Présentés ici sont des méthodes détaillées pour la dissection et la coloration gouttelette de lipide des ovocytes dans les larves de Drosophila à l'aide de BODIPY 493/503, un colorant fluorescent spécifique aux gouttelettes lipidiques.
Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.
Article de méthode
* These authors contributed equally
Présentés ici sont des méthodes détaillées pour la dissection et la coloration gouttelette de lipide des ovocytes dans les larves de Drosophila à l'aide de BODIPY 493/503, un colorant fluorescent spécifique aux gouttelettes lipidiques.
Les lipides sont essentiels au développement des animaux et à l'homéostasie physiologique. La dysrégulation du métabolisme lipidique entraîne divers défauts et maladies du développement, tels que l'obésité et le foie gras. Habituellement, les lipides sont stockés dans des gouttelettes lipidiques, qui sont les organites multifonctionnels de stockage de lipides dans les cellules. Les gouttelettes lipidiques varient en taille et en nombre dans différents tissus et dans des conditions différentes. Il a été rapporté que les gouttelettes lipidiques sont étroitement contrôlées par la régulation de sa biogenèse et de la dégradation. Dans Drosophila melanogaster, l'oenocyte est un tissu important pour le métabolisme des lipides et a été récemment identifié comme un analogue du foie humain en ce qui concerne la mobilisation des lipides en réponse au stress. Cependant, les mécanismes sous-jacents à la régulation du métabolisme des gouttelettes lipidiques dans les ovocytes restent insaisissables. Pour résoudre ce problème, il est de la plus haute importance de développer une méthode fiable et sensible pour visualiser directement les changements dynamiques des gouttelettes lipidiques dans les ovocytes pendant le développement et dans des conditions stressantes. Profitant du BODIPY 493/503 lipophile, un colorant fluorescent spécifique aux gouttelettes lipidiques, décrit ici, est un protocole détaillé pour la dissection et la coloration subséquente des gouttelettes lipidiques dans les oenocytes des larves de Drosophila en réponse à la famine. Cela permet une analyse qualitative de la dynamique des gouttelettes lipidiques dans diverses conditions par microscopie confocale. En outre, cette méthode rapide et hautement reproductible peut également être utilisée dans les écrans génétiques pour l'indentification de nouveaux facteurs génétiques impliquant le métabolisme des gouttelettes lipidiques dans les ovocytes et autres tissus.
Les lipides sont essentiels à la survie cellulaire. En plus de leur rôle traditionnel en tant que composants intégrals des systèmes de membrane cellulaire, les lipides jouent également des fonctions cruciales dans l'approvisionnement en énergie et la transmission de signalisation tout au long des cycles de vie des animaux individuels1. Ainsi, le métabolisme des lipides doit se conformer à des règlements stricts pour maintenir l'hémostasie physiologique dans les cellules. On sait que la dysrégulation du métabolisme des lipides entraîne diverses maladies, comme le diabète et le foie gras. En dépit de la grande importance du métabolisme de lipide ....
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
1. Pontde d'oeufs
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
L'exécution réussie de cette procédure devrait avoir comme conséquence la coloration claire de gouttelettes de lipide qui indique le nombre et la taille des gouttelettes de lipide dans les oenocytes. Figure 1A,A',A', A'' montre qu'il y a peu de gouttelettes lipidiques détectables (points verts) dans les oenocytes des larves d'alimentation normales à différents stades de développement. Figure 1B,B',B''
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Parmi ceux décrits ci-dessus, il y a plusieurs étapes critiques dans ce protocole, avec la période de ponte d'oeufs étant l'un de ces. En tant que tissu mobilisateur de lipides, l'oenocyte est très sensible au statut nutritionnel6,8. Des périodes prolongées de ponte peuvent entraîner une augmentation de la concurrence alimentaire avec les larves et les aliments, ce qui entraîne des résultats inexacts. La période de 1 h de pont utilisée dans ce protocole permet au.......
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Les auteurs n'ont aucun conflit d'intérêts à divulguer.
Ces travaux ont été soutenus par des subventions de la National Natural Science Foundation of China (31671422, 31529004 et 31601112), du projet 111 (D18010), du projet local d'innovation et de recherche du Guangdong Perl River Talents Program (2017BT01S155) et du China Postdoctoral Science Foundation (2018M640767).
....Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Tube à centrifuger de 50 mL | Corning | 430829 | 50 mL |
| Boîte de Pétri de 6 cm Thermo | Fisher | 150326 | 6 cm |
| Gélose | Pour nourriture contre les mouches | ||
| Feuille d’aluminium | N/A | N/A | Protéger l’érable de la lumière |
| BODIPY 493/503 | Invitrogen | D3922 | Colorant de coloration des gouttelettes de lipides |
| Microscope | confocalLeica | Leica Leica TSC SP5 | Imagerie confocale Sirop |
| maïs | Pour l’alimentation des mouches | ||
| Semoule | Pour l’alimentation des mouches | ||
| Lamelle | Citoglas | 10212424C | 20 × ; 20 mm, 0,13-0,17 d’épaisseur |
| Goupille de dissection | N/A | N/A | |
| Plaque de dissection | N/A | N/A | |
| Papier filtre | N/A | N/A | Diamètre : 11 cm |
| Tampon de fixation | N/A | N/A | 4 % Paraformaldéhyde (PFA) dans 1x Pince PBS |
| Dumont | 11252-30 | #5 | |
| Incubateur | Jiangnan | SPX-380 | Pour la culture de mouches |
| Tube de microcentrifugation | Axygen | MCT-150-C | 1,5 mL |
| Lame de microscopie | Citoglas | 10127105P-G | |
| Support de montage | VECTASHIELDAntifade Support de montage | H-1000 | Support de montage anti-décoloration |
| Vernis à ongles | PanEra | AAPR419 | Sceller la lamelle |
| Pinceau | N/A | N/A | |
| PBS | N/A | N/A | 1x PBS (137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4,1.8 mM KH2PO4, pH 7,4) |
| Rotateur | Kylin-Bell Lab Instruments | WH-986 | |
| Ciseaux | Smartdata Medical | SR81 | Ciseaux à ressort Vannas |
| Farine | Pour nourriture pour mouches | ||
| Spatule | N/A | N/A | |
| Aliment standard à la semoule de maïs | N/A | N/A | Codage selon la recette standard de semoule de maïs |
| Bloomington Stéréo microscope | Leica | Leica S6E | Pour la dissection tissulaire |
| Papier essuyé | N/A | N/A | |
| Levure | Pour l’alimentation des mouches | ||
| yw | Conservé comme stock de laboratoire | N/A | Drosophile |
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.