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Article de méthode

Mesure continue du bruit biologique chez Escherichia Coli à l’aide d’une microscopie en accéléré

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DOI :

10.3791/61290

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27 avril 2021

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ce travail présente une méthode de microscopie qui permet l’imagerie en direct d’une seule cellule d’Escherichia coli pour l’analyse et la quantification du comportement stochastique des circuits génétiques synthétiques.

Résumé

Le protocole développé ici offre un outil pour permettre le suivi informatique de la division Escherichia coli et des niveaux fluorescents sur plusieurs heures. Le processus commence par le dépistage des colonies qui survivent sur un minimum de médias, en supposant que seul Escherichia coli hébergeant le plasmide correct sera en mesure de prospérer dans les conditions spécifiques. Étant donné que le processus de construction de grands circuits génétiques, nécessitant l’assemblage de nombreuses parties d’ADN, est difficile, les composants du circuit sont souvent répartis entre plusieurs plasmides à différents numéros de copie nécessitant l’utilisation de plusieurs antibiotiques. Les mutations dans le plasmide peuvent détruire la transcription des gènes de résistance aux antibiotiques et interjecter avec la gestion des ressources dans la cellule menant à la nécrose. La colonie sélectionnée est fixée sur une boîte de Pétri à fond de verre et quelques plans de mise au point sont sélectionnés pour le suivi de la microscopie dans les domaines lumineux et fluorescents. Le protocole maintient la mise au point de l’image pendant plus de 12 heures dans des conditions initiales qui ne peuvent pas être réglementées, créant quelques difficultés. Par exemple, les cellules mortes commencent à s’accumuler dans le champ de concentration des lentilles après quelques heures d’imagerie, ce qui provoque l’accumulation de toxines et le signal de flou et de décomposition. L’épuisement des nutriments introduit de nouveaux processus métaboliques et entrave la réponse souhaitée du circuit. La température de l’expérience abaisse l’effectivité des inducteurs et des antibiotiques, ce qui peut endommager davantage la fiabilité du signal. Le gel média minimal rétrécit et sèche, et par conséquent la mise au point optique change au fil du temps. Nous avons développé cette méthode pour surmonter ces défis dans Escherichia coli, similaire aux travaux précédents développant des méthodes analogues pour d’autres micro-organismes. En outre, cette méthode offre un algorithme pour quantifier le bruit stochastique total dans les cellules inchangées et altérées, constatant que les résultats sont compatibles avec les prédictions de l’analyseur de flux comme le montre un coefficient de variation similaire (CV).

Introduction

La biologie synthétique est un domaine multidisciplinaire qui a émergé au cours de la dernière décennie et vise à traduire les principes de conception d’ingénierie en conception biologique rationnelle1,2,3, dans un effort pour atteindre l’intégration multi-signaux et le traitement dans les cellules vivantes pour comprendre la science fondamentale4,5, diagnostic, thérapeutique et biotechnologique applications6,7,8,<....

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Protocole

1. Préparation des médias et de la culture

  1. Préparer une solution de stock de 1 000 x carbenicilline (50 mg/mL) ou antibiotique pertinent.
    1. . Peser 0,5 g de carbenicilline. Ajouter 10 mL de H2O stérile. Dissoudre complètement.
    2. Stériliser le stock de carbenicilline à l’intermédiaire d’un filtre à seringues de 0,22 μm. Aliquot la solution antibiotique et stocker à -20 °C.
  2. Pour préparer des assiettes de bouillon de lysogène (LB), mélanger 5 g de tryptone, 5 g de NaCl, 2,5 g d’extrait de levure et 7,5 g d’agar Bacto avec 0,5 L de H2O. Autoclave stérile la solution à 121 °C pendant 20 ....

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Résultats

Le logiciel analyse les images de domaine de champ lumineux qui sont hors-blanc et noir. L’Escherichia coli ressemblera à des formes oblongues noires sur un fond blanc éteint et une plage dynamique de luminance devrait montrer une pointe en son centre (Figure 1). Dans les images fluorescentes, les cellules peuvent avoir un petit halo, mais les cellules individuelles aux formes oblongues peuvent encore être résolues. Un événement de mitose doit d’abord être détecté après 30 minutes. .......

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Discussion

Dans le cadre de ces travaux, nous avons mis au point un protocole qui permet de retracer par ordinateur les cellules vivantes d’Escherichia coli, en suivant les niveaux de division et de fluo sur une période de plusieurs heures. Ce protocole nous permet de quantifier la dynamique stochastique des circuits génétiques d’Escherichia coli en mesurant le CV et le SNR en temps réel. Dans ce protocole, nous avons comparé les comportements stochastiques de deux circuits différents comme le montre la fi.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions M. Gil Gelbert (Faculté de génie électrique, Technion) d’avoir aidé avec le code MATLAB. Nous remercions le Dr Ximing Li (Faculté de génie biomédical, Technion) d’avoir aidé à prouver cet article. Cette recherche a été partiellement soutenue par la Fondation de la famille Neubauer et le ministère israélien des Sciences, subvention 2027345.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Plat en verre de 35 mmmatP35G-0.170-14-Cd’épaisseur correspondant à la lentille du microscope.
Agarose  ;Lonza5004LB préparation
AHL  ;Inducteur Sigma-AldrichK3007
Bacto tryptone  ;BD - Becton, Dickinson et Cie  ;211705préparation LB
CarbInvitrogen10177-012antibiotique
CarbFormediumCAR0025antibiotique
Acides aminés  ;BD - Becton, Dickinson et Cie  ;223050solution média minimale
éclipse Tinikonmicroscope inversé
GlucoseSigma-AldrichG5767solution média minimale
GlyserolBio-Lab000712050100substrat média minimal
Immersol 518Fzeiss4449600000000huile d’immersion
M9 solution saline  ;Sigma-AldrichM6030minimal media solution
NaClBio-Lab214010LB préparation Agar
nobleSigma-AldrichA5431support minimal substrate
parafilmtape BemisPM-996référencé en tant que ruban dans le texte
Seaplaque gtg AgaroseLonza50111support minimal
substrate thaymine B1Sigma-AldrichT0376  ;solution multimédia minimale
Extrait de levureBD - Becton, Dickinson and Company  ;212750Préparation LB

Références

  1. Daniel, R., Rubens, J. R., Sarpeshkar, R., Lu, T. K. Synthetic analog computation in living cells. Nature. 497, 619-623 (2013).
  2. Yang, X. S. Y., L, A. B. Imaging Bacterial Molecules, Structures and Cells. Harwood, C., Jensen, G. , (2016).
  3. Joyce, G., Robertson, B. D., Williams, K. J.

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Réimpressions et autorisations

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