement favorable pour étudier les circuits neuronaux sous-jacents à l'apprentissage. Le protocole présenté ici montre comment les processus sous-jacents à la formation de mémoires olfactives associatives, c'est-à-dire l'activité synaptique et leurs changements, peuvent être surveillés in vivo. En utilisant le large éventail d'outils génétiques disponibles dans Drosophila, il est possible d'exprimer spécifiquement des indicateurs de calcium génétiquement codés dans les populations cellulaires déterminées et même les cellules individuelles. En fixant une mouche en place, et en ouvrant la capsule de tête, il est possible de visualiser la dynamique du calcium dans ces cellules tout en fournissant des stimuli olfactifs. En outre, nous démontrons une configuration dans laquelle la mouche peut être soumise, simultanément, à des chocs électriques au corps. Cela fournit un système dans lequel les mouches peuvent subir un conditionnement olfactif classique - par lequel une odeur auparavant naïve est appris à être associée à la punition de choc électrique - en même temps que la représentation de cette odeur (et d'autres odeurs non formées) est observé dans le cerveau par microscopie à deux photons. Notre laboratoire a déjà signalé la génération de capteurs de calcium synaptically localisés, ce qui permet de confiner les signaux fluorescents de calcium aux compartiments pré- ou postsynaptiques. La microscopie à deux photons permet de résoudre spatialement les structures fines. Nous l'exemplifions en nous concentrant sur les neurones intégrant l'information du corps des champignons, un centre d'ordre supérieur du cerveau des insectes. Dans l'ensemble, ce protocole fournit une méthode pour examiner les connexions synaptiques entre les neurones dont l'activité est modulée à la suite de l'apprentissage olfactif.

Introduction

Déchiffrer où et comment l'information est acquise dans le cerveau par l'apprentissage et ensuite stocké comme mémoire constitue l'une des tâches les plus difficiles en neurosciences1. La recherche neuroscientifique a mené au concept d'un changement dans la transmission synaptique comme substrat neuronal qui sous-tend l'apprentissage et la formation de mémoire2,3. On suppose que, pendant l'apprentissage, les connexions synaptiques entre les ensembles neuronaux qui sont actifs pendant la perception d'un stimulus sont modifiées de telle sorte que leur modèle d'activité combiné peut être r....

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Protocole

1. Mouches des fruits transgéniques, Drosophila melanogaster

  1. Traverser les mouches femelles vierges et mâles (élevées à 25 oC dans une humidité relative de 60 % sur un cycle clair/sombre de 12 h) transportant les constructions Gal4 et UAS souhaitées25,respectivement, pour produire des mouches dans lesquelles des neurones d'intérêt spécifiques expriment un cycle génétiquement codé calcium.
  2. Age de la progéniture féminine de la croix ci-dessus jusqu'à ce qu'ils soient dans la gamme de 3-6 jours après l'eclosion. Les mouches femelles sont préférables en raison de leur taille légèrement plus grande.

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Résultats

Un exemple d'images acquises avec le protocole ci-dessus peut être vu dans la figure 2. d (en) Homer-GCaMP3 est exprimé dans un neurone de sortie MB dont les dendrites innervate le compartiment 1 de la MB -lobe (le neurone est appelé MVP228,29) et est génétiquement ciblée en utilisant la ligne split-Gal4 MB112C16. En outre, démontré est la différence dans la localisati.......

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Discussion

La dissection des circuits neuronaux sous-jacents à l'apprentissage et à la mémoire est un objectif important dans le domaine des neurosciences. L'accessibilité génétique de Drosophila et l'ampleur et la facilité des tests comportementaux en font un outil idéal pour étudier de tels phénomènes. Ici, une méthode est présentée avec laquelle il est possible de visualiser, au sein des mouches individuelles, la modulation qui se produit à un niveau subcellulaire à la suite du conditionnement olfactif. En réalisant à l.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par le Conseil allemand de recherche par l'intermédiaire du Centre de recherche collaboratif SFB 889 "Mécanismes of Sensory Processing" et l'Unité de recherche POUR 2705 "Dissection d'un circuit cérébral: Structure, Plasticité et fonction comportementale de la Corps de champignons Drosophila".

