Ici, nous affichons une méthode efficace pour la purification des oligodendrocytes et la production de milieu conditionné par oligodendrocyte s’il peut être utilisé pour des expériences de co-culture.
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Article de méthode
Ici, nous affichons une méthode efficace pour la purification des oligodendrocytes et la production de milieu conditionné par oligodendrocyte s’il peut être utilisé pour des expériences de co-culture.
Dans le système nerveux central, les oligodendrocytes sont bien connus pour leur rôle dans la myélinisation des axones, qui accélère la propagation des potentiels d’action par conduction saltatoire. En outre, un nombre croissant de rapports suggèrent que les oligodendrocytes interagissent avec les neurones au-delà de la myélinisation, notamment par la sécrétion de facteurs solubles. Ici, nous présentons un protocole détaillé permettant la purification des cellules de lignée oligodendroglial des cultures gliales de cellules contenant également des astrocytes et des cellules microgliales. La méthode repose sur des secousses de nuit à 37 oC, ce qui permet le détachement sélectif des cellules oligodendroglial et des cellules microgliales sus-jacentes, et l’élimination des microglies par adhérence différentielle. Nous décrivons ensuite la culture des oligodendrocytes et la production du milieu oligodendrocyte-conditionné (OCM). Nous fournissons également la cinétique du traitement d’OCM ou des oligodendrocytes s’ajoutent aux neurones hippocampiques purifiés dans des expériences de co-culture, étudiant des interactions oligodendrocyte-neuron.
Les oligodendrocytes (OL) sont des cellules gliales du système nerveux central (SNC) qui génèrent de la myéline enveloppant autour des axones. Les OL proviennent de cellules précurseurs oligodendrocytes (OPC) qui prolifèrent dans les zones ventriculaires du SNC embryonnaire, puis migrent et se différencient en OL sœurs entièrement matures (c.-à-d. cellules formant la myéline)1. Les CPVP sont abondants au début du développement, mais persistent également dans le cerveau adulte où ils représentent la population principale de cellules proliérantes2. Un seul OL ensheathes plusieurs axones dans des sections non-excitables (c.....
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Le soin et l’utilisation des rats dans cette expérience sont conformes aux politiques et directives institutionnelles (DIRECTIVE 86/609/CEE de l’UPMC, de l’INSERM et du Conseil communautaire européen). Le protocole suivant est établi pour une portée standard de 12 chiots.
1. Préparation des flacons (5 min)
REMARQUE : Effectuez les étapes suivantes la veille de la dissection dans une hotte à débit laminaire dans des conditions stériles.
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Dans ce protocole, les cellules de lignée d’OL sont purifiées des cultures gliales en secouant des astrocytes et des microglies. L’examen de pureté et phénotypique des cultures d’OL peut être évalué par immunostaining avec des marqueurs glial15. L’analyse de l’expression de différents marqueurs a indiqué que les cultures d’OL étaient pour la plupart des pré-OL avec 90 % - 4 % des cellulesO4, 85 % et 7 % decellules NG2, et 4,7 % - 2,1 % des
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Ici, nous fournissons un protocole détaillé pour obtenir des cultures cellulaires oligodendroglial hautement enrichies de cellules de lignée de glial, adapté d’une méthode précédemment éditée16, et la production suivante du milieu OL-conditionné. Cette technique de secousse n’est pas coûteuse, peut être répétée trois fois et est optimale pour obtenir une grande quantité d’OL purifiés, comme les cellules cultivées dans Bottenstein-Sato (BS) milieu contenant PDGF prolifèrent. Les cellules gliales so.......
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Aucun des auteurs n’a d’intérêts contradictoires ou contradictoires.
