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ES est l’utilisation des CE dans le but de contrôler les cellules et les tissus biologiques. Son mécanisme est basé sur le stimulus physique transduit à la cellule lorsque les biomolécules à l’intérieur et autour d’elle sont exposées à un gradient de tension généré de l’extérieur. Les particules chargées sont engagées dans un mouvement organisé régi par la loi de Coulomb, générant des forces de traînée sur les particules non chargées. L’écoulement du fluide et la distribution de charge qui en résultent modifient les activités et les fonctions cellulaires telles que l’adhésion, la contraction, la migration, l’orientation, la différenciation et la prolifération1 alors que la cellule tente de s’adapter au changement des conditions microenvironnementales.
Comme les FE sont contrôlables, non invasifs, non pharmacologiques et qu’il a été démontré qu’ils ont un impact efficace sur le comportement cellulaire essentiel, l’ES est un outil précieux pour l’ingénierie tissulaire et la médecine régénérative. Il a été utilisé avec succès pour guider le développement neuronal2,squelettique3,musculaire cardiaque4,os5 et peau6. De plus, comme il améliore l’ionophorèse7,il est utilisé comme traitement alternatif ou complémentaire aux traitements pharmacologiques conventionnels. Son efficacité dans la gestion de la douleur est encore débattue car des essais cliniques de meilleure qualité sont attendus8,9,10. Néanmoins, aucun effet indésirable n’a été rapporté et il a le potentiel d’améliorer le bien-être des patients11,12,13,14,15.
Alors que seuls les essais cliniques peuvent donner un verdict définitif sur l’efficacité d’une procédure, des modèles in vitro et in silico sont nécessaires pour éclairer la conception d’un traitement prévisible contre les SE, car ils offrent un contrôle plus fort sur un plus large éventail de conditions expérimentales. Les utilisations cliniques étudiées de l’ES sont la régénération osseuse16,17, la récupération des muscles dénervés18,19, la régénération axonale après la chirurgie20,21, le soulagement de la douleur22, la cicatrisation desplaies 23,24,25 et l’administration de médicaments iontophorétiques26. Pour que les dispositifs ES soient largement introduits sur toutes les applications cibles possibles, les essais cliniques n’ont pas encore établi de preuves plus solides pour un traitement efficace. Même dans les domaines où les études in vivo sur les animaux et les humains rapportent systématiquement des résultats positifs, le grand nombre de méthodes rapportées, associé à trop peu de conseils sur la façon de choisir entre elles et à un prix d’acquisition élevé, dissuade les cliniciens d’investir dans des dispositifs ES27. Pour pallier cela, le tissu cible ne peut plus être traité comme une boîte noire (limite d’expériences in vivo) mais doit être vu comme une synergie complexe de plusieurs sous-systèmes(Figure 1).
De multiples expériences ES ont été réalisées in vitro au cours des années28,29,30,31,32,33,34. La plupart d’entre eux ne caractérisent l’ES que par la chute de tension entre les électrodes divisée par la distance entre elles - une approximation approximative de l’amplitude du champ électrique. Cependant, le champ électrique lui-même n’influence que les particules chargées, pas directement les cellules. En outre, lorsque plusieurs matériaux sont interposés entre le dispositif et les cellules, l’approximation approximative peut ne pas tenir.
Une meilleure caractérisation du signal d’entrée nécessite une vision claire de la façon dont le stimulus est transduit à la cellule. Les principales méthodes d’octroi d’ES sont le couplage direct, capacitif et inductif35,36. Les dispositifs pour chaque méthode diffèrent par le type d’électrode (tige, planaire ou enroulement) et le placement par rapport au tissu cible (en contact ou isolé)35. Les dispositifs utilisés in vivo pour des traitements plus longs doivent être portables, de sorte que les électrodes et la plupart du temps la source d’énergie sont implantées ou attachées à la peau sous forme de pansements ou de patchs électroactifs. Le gradient de tension généré déplace les particules chargées dans la zone de traitement.
Comme elle a un impact sur le flux de particules chargées qui en résulte à proximité des cellules, la structure de l’échafaudage est de la plus haute importance dans la conception des protocoles ES. Différentes configurations de transport de charge se produisent si le matériau de la plate-forme, la technique de synthèse, la structure ou l’orientation par rapport au gradient de tension changent. In vivo, la disponibilité et le mouvement des particules chargées sont influencés non seulement par les cellules, mais aussi par le réseau de collagène et le liquide interstitiel composant l’ECM de soutien. Les échafaudages d’ingénierie sont de plus en plus utilisés pour mieux recréer les microenvironnements cellulaires naturels in vitro1,35. Parallèlement, l’ECM est un échafaudage naturel complexe.
Les échafaudages artificiels sont à base de métaux, de polymères conducteurs et de carbone, conçus en mettant l’accent sur l’équilibrage de la biocompatibilité avec les performances électrochimiques et la stabilité à long terme36. Un type d’échafaudage polyvalent est le tapis fibreux électrofilé qui offre une topographie contrôlable à l’échelle nanométrique. Cela peut être conçu pour ressembler à l’ECM, fournissant ainsi des signaux mécaniques similaires qui aident à la régénération d’un large éventail de tissus37. Pour avoir un impact significatif sur les SE, les tapis doivent être conducteurs dans une certaine mesure. Cependant, les polymères conducteurs sont difficiles à électrospiner et le mélange avec des supports isolants limite la conductivité des fibres résultantes38. Une solution consiste à polymériser un monomère conducteur à la surface d’une fibre diélectrique, ce qui donne une bonne résistance mécanique et des propriétés électriques du produit final38. Un exemple est le revêtement de fibres électro filées de soie avec le PEDOT-PSS39semi-conducteur . La combinaison de signaux mécaniques et électromagnétiques accélère considérablement la croissance des neurites40,41,42. Les neurites suivent l’alignement des fibres des échafaudages, et s’allongent plus après exposition à un EF parallèle aux fibres qu’à un EF vertical43. De même, l’alignement des échafaudages fibreux sur l’EF favorise également la maturation myogénique33.
