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Article de méthode

Préparation in vitro en tranches compensées pour imiter la connectivité du circuit neuronal In Vivo

5.3K vues

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DOI :

10.3791/61664

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18 août 2020

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Dans cet article

Résumé

L’intégration de diverses entrées synaptiques aux neurones est mieux mesurée dans une préparation qui préserve tous les noyaux pré-synaptiques pour le timing naturel et la plasticité du circuit, mais les tranches de cerveau coupent généralement de nombreuses connexions. Nous avons développé une tranche de cerveau modifiée pour imiter l’activité du circuit in vivo tout en maintenant la capacité d’expérimentation in vitro.

Résumé

Les techniques d’électrophysiologie des tranches in vitro mesurent l’activité unicellique avec une résolution électrique et temporelle précise. Les tranches de cerveau doivent être relativement minces pour visualiser et accéder correctement aux neurones pour le patch-clamping ou l’imagerie, et l’examen in vitro des circuits cérébraux est limité à seulement ce qui est physiquement présent dans la tranche aiguë. Pour maintenir les avantages de l’expérimentation des tranches in vitro tout en préservant une plus grande partie des noyaux présynaptiques, nous avons développé une nouvelle préparation de tranches. Cette « tranche compensée » a été conçue pour les enregistrements d’électrophysiologie patch-clamp pour caractériser les diverses entrées monales et sonores aux neurones olivocochléaires médiaux (MOC) dans le tronc cérébral. Ces neurones reçoivent leurs entrées excitatrices et inhibitrices primaires afferent des neurones activés par des stimuli dans l’oreille contralatérale et le noyau cochléaire correspondant (CN). Une tranche de cerveau asymétrique a été conçue qui est la plus épaisse dans le domaine rostro-caudal au bord latéral d’un hémisphère, puis s’amince vers le bord latéral de l’hémisphère opposé. Cette tranche contient, sur le côté épais, la racine du nerf auditif transmettant des informations sur les stimuli auditifs au cerveau, les circuits intrinsèques du CN, et à la fois les voies afferentes excitatrices et trisynaptiques disynaptiques qui convergent vers les neurones moc contralatéraux. L’enregistrement est effectué à partir de neurones MOC sur le côté mince de la tranche, où ils sont visualisés à l’aide de l’optique DIC pour les expériences typiques patch-clamp. La stimulation directe du nerf auditif est effectuée à mesure qu’il pénètre dans le tronc cérébral auditif, ce qui permet à l’activité intrinsèque du circuit CN et à la plasticité synaptique de se produire aux synapses en amont des neurones MOC. Avec cette technique, on peut imiter l’activation du circuit in vivo aussi étroitement que possible dans la tranche. Cette préparation en tranches compensées s’applique à d’autres circuits cérébraux où les analyses de circuits bénéficieraient de la préservation de la connectivité en amont et des intrants à longue portée, en combinaison avec les avantages techniques de la physiologie des tranches in vitro.

Introduction

L’observation de l’activité des circuits neuronaux est idéalement effectuée avec les entrées sensorielles indigènes et la rétroaction, et la connectivité intacte entre les régions du cerveau, in vivo. Cependant, l’exécution d’expériences qui donnent une résolution à cellule unique de la fonction du circuit neuronal est encore limitée par des défis techniques dans le cerveau intact. Bien que des méthodes d’électrophysiologie extracellulaire in vivo ou d’imagerie multiphoton puissent être utilisées pour étudier l’activité dans les systèmes nerveux intacts, il reste difficile d’interpréter comment différents intrants intègrent ou mesurent les intrants synaptiques sous-ma....

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Protocole

Toutes les procédures expérimentales ont été approuvées par le National Institute of Neurological Disorders and Stroke/National Institute on Deafness and Other Communication Disorders Animal Care and Use Committee.

1. Préparations expérimentales

REMARQUE : Les détails concernant la préparation des tranches, y compris la solution de tranchage, la température de tranchage, la température d’incubation des tranches et l’appareil (etc.), sont spécifiques à la préparation du tronc cérébral effectuée dans le but d’effectuer cette expérience. Les détails de l’incubation des tranches peuvent être modifiés par expérience de ....

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Résultats

Examen histologique de la tranche de coin
Pour notre étude de la fonction auditive des neurones du tronc cérébral, la préparation de la tranche compensée a été conçue pour contenir la racine nerveuse auditive et le CN contralatéral aux neurones MOC ciblés pour les enregistrements (tranche d’exemple indiquée à la figure 1B). L’examen histologique initial de la préparation est important pour confirmer que la tranche contient les noyaux nécessaires à l’activation du circuit .......

