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Article de méthode

Tests à haut débit des limites thermiques critiques chez les insectes

5.2K vues

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DOI :

10.3791/61186

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15 juin 2020

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Dans cet article

Résumé

Les limites thermiques peuvent prédire les environnements que les organismes tolèrent, ce qui est une information précieuse face au changement climatique rapide. Décrits ici sont des protocoles à haut débit pour évaluer les minima thermiques critiques et le temps de choc thermique chez les insectes. Les deux protocoles maximisent le débit et minimisent le coût des tests.

Résumé

Les limites thermiques supérieures et inférieures des plantes et des animaux sont d’importants prédicteurs de leur performance, de leur survie et de leur répartition géographique, et sont essentielles pour prédire les réponses au changement climatique. Ce travail décrit deux protocoles à haut débit pour mesurer les limites thermiques des insectes : l’un pour l’évaluation des minima thermiques critiques (CTmin),et l’autre pour évaluer le temps d’arrêt de la chaleur (KDT) en réponse à un facteur de stress thermique statique. Dans le test ctmin, les individus sont placés dans une colonne à veste acrylique, soumis à une rampe de température décroissante, et comptés comme ils tombent de leurs perchoirs à l’aide d’un capteur infrarouge. Dans le test de chaleur KDT, les individus sont contenus dans une plaque de puits 96, placé dans un incubateur réglé à une température stressante et chaude, et vidéo enregistrée pour déterminer l’heure à laquelle ils ne peuvent plus rester debout et se déplacer. Ces protocoles offrent des avantages par rapport aux techniques couramment utilisées. Les deux essais sont peu coûteux et peuvent être effectués relativement rapidement (~2 h). Le test CTmin réduit l’erreur de l’expérimentateur et peut mesurer un grand nombre d’individus à la fois. Le protocole KDT de chaleur génère un enregistrement vidéo de chaque essai et supprime ainsi le biais d’expérimentateur et la nécessité de surveiller en permanence les individus en temps réel.

Introduction

Limites thermiques des insectes
La variation des conditions environnementales, y compris la température, est un facteur important influençant la performance, la condition physique, la survie et la répartition géographique des organismes1,2. Les limites thermiques supérieures et inférieures déterminent l’éventail théorique des environnements qu’un organisme peut tolérer et, par conséquent, ces limites sont d’importants prédicteurs des distributions végétales et animales, en particulier face au changement climatique3,4. Ainsi, les pro....

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Protocole

1. Essai dect min à haut débit

  1. Assemblage de la colonne en veste (Figure 1A, Figure 2)
    1. Couper les tubes acryliques les plus larges (7 cm x 6,35 cm x 0,3 cm) et les plus étroits (5,7 cm x 5,1 cm x 0,3 cm) à longueurs égales (31,5 cm) avec des scies à aas (figure 2A). Ces deux tubes seront les murs extérieurs et les plus intimes de la colonne veste.
    2. Couper deux anneaux (2 cm de large) du tube acrylique de taille moyenne (6,35 cm x 5,7 cm x 0,3 cm) à l’aide d’une scie à métaux (figure 2

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Résultats

Les limites thermiques (c.-à-d. CTmin et KDT thermique) des femelles du Drosophila melanogaster Genetic Reference Panel (DGRP) ont été mesurées pour démontrer les données à haut débit générées par les deux protocoles décrits. CTmin a été analysé à l’aide des lignes 714 (n = 37) et 913 (n = 45). Le KDT thermique a été analysé et comparé aux lignes 189 (n = 42) et 461 (n = 42), et les fichiers vidéo ont été analysés manuellement. Le temps total des expériences.......

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Discussion


Les deux méthodes détaillées ci-dessus génèrent des données à haut débit de mesures écologiquement pertinentes pour les limites thermiques supérieures et inférieures. Ces protocoles s’appuient sur des méthodologies déjà établies communes à la recherche sur les limites thermiques des insectes (résumées dans Sinclair et al.) 6. Les deux protocoles peuvent être complétés en peu de temps (~2 h chacun), produire des ensembles de données avec de grandes tailles d’échantillon, ne pas sacrifier la rép.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à révéler.