Les auteurs tient à remercier Rémi Ronzano pour ses sages conseils en édition manuscrite. Ces travaux ont été financés par l’ICM, l’INSERM, la subvention de la fondation ARSEP à NSF et le prix Bouvet-Labruyère.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 5-fluorodésoxyuridine | Sigma | F0503 | |
| B27 supplément | ThermoFisher | 17504044 | |
| D-(+)-Glucose | solution Sigma | G8769 | |
| DNase (désoxyribonucléase I) | Worthington | LS002139 | |
| Dulbecco’s Modified Eagle Medium | ThermoFisher | 31966021 | |
| Ethanol 100 % | Sigma | 32221-M | |
| Éthanol 70 % | VWR Chemicals | 83801.360 | |
| Sérum de veau fœtal | ThermoFisher | 10082147 | |
| L-cystéine | Sigma | C7352 | |
| ThermoFisher neurobasal | 21103049 | ||
| Papain | Worthington | LS003126 | |
| Pénicilline-Streptomycine | ThermoFisher | 15140122 | |
| Saline tamponnée au phosphate sans calcium ni magnésium | ThermoFisher | A1285601 | |
| Polyéthylénimine(PEI) | Sigma | P3143 | |
| Tétraborate décahydraté | Sigma | B9876 | |
| Trypsine | Sigma | Sigma | |
| Uridine | Sigma | U3750 | |
| Bottenstein-Sato (BS) media | |||
| apo-Transferrin human | Sigma | T1147 | |
| BSA (Bovine Serum Albumin) | Sigma | A4161 | |
| Dulbecco’s Modified Eagle Medium | ThermoFisher | 31966021 | |
| Insulin | Sigma | I5500 | |
| PDGF | Peprotech | AF-100-13A | |
| Pénicilline-Streptomycine | ThermoFisher | 15140122 | |
| Progestérone | Sigma | P8783 | |
| Dichlorhydrate de putrescine | Sigma | P5780 | |
| Sélénite de sodium | Sigma | S5261 | |
| T3 (3,3',5-Triiodo-L-sel sodique de thyronine) | Sigma | T6397 | |
| T4 ( L-Thyroxine) | Sigma | T1775 | |
| Milieu de co-culture | |||
| Apo-Transferrin humain | Sigma | T1147 | |
| B27 supplement | ThermoFisher | 17504044 | |
| Biotin | Sigma | B4639 | |
| BSA (Bovine Serum Albumin) | Sigma | A4161 | |
| Céruloplasmine | Sigma | 239799 | |
| Dulbecco’s Modified Eagle Medium | ThermoFisher | 31966021 | |
| Hydrocortisone | Sigma | H4001 | |
| Insuline | Sigma | I5500 | |
| N-Acétyl-L-cystéine | Sigma | A8199 | |
| Neurobasal | ThermoFisher | 21103049 | |
| Pénicilline-Streptomycine | ThermoFisher | 15140122 | |
| Progestérone | Sigma | P8783 | |
| Putrescin | Sigma | P5780 | |
| Recombinant Humain CNTF | Sigma | 450-13 | |
| Sélénite de sodium | Sigma | S5261 | |
| T3 (3,3',5-Triiodo-L-sel sodique de thyronine) | Sigma | T6397 | |
| Vitamine B12 | Sigma | V6629 | |
| Tools | |||
| 0.22 µ ; m filtre | Sartorius | 514-7010 | |
| Seringue de 1 mL | Terumo | 1611127 | |
| 100 mm Boîte de Pétri | Dutscher | 193100 | |
| Tube de 15 mL | Corning Life Science | 734-1867 | |
| Tube de 50 mL | Corning Life Science | 734-1869 | |
| Boîte de Pétri de 60 mm | Dutscher | 067003 | |
| 70 & micro; m filter | Miltenyi Biotec | 130-095-823 | |
| Microscope binoculaire | Olympus | SZX7 | |
| Pince courbe | Outils pour les sciences fines | 11152-10 | |
| Pince pour | sciences fines Outils pour les sciences 91150-20 | ||
| Grands ciseaux chirurgicaux | Outils pour les sciences fines | 14008-14 | |
| Scalpel | Swann-morton | 233-5528 | |
| Shaker | Infors HT | ||
| Petits ciseaux chirurgicaux | Fine Science Tools | 91460-11 | |
| Petite cuillère chirurgicale | Bar Naor Ltd | BN2706 | |
| T150 cm2 flacon avec bouchon filtrant | Dutscher | 190151 | |
| Animal | |||
| P2 Wistar rat | Janvier | RjHAn :WI |
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