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Article de méthode

Évaluation de l’électrophysiologie cardiaque préclinique par la double tension et la cartographie optique du calcium des tranches cardiaques organotypic humaines

10.3K vues

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DOI :

10.3791/60781

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16 juin 2020

 ,  , 

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce protocole décrit la procédure de sectionnage et de culture de tranches cardiaques humaines pour les tests de médicaments précliniques et détaille l’utilisation de la cartographie optique pour l’enregistrement de la tension transmembrane et des signaux de calcium intracellulaire simultanément à partir de ces tranches.

Résumé

Des préparations de tranches cardiaques humaines ont récemment été développées comme plate-forme pour les études de physiologie humaine et les tests thérapeutiques afin de combler le fossé entre les essais animaux et cliniques. De nombreux modèles animaux et cellulaires ont été utilisés pour examiner les effets des médicaments, mais ces réponses diffèrent souvent chez l’homme. Les tranches cardiaques humaines offrent un avantage pour le dépistage des drogues en ce qu’elles sont directement dérivées de cœurs humains viables. En plus d’avoir conservé des structures multicellulaires, un couplage cellule-cellule, et des environnements de matrice extracellulaire, les tranches de tissu cardiaque humain peuvent être utilisées pour tester directement l’effet d’innombrables médicaments sur la physiologie cardiaque humaine adulte. Ce qui distingue ce modèle des autres préparations cardiaques, comme les cœurs entiers ou les coins, c’est que les tranches peuvent être soumises à une culture à plus long terme. En tant que tel, les tranches cardiaques permettent d’étudier les effets aigus ainsi que chroniques des médicaments. En outre, la capacité de recueillir plusieurs centaines à mille tranches d’un seul cœur en fait un modèle à haut débit pour tester plusieurs médicaments à des concentrations et des combinaisons variables avec d’autres médicaments en même temps. Des tranches peuvent être préparées à partir de n’importe quelle région du cœur. Dans ce protocole, nous décrivons la préparation des tranches ventriculaires gauches en isolant les cubes de tissu de la paroi libre ventriculaire gauche et en les sectionnant en tranches à l’aide d’un microtome vibrant de haute précision. Ces tranches peuvent alors être soumises à des expériences aiguës pour mesurer la fonction électrophysiologique cardiaque de base ou cultivées pour des études de médicaments chroniques. Ce protocole décrit également la double cartographie optique des tranches cardiaques pour des enregistrements simultanés des potentiels transmembranes et de la dynamique intracellulaire de calcium pour déterminer les effets des drogues étudiées.

Introduction

Les modèles animaux ont été un outil précieux utilisé pour comprendre les mécanismes sous-jacents de la physiologie humaine et de la pathophysiologie, ainsi qu’une plate-forme pour les tests préliminaires des thérapies pour traiter diverses maladies1. De grands progrès ont été réalisés dans le domaine de la recherche biomédicale sur la base de ces études animales2. Cependant, il existe d’importantes différences entre les espèces entre les physiologies humaines et animales, y compris les souris, les rats, les cochons d’Inde, les lapins, les moutons, les porcs et les chiens3,

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Protocole

Toutes les méthodes décrites ont été exécutées conformément à toutes les lignes directrices institutionnelles, nationales et internationales en matière de bien-être humain. La recherche a été approuvée par la Commission d’examen des institutions (CISR) de l’Université George Washington.

REMARQUE : Les cœurs humains de donneurs ont été acquis de la communauté régionale de transplantation de Washington en tant que tissu déidentifié jeté avec l’approbation de la CISR de l’Université George Washington. Les cœurs explantés sont arrêtés cardioplégiquement en rinçant le cœur avec une solution de cardioplégie glacée (le sang a été dégagé du cœur da....

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Résultats

Des tranches organotypic humaines ont été prélevées dans le ventricule gauche d’un cœur humain donneur selon le protocole détaillé ci-dessus et illustré dansFigure 1. Un système de cartographie optique à double caméra comme celui deFigure 2a été utilisé dans la configuration d’imagerie verticale pour effectuer la cartographie optique simultanée de la tension et du calcium environ 1 h après l’achèvement du protocole de tranchage. Les données ont été analysées à l.......

