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Article de méthode

Amélioration de la fécondité et de la fertilité pour Aedes aegypti à l’aide de 24 plaques de culture tissulaire de puits (plaques EAgaL)

5.1K vues

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DOI :

10.3791/61232

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4 mai 2021

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Dans cet article

Résumé

Décrit est une méthode permettant de gagner du temps et de l’espace pour compter les œufs et déterminer les taux d’éclosion des moustiques individuels à l’aide de 24 plaques de culture tissulaire dans les puits, ce qui peut augmenter considérablement l’échelle et la vitesse des essais de fécondité et de fertilité.

Résumé

Les moustiques représentent un problème de santé publique important en tant que vecteurs de divers agents pathogènes. Pour les études qui nécessitent une évaluation des paramètres de condition physique des moustiques, en particulier la production d’œufs et les taux d’éclosion au niveau individuel, les méthodes conventionnelles ont imposé un fardeau substantiel aux chercheurs en raison de l’intensité de travail élevée et des exigences en matière d’espace de laboratoire. Décrit est une méthode simple utilisant 24 puits plaque de culture de tissus avec de l’agarose dans chaque puits et l’imagerie numérique de chaque puits pour déterminer le nombre d’œufs et les taux d’éclosion à un niveau individuel avec des besoins en temps et en espace considérablement réduits.

Introduction

La lutte contre les moustiques pour protéger les humains contre les agents pathogènes à transmission vectorielle est un objectif de santé publique important, principalement en raison du manque de vaccins efficaces pour la plupart des agents pathogènes transportés par les moustiques. De nombreuses études visent à réduire la condition physique des moustiques en conjonction avec une stratégie de réduction de la population applicable sur le terrain1,2,3. Cela comprend des études approfondies pour créer des moustiques transgéniques et / ou des lignes knockout CRISPR / Cas9. De tel....

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Protocole

1. Préparation des assiettes

  1. Forez des trous dans 24 couvercles de plaques de culture tissulaire de puits (4−6 trous par puits) à l’aide d’une foreuse domestique avec un trépan d’environ 1,6 mm (1/16 in)(figure 2).
    REMARQUE: Ces trous empêchent la condensation de l’eau de l’agarose de s’accumuler sur le couvercle, où les moustiques peuvent pondre des œufs. La taille standard de la femelle Ae. aegypti (souche « Liverpool ») est d’environ 3,11 mm d’envergure. Il est recommandé de réduire la taille des trous lors de l’utilisation de moustiques plus petits pour éviter de s’échapper de la plaque.
  2. La veille de l’....

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Résultats

Les moustiques ont reçu une injection d’ARNdb ciblant un transporteur de fer candidat (FeT) ou un gène témoin (EGFP), nourris dans le sang, et mesurés pour la fécondité et la fertilité à l’aide de la méthode de la plaque EAgaL, suivant la procédure décrite ci-dessus.

Les moustiques chez lesquels l’expression de feT a été réduite au silence après l’injection d’ARNdb ont montré une réduction significative du nombre d’œufs et du taux d’éclosion(figure 11A−C)........

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Discussion

La plaque EAgaL réduit considérablement le travail, le temps et l’espace pour effectuer des tests individuels de fécondité et de fertilité dans Aedes aegypti par rapport à la méthode FT. La comparaison préliminaire entre la méthode FT et la plaque EAgaL a donné lieu à des temps plus courts pour toutes les étapes (la technique d’imagerie a été appliquée à la méthode FT)(tableau 1). À titre de référence, une estimation des coûts de démarrage et par essai (une plaque EAgaL de 24 puits cont.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts pour cette étude.

Remerciements

Nous remercions le programme de subventions pour la recherche sur les maladies à vecteurs d’insectes de Texas A&M Agrilife pour son financement. Nous remercions également les membres du laboratoire Adelman pour leur aide dans le développement de cette méthode et leurs suggestions lors de la rédaction du manuscrit, ainsi que les membres du laboratoire Kevin Myles. Nous remercions également les réviseurs et les éditeurs pour leur aide afin d’améliorer ce manuscrit.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Mèche de 1,6 mm &Phi ; Lesclous chauffés alternativement peuvent être utilisés
1000 &mu ; Pointes de pipette L (longues)Olympus plastics24-165RL
Plaque de culture tissulaire 24 puitsThermo Scientific930186transparente, à fond plat avec couvercle annelé
AgaroseVWR0710-500G
Appareil photo numérique compactOlympusTG-5/TG-6
Ordinateur (Windows, Mac ou Linux)
Eau déminéralisée
Fidji (imageJ) téléchargement du logicielà partir de : https://fiji.sc/
ForcepsDumontpince pointue peut briser le corps du moustique
Boîtes de Pétri en verreVWR
Eau de Javel
Perceuse
illuminateur pour stéréomicroscope (col de cygne)
Pipette P-1000Pinceaux Gilson
Élastiques
Cartepour enregistrer des images d’appareil photo numérique (DSHC, SDXC devrait être mieux)
Tableur (Microsoft Excel)MicrosoftN’importe quel tableur fonctionne
Nourriture pour poissons TetraMinTetramoulue avec moulin à café, mixeur ou mortier & pilon
Pipettes de transfertVWR16011-188
domestiqueélectrique domestique SD

Références

  1. Bond, J. G., et al. Optimization of irradiation dose to Aedes aegypti and Ae. albopictus in a sterile insect technique program. PLoS One. 14 (2), 0212520(2019).
  2. Fernandes, K. M., et al. Aedes aegypti....

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Réimpressions et autorisations

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