La synthèse des protéines sans cellules (CFPS) est une technologie émergente dans les systèmes et la biologie synthétique pour la production in vitro de protéines. Toutefois, si le SCFP veut aller au-delà du laboratoire et devenir une technologie de fabrication répandue et standard juste à temps, nous devons comprendre les limites de performance de ces systèmes. Vers cette question, nous avons développé un protocole robuste pour quantifier 40 composés impliqués dans la glycolyse, la voie de phosphate de pentose, le cycle d'acide tricarboxylique, le métabolisme énergétique et la régénération de cofactor dans les réactions de CFPS. La méthode utilise des normes internes étiquetées avec 13C-aniline, tandis que les composés de l'échantillon sont dérivés de 12C-aniline. Les normes internes et l'échantillon ont été mélangés et analysés par spectrométrie de masse de chromatographie liquide de phase inversée (LC/MS). La co-élution des composés a éliminé la suppression d'ion, permettant la quantification précise des concentrations de métabolites au-dessus de 2-3 ordres de grandeur où le coefficient moyen de corrélation était 0.988. Cinq des quarante composés n'ont pas été étiquetés avec de l'aniline, cependant, ils ont été encore détectés dans l'échantillon DEPFC et quantifiés avec une méthode standard de courbe. La course chromatographique prend environ 10 minutes à compléter. Pris ensemble, nous avons mis au point une méthode rapide et robuste pour séparer et quantifier avec précision 40 composés impliqués dans le SPFC en un seul lcl/MS. La méthode est une approche complète et précise pour caractériser le métabolisme sans cellules, de sorte qu'en fin de compte, nous pouvons comprendre et améliorer le rendement, la productivité et l'efficacité énergétique des systèmes sans cellules.