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Discussion

Ici, nous présentons des méthodes étape par étape pour obtenir des tranches cardiaques viables des coeurs humains cardioplegically arrêtés et pour caractériser fonctionnellement les tranches utilisant la double cartographie optique du potentiel transmembrane et du calcium intracellulaire. Avec l’environnement extracellulaire préservé et le couplage cellulaire indigène-cellule, les tranches cardiaques humaines peuvent être employées comme modèle précis du coeur humain pour la découverte scientifique fondamentale et pour l.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Le financement des NIH (subventions R21 EB023106, R44 HL139248 et R01 HL126802), de la fondation Leducq (projet RHYTHM) et d’une bourse postdoctorale de l’American Heart Association (19POST34370122) est reconnu avec gratitude.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
1mL BD SeringueThomas Scientific309597
2,3-butanedione monoximeSigma-AldrichB0753
Plaques de culture 6 puitsCorning3516
Enceinte de biosécuritéThermoFisher Scientific1377
BlebbistatinCayman13186
Piège à bullesRadnoti
Chlorure de calciumSigma-AldrichC1016
Corning Cell StrainersFisher Scientific07-201-432
Di-4-ANEPPSbiotiumà 1,25 mg/mL dans du DMSO
DMSOSigma-AldrichD2650
Dumont #3c ForcepsFine Science Tools11231-20
Miroir dichroïque d’émissionChromaT630LPXR-UF1
Filtre d’émission (RH237)Filtre d’émission ChromaET690/50m
(Rhod2AM)ChromaET590/33m
Miroir dichroïque d’excitationChromaT550LPXR-UF1
Filtre d’excitationChromaET500/40x
Falcon 50mL Tubes coniques à centrifugerFisher Scientific14-959-49A
Échangeur de chaleur GlucoseSigma-AldrichG8270
Radnoti158821
HEPESSigma-AldrichH3375
IncubateurThermoFisher Scientific50145502
Transfert d’insuline Sélénium (ITS)Sigma-AldrichI3146
Source lumineuse d’excitation LEDPrizmatixUHP-Mic-LED-520
Chlorure de magnessium hexahydratéSigma-AldrichM9272
Medium 199ThermoFisher Scientific11150059
Micam Ultima L type CMOScamera ScimediaN/A
Minutien PinsFine Science Tools26002-10
Pennicilline-StreptomycineSigma-AldrichP4333
Pompe péristaltiqueCole ParmerEW-07522-20
Fil de stimulation en platineAlfa Aesar43275
Pluronic F127ThermoFisher ScientificP6867non ionique, tensioactif polyol
Chlorure de potassiumSigma-AldrichP3911
Données Powerlab acquisition et stimulateurAD InstrumentsPowerlab 4/26
RH237Biotium61018
Rhod2AMThermoFisher ScientificR1245MP
Rhod-2AMInvitrogen, Carlsbad, CA
Bicarbonatede sodium Sigma-AldrichS6014
Chlorure de sodiumSigma-AldrichS9625
Stérilisateur, perle sècheSigma-AldrichZ378550
Pierre Diffuseur d’oxygèneBois d’eauB00O0NUVM0
TissueSeal - Histoacryl Topical Skin AdhésifgobiomedAESCULAP
UltraPure Low Melting Point AgaroseThermo Fisher Scientific16520100
SonicateurBranson 1800
VibratomeCampden Instruments7000 smz
130149 Solution mère de à ultrasons

Références

  1. Ericsson, A. C., Crim, M. J., Franklin, C. L. A brief history of animal modeling. Missouri Medicine. 110 (3), 201-205 (2013).
  2. Choudhary, A., Ibdah, J. A. Animal models in today's translational medicine world. Missouri Medicine. 110 (3), 220-222 (2013).
  3. Perlman, R. L.

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Réimpressions et autorisations

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