Ce protocole expérimental décrit l’isolement des CSCA à partir d’échantillons de cellules et de tissus cancéreux du sein ainsi que les tests in vitro et in vivo qui peuvent être utilisés pour évaluer le phénotype et la fonction des CSBC.
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Article de méthode
Ce protocole expérimental décrit l’isolement des CSCA à partir d’échantillons de cellules et de tissus cancéreux du sein ainsi que les tests in vitro et in vivo qui peuvent être utilisés pour évaluer le phénotype et la fonction des CSBC.
Les cellules souches du cancer du sein (CSBC) sont des cellules cancéreuses dont les caractéristiques héréditaires ou acquises ressemblent à des cellules souches. Malgré leur faible fréquence, elles contribuent grandement à l’initiation du cancer du sein, aux rechutes, aux métastases et à la résistance au traitement. Il est impératif de comprendre la biologie des cellules souches du cancer du sein afin d’identifier de nouvelles cibles thérapeutiques pour traiter le cancer du sein. Les cellules souches du cancer du sein sont isolées et caractérisées en fonction de l’expression de marqueurs de surface cellulaire uniques tels que CD44, CD24 et l’activité enzymatique de l’aldéhyde déshydrogénase (ALDH). Ces cellules ALDHà CD44+CD24- élevé constituent la population BCSC et peuvent être isolées par tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) pour des études fonctionnelles en aval. Selon la question scientifique, différentes méthodes in vitro et in vivo peuvent être utilisées pour évaluer les caractéristiques fonctionnelles des BCSC. Ici, nous fournissons un protocole expérimental détaillé pour l’isolement des BCSC humains à partir de populations hétérogènes de cellules cancéreuses du sein ainsi que de tissus tumoraux primaires obtenus à partir de patientes atteintes d’un cancer du sein. En outre, nous mettons en évidence des tests fonctionnels in vitro et in vivo en aval, y compris des tests de formation de colonies, des tests de mammosphère, des modèles de culture 3D et des tests de xénogreffe tumorale qui peuvent être utilisés pour évaluer la fonction BCSC.
Comprendre les mécanismes cellulaires et moléculaires des cellules souches du cancer du sein humain (CSCA) est crucial pour relever les défis rencontrés dans le traitement du cancer du sein. L’émergence du concept BCSC remonte au début du 21esiècle, où une petite population de cellules cancéreuses du sein CD44 + CD24 / faible s’est avérée capable de générer des tumeurs hétérogènes chez la souris 1,2. Par la suite, il a été observé que les cellules cancéreuses du sein humain ayant une activité enzymatique élevée de l’aldéhyde déshydrogénase (ALDHélevée) présentaient é....
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Le prélèvement d’échantillons chirurgicaux ou de biopsie provenant directement de patientes consentantes atteintes d’un cancer du sein a été effectué conformément à un protocole d’éthique humaine approuvé et approuvé par le conseil d’éthique de l’établissement. Toutes les souris utilisées pour générer des modèles de xénogreffes dérivées de patients ont été conservées et hébergées dans une animalerie approuvée par l’établissement. Le tissu tumoral provenant de modèles de xénogreffes dérivées de patients utilisant des souris a été généré conformément au protocole d’éthique approuvé approuvé par le comité de soins aux animaux de l’établissement.
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Le protocole décrit permet d’isoler des CSCA humaines à partir d’une population hétérogène de cellules cancéreuses du sein, soit à partir de lignées cellulaires, soit à partir de tissus tumoraux dissociés. Pour une lignée cellulaire ou un échantillon de tissu donné, il est crucial de générer une suspension unicellulaire uniforme pour isoler les CSCA avec une pureté maximale, car la contamination des populations non BCSC pourrait entraîner des réponses cellulaires variables, en particulier si le but de l’étude est d’évalu.......
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Les métastases du cancer du sein et la résistance au traitement sont devenues des causes majeures de mortalité chez les femmes dans le monde entier. L’existence d’une sous-population de cellules souches du cancer du sein (CSBC) contribue à l’augmentation des métastases 26,43,44,45,46 et à la résistance au traitement21,47,48.<.......