Remerciements

Nous remercions Ellie McCabe pour son aide à l’élevage des mouches. Ce travail est soutenu par la subvention 1010996 du National Institute of Food and Agriculture De l’Institut national de l’alimentation et de l’agriculture des États-Unis et la National Science Foundation accorde oia-1826689 à N.M.T.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Circulateur de fluide réfrigéré ARCTIC A40 (rampes de température programmables)Thermo Scientific ; Waltham, MA153-5401
C922 Pro Stream WebcamLogitech ; Newark, CA960-001087
Pince circulaire réglable en acier &ndash ; 5,08 cm à 7,62 cmAnyAny
Tube acrylique transparent &ndash ; 5,7 cm x 5,1 cm x 0,3 cmUnited States Plastic Corp., OH44036
Tube acrylique transparent &ndash ; 6,35 cm x 5,7 cm x 0,3 cmUnited States Plastic Corp., OH440515
Tube acrylique transparent &ndash ; 7 cm x 6,35 cm x 0,3 cmÉtats-Unis Plastic Corp., OH44041
Scellant silicone transparentN’importe quel N’importe quel
tube de collecte (15 ml)N’importequel N’importe quel
Perceuse sans filN’importe quel
moniteur d’entonnoir de drosophile (DFM)TriKinetics ; Waltham, MADFMUtilisé pour compter le nombre de mouches qui tombent dans l’entonnoir à un moment donné
Logiciel de collecte de données DAMTriKinetics ; Waltham, MAEnregistre les données saisies à partir du
DFM Fly Storage LidFlySorter ; Seatle, WAFS-96LID-5PKUtilisé pour charger les mouches dans la plaque de stockage pour le test sCTmax
Fly Storage PlateFlySorter ; Seatle, WAFS-96PLATE-5PKUtilisé pour retenir les mouches pendant le test sCTmax
Fly Food TrayFlySorter ; Seatle, WAFS-TRAY-5PKUtilisé pour garder les mouches sur les aliments après le chargement dans la plaque à 96 puits jusqu’au test sCTmax
Entonnoir en verreKimax28950-7575mm
Garde de gouttièreN’importe quelOuvertures de diamètre N’importe lequel~0,5 cm
de diamètre Scie à métauxN’importequel
Incubateur Heratherm Thermo Scientific ; Waltham, MAOMS100
Adaptateurs de tuyau en nylon (2) &ndash ; ¼ ; MNPT x 3/8United States Plastic Corp., OH61135
Pistolet à colle chaude et colleN’importequelle
source de lumièreN’importequel
aimantN’importequel
OMEGA TC-08 Enregistreur et TC-08 Logiciel de lectureOMEGA ; Norwalk, CT
Thermocouple OMEGA (Type T)OMEGA ; Norwalk, CT5LRTC-TT-K-20-36
Entonnoir en plastiqueN’importequel 2de diamètre
Tube en plastique - 0,6 cm de diamètreUnited States Plastic Corp., OH62852
Anneau d’autoclaveN’importequel N’importe quelde 2 » de diamètre
N’importe quelN’importe quel
Pince à trois brochesd’autoclave N’importe quel
Rstudio
Connecteur de port série (PSIU9)TriKinetics ; Waltham, MAPSIU9Connexion intermédiaire entre le DFM et l’ordinateur, permet plusieurs connexions DFM
Styromousse (2" d’épaisseur)N’importe quelle
bandeN’importe quelle
alimentation ininterrompue (PS9-1)TriKinetics ; Waltham, MAPS9-1Alimentation pour le DFM et le PSIU9
Weld-on #4 Acrylic CementUnited States Plastic Corp., OH45737
 » Support d’autoclave

Références

  1. Dowd, W. W., King, F. A., Denny, M. W. Thermal variation, thermal extremes and the physiological performance of individuals. Journal of Experimental Biology. 218 (12), 1956-1967 (2015).
  2. Angilletta, M. J. Thermal Adaptation: A Theoretical and Empirical Synth....

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Réimpressions et autorisations

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