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
1-Octen-3-olSigma-Aldrich, St. Louis, MO, USAO5284Produit chimique utilisé comme odorisant
3-OctanolSigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA218405Produit chimique utilisé comme odorisant
4-MethylcyclohexanolSigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA153095Produit chimique utilisé comme odorisant
Filtre passe-bande pour EGFP (525/50 nm)Carl Zeiss Microscopy GmbH, Jena, Allemagne
Ruban adhésif transparentTesa SE, Norderstedt, AllemagneRuban adhésif transparent standard
Mâchoires concaves-convexesFine Science Tools, North Vancouver, Canada10053-09 Porte-lamesà mâchoires concaves-convexes Pinces
finesFine Science Tools, North Vancouver, Canada11412-11Pince à pointe 0,1 x 0,06 mm
AiguillehypodermiqueSterican - B. Braun, Melsungenk, Allemagne46651201.20x40mm
Épingles Minutien pour insectesFine Science Tools, North Vancouver, Canada26002-10Diamètre 0.1mm, pointe 0.0125mm
KentoflowKent Express Dental Supplies, Gillingham, UK953683Colle photopolymérisable bleue
Lame de microscopeCarl Roth GmbH & Co. KG, Karlsruhe, Allemagne0656.1Objectif standard diapositive 76 x 26 mm
Huile minéraleSigma-Aldrich, St. Louis, MO, USAM8410Utilisé comme diluant pour les odorisants
Laser Ti-Sapphire à verrouillage de mode Chameleon Vision 2Coherent Inc., Santa Clara, CA, USALaser femtoseconde infrarouge accordable
Microscope multiphotonique LSM 7MP équipé de détecteurs BiGCarl Zeiss Microscopy GmbH, Iéna, AllemagneMicroscope multiphotonique, plusieurs entreprises fournissent des appareils similaires.
Plan-Apochromat 20x (NA = 1.0) Objectif à immersion dans l’eauCarl Zeiss Microscopy GmbH, Iéna, Allemagne421452-9900-000Objectif W « Plan-Apochromat » 20x/1.0 DIC M27 70mm
Solution RingerKCl, 130mM NaCl, 2mM MgCl2, 2mM CaCl2, 5mM Hepes-NaOH, 36mM saccharose, pH = 7,4
Couteau à couteauxSharpoint, Surgical Specialties Corporation, Reading, PA, États-Unis72-15515,0 mm Profondeur de lame droite limitée
Lame de scalpel chirurgicalSwann-Morton, Sheffield, UK0303Produit n° 11
Manche de scalpel chirurgicalSwann-Morton, Sheffield, UK0907Produit n° 7S/S
Le logiciel Visual Basics of Applicatons (VBA) pour recevoir un déclencheur
du dispositif de diffusion d’odeurs et le dispositif d’application de choc électrique
(alimentation) pour interagir avec le logiciel ZEN
de Zeiss qui contrôle le microscope.
Rédigé sur mesure et disponible sur demanden.a.n.a.
n.a.n.a.5mM

Références

  1. Poo, M. M., et al. What is memory? The present state of the engram. BMC Biology. 14, 40(2016).
  2. Martin, S. J., Grimwood, P. D., Morris, R. G. Synaptic plasticity and memory: an evaluation of the hypothesis. Annual Review of Neuroscience. 23, 649-711....

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Mots-clés

Microscopie biphotoniqueConditionnement olfactifIndicateurs de calcium g n tiquement encod sNeurones du corps p donculAdministration de stimuli olfactifsConditionnement par choc lectriqueImagerie subcellulaire

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