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Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Nous remercions les membres de notre laboratoire pour leurs discussions utiles et leur soutien. Notre recherche sur les cellules souches du cancer du sein et le microenvironnement tumoral est financée par des subventions de l’Institut de recherche de la Société canadienne de recherche sur le cancer et du U.S. Army Department of Defense Breast Cancer Program (subvention # BC160912). V.B. est soutenu par une bourse postdoctorale Western (Université Western), et A.L.A. et V.B. sont soutenus par la Société du cancer du sein du Canada. C.L. est soutenu par une bourse d’études supérieures du Canada Vanier du gouvernement du Canada.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 7-Aminoactinomycine D (7AAD) | BD | 51-68981E | suggéré : 0,25 & micro ; g/1x106 cellules |
| Acetone | Fisher | A18-1 | |
| Substrat d’aldéhyde déshydrogénase (ALDH) | Stemcell Technologies | 1700 | Vendu dans le commerce dans le cadre du kit de dosage ALDEFLOUR ; suivez les instructions du fabricant pour la préparation du substrat ALDH |
| Extrait de membrane basale (BME) | Corning | 354234 | Vendu sous le nom commercial Matrigel |
| Plaques de culture cellulaire : 6 puits | Corning 877218 | ||
| Plaques de culture cellulaire : 60 mm | Corning | 353002 | |
| Plaques de culture cellulaire : 96 puits à très faible fixation | Corning | 3474 | |
| Passoire cellulaire : 40 microns | BD | 352340 | |
| Collagen | Stemcell Technologies | 7001 | Préparer une dilution 1:30 de 3 mg/mL de collagène dans du PBS |
| Collagénase | Sigma | 11088807001 | 1x |
| Tubes coniques : 50 mL | Fisher scientific | 05-539-7 | |
| Violet cristallin | Sigma | C6158 | Utiliser une solution de violet cristallin à 0,05 % dans l’eau pour la coloration |
| Dispase | Stemcell Technologies | 7913 | 5U/mL |
| DMEM :F12 | Gibco | 11330-032 | 1x, Avec L-glutamine et 15 mM HEPES |
| DNAse | Sigma | D5052 | 0,1 mg/mL concentration finale |
| FBS | Avantor Seradigm Lifescience | 97068-085 | ; Tubes |
| Flow : 5ml | BD | 352063 | Tubes à fond rond en polypropylène |
| Méthanol | Fisher | 84124 | |
| Anticorps anti-CD24 de souris | BD | 561646 | R-phycoérythrine et colorant cyanine conjugué Clone : |
| Anticorps anti-CD44 de souris | BD | 555479 | R-phycoérythrine conjuguée, Clone : G44-26 |
| N, N-diétéhylaminobenzaldéhyde (DEAB) | Stemcell Technologies | 1700 | Vendu commercialement dans le cadre du kit de dosage ALDEFLOUR ; suivre les instructions du fabricant Préparation du DEAB |
| PBS | Wisent Inc | 311-425-CL | 1x, Sans calcium ni magnésium |
| Trypsine-EDTA | Gibco | 25200-056 | |
| Mammosphere Media Composition | |||
| B27 | Gibco | 17504-44 | 1x |
| bFGF | Sigma | F2006 | 10 ng/mL |
| BSA | Bioshop | ALB003 | 04 % |
| DMEM :F12 | Gibco | 11330-032 | 1x, Avec L-glutamine et 15 mM HEPES |
| EGF | Sigma | E9644 | 20 ng/mL |
| Insuline | Sigma | 16634 | 5 & micro ; g/mL |
| 3D Organoid Support | |||
| A8301 | Tocris | 2939 | 500 nM |
| B27 | Gibco | 17504-44 | 1x |
| DMEM :F12 | Gibco | 11330-032 | 1x, Avec L-glutamine et 15 mM HEPES |
| EGF | Sigma | E9644 | 5 ng/mL |
| FGF10 | Peprotech | 100-26 | 20 ng/mL |
| FGF7 | Peprotech | 100-19 | 5 ng/mL |
| GlutaMax | Invitrogen | 35050-061 | 1x |
| HEPES | Gibco | 15630-080 | 10 mM |
| N-acétylcystéine | Sigma | A9165 | 1,25 mM |
| Neuréguline &bêta ; 1 | Peprotech | 100-03 | 5 nM |
| Nicotinamide | Sigma | N0636 | 5 mM |
| Noggin | Peprotech | 120-10C | 100 ng/mL |
| R-spondin3 | R& D | 3500 | 250 ng/mL |
| SB202190 | Sigma | S7067 | 500 nM |
| Y-27632 | Tocris | 1254 | 5 µ ; L |
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