L’ECM est principalement composé de protéines fibreusesformant 44,dont le collagène de type I étant le constituant majeur dans tous les tissus animaux à l’exception du cartilage (riche en collagène de type II)44. Le tropocologène (TC), triple conformation hélicoïdale des brins polypeptidiques, est le motif structurel des fibrilles de collagène45. Les images de microscopie électronique à transmission et de microscopie à force atomique de fibrilles de collagène montrent un motif à bandes D-périodique46 expliqué par le modèle Hodge & Petruska47 comme des réseaux réguliers de lacunes et de chevauchements TC45. Les tendons sont composés d’une matrice fiillaire collagène alignée protégée par une matrice protéoglycane hautement hydrophile non collagène48,49. La décorine est un petit protéoglycane riche en leucine (SLRP) capable de lier les régions d’espace des fibrilles de collagène et de se connecter à d’autres SLRP par leurs chaînes latérales de glycosaminoglycanes (GAG)49. Les études réalisées sur les tendons montrent que leurs propriétés électriques changent de manière significative lorsqu’ils sont hydratés50,51,mécanisme de transport de charge passant de protonique à ionique à mesure que le niveau d’hydratation augmente51. Cela suggère que la conduction électrique le long d’une fibrilles de collagène de type I pourrait être rendue possible par une couche décorine-eau, avec des régions d’espace et de chevauchement ayant des conductivités électriques et des constantes diélectriques différentes.
Comme la reconstitution identique de l’ECM par des échafaudages artificiels est improbable, les connaissances produisant une synergie entre in vivo et in vitro rendue possible par des résultats traduisibles semblent être dans une impasse. La modélisation in silico permet non seulement la traduction entre les deux, mais ajoute également des avantages importants dans la caractérisation des processus inconnus impliqués dans ES. La comparaison des observations in vivo avec les observations in vitro peut apporter des informations sur la force de couplage entre le tissu cible et le reste de l’organisme, mais ne révèle pas les limites actuelles des connaissances. L’inconnu peut être exposé en observant la différence entre ce qui devrait se produire en fonction des connaissances actuelles et ce qui se passe. Les expériences in silico basées sur la modélisation mathématique permettent de diviser le processus en sous-processus connus et inconnus. De cette façon, des phénomènes non pris en compte dans le modèle sont révélés lorsque les prédictions in silico sont comparées à des expériences in vitro et in vivo.
La formation et la mise à l’essai d’hypothèses concernant le ou les mécanismes sous-jacents de la façon dont les cellules et les tissus sont affectés par les champs électriques sont entravées par le grand nombre de paramètres52 qui doivent être testés séparément. Pour définir des conditions expérimentales représentatives, le processus ES doit être divisé en sous-processus(Figure 1)et les signaux d’entrée dominants affectant le comportement des cellules doivent être identifiés. Les modèles représentant les effets physiques fondamentaux de l’ES sur les cellules décrivent le domaine qui couple l’EF avec la cellule - celui des particules chargées53. Le comportement des particules à l’extérieur de la cellule dépend du microenvironnement et peut être étudié séparément de la cellule. Le signal d’entrée dominant pour la cellule est le sous-ensemble de sorties de dispositif ES qui provoque le plus grand degré de variabilité dans la réponse de la cellule. Le plus petit sous-ensemble des paramètres expérimentaux complets qui peuvent générer des variations dans tous les signaux d’entrée de cellule dominante peut être utilisé pour diminuer la dimension de l’espace des paramètres et le nombre de cas de test.
L’entrée du modèle cible biologique ES doit être un sous-ensemble des signaux de sortie produits par le dispositif ES qui sont utiles pour décrire les effets physiques des ES sur les cellules. Un bioréacteur simple avec couplage direct a la même structure que les cellules électrochimiques électrolytiques. Les modèles de ceux-ci montrent la distribution de densité de courant primaire (tenant compte de la résistance à la solution), secondaire (tenant également compte des réactions faradiques) ou tertiaire (tenant également compte de la diffusion ionique). Comme la complexité se traduit par un coût de calcul, le modèle le plus simple convient le mieux aux explorations spatiales de paramètres. Les simulations de composites fibreux motivées par les propriétés des matériaux54 se concentrent sur les propriétés des matériaux en vrac résultant d’une micro-architecture complexe, et ne peuvent donc pas décrire les effets locaux de l’exposition à l’EF. Les modèles in silico existants, motivés par l’ES, se concentrent sur l’échantillon biologique, qu’il s’agisse d’une seule cellule immergée dans un milieu homogène55,56,57,ou de tissus complexes à espace extracellulaire homogène58. La densité de charge et de courant(Figure 2)peut servir de signaux d’interface entre les modèles du dispositif ES et l’échantillon biologique, ou entre différents composants du dispositif ES. Le protocole FEM proposé utilise les équations décrites à la figure 2 et a été utilisé pour étudier comment les paramètres dépendants de l’échafaudage peuvent être utilisés pour moduler ces deux signaux, indépendamment de l’EF généré par une configuration de couplage direct. Les résultats soulignent qu’il est nécessaire de tenir compte des propriétés électriques de l’échafaudage ou de l’ECM lors de l’étude de l’impact de l’ES sur les cellules cibles.