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Article de méthode

Purkinje Cell Survival in Organotypic Cerebellar Slice Cultures

8.1K vues

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DOI :

10.3791/60353

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18 décembre 2019

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Dans cet article

Résumé

Les cultures de tranches organotypiques sont un outil puissant pour étudier les processus neurodéveloppementaux ou dégénératifs/régénérateurs. Ici, nous décrivons un protocole qui modélise la mort neurodéveloppementale des cellules de Purkinje dans les cultures de tranche de cévedrillon de souris. Cette méthode peut bénéficier à la recherche dans la découverte de médicaments neuroprotecteurs.

Résumé

La culture de tranches organotypiques est un modèle in vitro puissant qui mimicks in vivo conditions plus étroitement que les cultures cellulaires primaires dissociées. Au début du développement postnatal, les cellules cérévelaires de Purkinje sont connues pour passer par une période vulnérable, au cours de laquelle elles subissent la mort cellulaire programmée. Ici, nous fournissons un protocole détaillé pour effectuer la culture de tranche de cervelateur organotypic de souris pendant ce temps critique. Les tranches sont également étiquetées pour évaluer la survie des cellules de Purkinje et l'efficacité des traitements neuroprotecteurs. Cette méthode peut être extrêmement utile pour dépister de nouvelles molécules neuroactives.

Introduction

La modélisation in vitro est un outil essentiel de la recherche biomédicale. Il permet aux chercheurs d'étudier et de contrôler étroitement des mécanismes spécifiques dans les types de cellules restreintes, ou dans des systèmes/organes isolés. La culture de tranches organotypiques est une technique in vitro largement utilisée, en particulier dans le domaine des neurosciences1. La méthode a d'abord été mise en place par le président Dehwiler, qui a cultivé des tranches de cerveau en utilisant la technique du tube à rouleaux2, puis modifiée par Yamamoto et coll., qui ont introduit l'utilisation d'une membrane microporeuse ....

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Protocole

Toutes les expériences impliquant des animaux ont été réalisées conformément au comité d'études animales de l'Université Northwestern.

1. Préparation avant les cultures de tranches de cervelateur organotypiques

  1. Dans une hotte de culture cellulaire pulvérisée avec 70% d'éthanol à l'avance, préparer 200 ml de milieu de culture dans un filtre à vide de 250 ml fixé à un récepteur de bouteille stérile. Ajouter 100 ml d'aigle moyen basal (BME), 50 ml de solution de sel équilibré (HBSS) de Hanks, 50 ml de sérum de cheval inactivé par la chaleur, 1 ml de 200 mL de L-Glutamine (concentration finale 1 mM) et 5 ml de glucose de 200 g/L (conc....

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Résultats

Comme le montre la figure 4, ce protocole produit des cultures de tranches de cervelateurs organotypiques dans lesquelles la survie des cellules de Purkinje peut être évaluée après les étapes d'immunofluorescence et d'acquisition d'image. Les cellules purkinje ont été étiquetées avec une combinaison d'anticorps anti-Calbindin D-28K (dilution 1/200) et d'anticorps anti-souris Alexa594 (dilution 1/300). La couture d'image a été faite automatiquement par le logiciel d'acquisition de microscope .......

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Discussion

La culture de tranches de céveltove est un outil puissant pour étudier la mort cellulaire programmée de Purkinje pendant le développement postnatal. Cette technique peut être utilisée pour dépister rapidement les molécules candidates pour leur potentiel neuroprotecteur. Le principal avantage est que la configuration est simple et très rentable, et ne nécessite qu'un investissement modeste dans l'équipement (un vibratome peut coûter jusqu'à 3 fois plus cher qu'un hélico de tissu). En outre, 10 à 15 tranches saines peuvent.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n'ont rien à révéler.

Remerciements

Les travaux d'imagerie ont été réalisés au Northwestern University Center for Advanced Microscopy généreusement soutenu par NCI CCSG P30 CA060553 décerné au Robert H Lurie Comprehensive Cancer Center. Nous remercions Sean McDermott pour son assistance technique et son soutien, et Maya Epstein pour les illustrations dessinées à la main présentées à la figure 1.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Alexa Fluor 594 Donkey anti-Mouse IgG anticorps secondaireThermoFisher scientificA21203
Basal Medium Eagle (BME)ThermoFisher scientific21010046
Biosafety box Class II, Type A2NuAireNU-540-400
Albumine sérique bovineMillipore SigmaA2153
Brush
anticorps anti-Calbindin D-28K (CB-955)Abcamab82812
Incubateur CO2NuAireNU-5700
Corning Costar Flat Bottom 6-well Cell Culture Plates FisherScientific07-200-83
Coverslips, 22 x 50 mmFisher Scientific12-545-E
Pince à pansement, droiteHarvard Apparatus72-8949
Lames à double tranchantFisher Scientific50949411
Éthanol 200 proofDecon Labs, Inc2701
Ciseaux pour les yeux, droitsAppareil Harvard72-8428
Pince fineFisher Scientific16-100-127
L-Glutamine 100XThermoFisher scientific25030149
Solution de glucoseThermoFisher scientifiqueA2494001
Hanks' Solution saline équilibréeThermoFisher scientific14025092
Hoechst 33342, trichlorhydrate trihydratéFisher ScientificH21492
Sérum pour cheval, inactivé par la chaleur, origine néo-zélandaiseThermoFisher scientific26050088
ImageJ
McIlwain Tissue ChopperFisher ScientificNC9914528
MicrosondesFisher Scientific08-850
Inserts de culture cellulaire Millicell MilliporeSigmaPICM0RG50
Nalgene Unités de filtration stériles jetables à débit rapide avec membrane PES, 250 mLThermoFisher scientific168-0045
Système de microscope laser confocal Nikon A1R
NIS-ElementsNikon
ParaformaldéhydeAcros Organics41678-0010
Pasteur pipettesFisher Scientific13-678-20D
Chlorure de potassiumFisher ScientificBP366-500
ProLong Gold Antifade MountantThermoFisher scientificP10144
Ciseaux opératoires, droitsHarvard Apparatus72-8403
Vibrateur orbital Belly DancerIBI ScientificBDRLS0003
Prism 8GraphPad
Superfrost Plus Lames de microscopeFisher Scientific12-550-15
Boîte de culture tissulaire, 60 mm avec anneau de préhensionFisher ScientificFB012921
Plaque de culture tissulaire, 24 puitsFalcon/Corning
Pipettes de transfert, stérilesThermoFisher scientific13-711-21
Triton X-100ThermoFisher scientificBP151-500
Logiciel d’imagerie Nikon 353047

Références

  1. Humpel, C. Organotypic brain slice cultures: A review. Neuroscience. 305, 86-98 (2015).
  2. Gahwiler, B. H. Organotypic monolayer cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 4 (4), 329-342 (1981).
  3. Yamamoto, N., Kurotani, T., Toyama, K.

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Réimpressions et autorisations

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