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Discussion

La procédure de tranchage décrite ici appelée tranche compensée est puissante pour maintenir des circuits neuronaux présynaptiques intacts, mais avec l’accessibilité de l’expérimentation de tranche de cerveau pour l’analyse de la fonction neuronale. Un grand soin doit être pris en plusieurs étapes initiales afin de maximiser l’utilité de la préparation à l’analyse du circuit. Les dimensions du coin doivent être confirmées à l’aide de l’examen histologique, qui fait partie intégrante de la confirmation que les noyaux prés.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Cette recherche a été appuyée par le Programme de recherche intra-muros des NIH, NIDCD, Z01 DC000091 (CJCW).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Experimental Preparations
Agar, poudreFisher ScientificBP1423500bloc de gélose à 4 % utilisé pour stabiliser le tissu cérébral pendant la section du vibratome
AlexaFluor Hydrazide 488InvitrogenA10436Fluorophore utilisé dans une solution interne pour confirmer le succès du patch neuronal MOC
AnalyticalBalance Geneses Scientific (Intramalls)AV114Pesage des produits chimiques
Lame de rasoir à double tranchantTed Pella121-6Lame de coupe Vibratome
Acide kynurénique (5g)Sigma AldrichK3375-5GSlicing ACSF additif utilisé pour réduire l’activité des neurones pendant la dissection et le tranchage afin d’améliorer la santé des tissus pour le serrage par patch
pH mètreFisher Scientific (Intramalls)13-620-451Solution Testeur de pH
Boîtes de Pétri en plastique 100mm dia X 20mmFisher Scientific (Intramalls)12-556-002 4 %Agar
Prep Agitation Plaque chauffanteFisher Scientific (Intramalls)11-500-150Chauffage pour 4 % Préparation
Dissection et tranchage
BiocytinSigma AldrichB4261-250MGProduit chimique utilisé pour le traçage axonal (conjugué à la streptavidine 488)
Microscope de dissectionAmscopeSM-1BNPour une dissection de précision lors de l’ablation du cerveau
Dumont #5 ForcepsFine Science Tools11252-20Outil de dissection de pince fine
Pince à épiler économique #3WPI501976Outil de dissection de pince Boîte
de Petri en verre 150mm dia x 15mm HFisher Scientific (Intramalls)08-747EAntenne parabolique
Papier d’interface (203 X 254mm PCTE Membrane 10um)Thomas Scientific1220823Application d’incubation/biocytine
Leica VT1200S VibratomeLeica1491200S001Vibratome pour sectionnement de tranches
Mayo ciseauxRobozRS-6872Outil
de dissectionLames en acier au carbone à simple tranchantFisher Scientific (Intramalls)12-640Lame de rasoir pour la dissection
Disque d’échantillonnage, orientationLeica14048142068Platine de vibratome spécialisée pour l’inclinaison reproductible
SpoonulaFisherSci14-375-10Outil de dissection
Super GlueNewegg15187Utilisé pour coller du tissu sur l’étage
du vibratomeCiseaux à ressort VannasOutils scientifiques fins91500-09Outil
Electrophysiology
A1R Microscope confocal droit NikonInstrumentsMicroscope d’électrophysiologie et d’imagerie, peut être n’importe quel microscope compatible avec l’électrophysiologie
Électrode Verre borosilicaté avec filament OD 1,5 mm, ID 1,1 mm, 10 cm de longInstrument de mesureBF150-110-10Pipette de serrage patch en verre
Remplisseur d’électrode MicroFilWPICMF20GRemplisseur de pipette à électrode patch
Réchauffeur de solution en ligneWarner Instruments (GSAdvantage)SH-27BSystème de perfusion de tranches Systèmes
multi-manipulateursInstruments de mesure de mesureMPC-200 avec MP285Micromanipulateurs pour le placement des électrodes de patch et de stimulation
P-1000 Extracteur de pipette horizontal pour micropipettes en verreInstruments SutterFG-P1000Extracteur de pipette
Patch clamp Amplificateur et logicielHEKAEPC-10 / Patchmaster NextPeut être n’importe quel amplificateur/logiciel
Chambre d’enregistrementWarner InstrumentsRC26GTranche « bain » pendant l’enregistrement
Chambre d’enregistrement HarpWarner Instruments640253Stabilise la tranche pendant l’enregistrement électrophysiologique
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Cresyl Violet AcétateSigma Aldrich (Intramalls)C5042-10GColoration cellulaire pour l’histologie
Lames de microtome jetablesFisher Scientific22-210-052Lame de microtome coulissante
Seringue-filtre Nalgene 4mm Acétate de cellulose 0,2umFisher Scientific (Intramalls)09-740-34AFiltre seringue pour le remplissage de pipettes d’enregistrement avec solution interne
Fluoromount-G Medium de montage de lamesFisher ScientificOB100-01Immunohistochimie Montage de fluorescence
medium Boîte de coloration de lames en verre avec supportFisher Scientific ( Intramalls)08-812Chambre de coloration au violet Cresyl
Microm HM450 Microtome coulissantThermoFisher910020Microtome de congélation pour l’histologie
Couvercle du microscope Verres : Rectangles 50mm X 24mmFisher Scientific (Intramalls)12-543DVerre de couverture de diapositives d’histochimie
Médium de montagePermount Fisher ScientificSP15-100Montage de section violette Cresyl medium
Superfrost SlidesFisher Scientific22-034980Lames d’histologie
de gélose de dissection sur mesure agitation

Références

  1. Campbell, J. P., Henson, M. M. Olivocochlear neurons in the brainstem of the mouse. Hearing Research. 35 (2-3), 271-274 (1988).
  2. Grothe, B., Sanes, D. H. Synaptic inhibition influences the temporal coding properties of medial superior ....

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Réimpressions et autorisations

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