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Article de méthode

Une culture d’explantation de queue 3D pour étudier la segmentation des vertébrés chez le poisson zèbre

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DOI :

10.3791/61981

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30 juin 2021

Dans cet article

Résumé

Ici, nous présentons le protocole pour la culture tissulaire 3D de l’axe postérieur du corps du poisson zèbre, permettant l’étude vivante de la segmentation des vertébrés. Ce modèle d’explant fournit le contrôle sur l’élongation d’axe, l’altération des sources morphogènes, et l’imagerie vivante au niveau du tissu de résolution subcellulaire.

Résumé

Les embryons de vertébrés façonnent leur axe principal du corps comme des somites répétitives, les précurseurs des vertèbres, des muscles et de la peau. Les somites segmentent progressivement du mésoderme présomitique (PSM) à mesure que la queue de l’embryon s’allonge postérieurement. Les somites se forment avec une périodicité régulière et une échelle de taille. Le poisson zèbre est un organisme modèle populaire car il est génétiquement tractable et possède des embryons transparents qui permettent l’imagerie vivante. Néanmoins, au cours de la somitogenèse, les embryons de poisson sont enroulés autour d’un gros jaune arrondi. Cette géométrie limite l’imagerie en direct des tissus PSM dans les embryons de poissons zèbres, en particulier à des résolutions plus élevées qui nécessitent une distance de travail objective étroite. Ici, nous présentons une méthode de culture tissulaire 3D aplati pour l’imagerie vivante des explants de queue de poisson zèbre. Les explants de queue imitent des embryons intacts en montrant un ralentissement proportionnel de l’allongement de l’axe et un raccourcissement des longueurs de somite rostrocaudales. Nous sommes en outre en mesure de caler la vitesse d’allongement de l’axe grâce à la culture explant. Ceci, pour la première fois, nous permet de démêler l’entrée chimique des gradients de signalisation de l’entrée mécaniste de l’allongement axial. Dans de futures études, cette méthode peut être combinée avec une configuration microfluidique pour permettre des perturbations pharmaceutiques contrôlées dans le temps ou le dépistage de la segmentation des vertébrés sans aucun problème de pénétration des médicaments.

Introduction

La segmentation métamérique des organismes est largement utilisée dans la nature. Les structures répétées sont essentielles pour la fonctionnalité des organes latéraux tels que les vertèbres, les muscles, les nerfs, les vaisseaux, les membres ou les feuilles dans un plan corporel1. En raison de telles contraintes physiologiques et géométriques de la symétrie axiale, la plupart des embranchements de Bilateria- tels que les annélides, les arthropodes et les chordés- présentent une segmentation de leurs tissus embryonnaires (par exemple, ectoderme, mésoderme) antéro-postérieur.

Les embryons de vertébrés segmentent séque....

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Protocole

Ce protocole implique l’utilisation d’embryons vertébrés vivants plus jeunes que 1 jour après la fécondation. Toutes les expériences sur les animaux ont été effectuées selon les directives éthiques du Cincinnati Children’s Hospital Medical Center; les protocoles relatifs aux animaux ont été examinés et approuvés par le Comité institutionnel de protection et d’utilisation des animaux (Protocole no 2017-0048).

1. Collecte d’embryons

  1. Installer des paires de poissons zèbres dans des réservoirs traversants la nuit précédant le jour de la collecte d’embryons. Pour un contrôle précis de la stadification du développement de l’embryon, uti....

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Résultats

Ce protocole permet la culture géométrique plate d’explants de queue de poisson zèbre vivants. La culture de tissu présente trois avantages principaux au-dessus des embryons entiers : 1) contrôle de la vitesse d’élongation d’axe, 2) contrôle au-dessus de diverses sources de signalisation (morphogène) par dissection simple, et 3) presque-objectif, grossissement élevé et formation image vivante élevée de NA.

Les chambres à lame chimiquement non traitées permettent à l’explant de la queue d’allon.......

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Discussion

Cet article présente un protocole détaillé d’une technique d’explant de culture de tissu que nous avons développée et employée récemment5 pour des embryons de poisson zèbre. Notre technique s’appuie sur les méthodes explant précédentes chez les poussins8 et les poissonszèbres 9,10,11 organismes modèles. Les explants de queue préparés avec ce protocole peuvent survivre aussi longtem.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer et ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions l’AECOM Zebrafish Core Facility et les Cincinnati Children’s Veterinary Services pour l’entretien du poisson, le Cincinnati Children’s Imaging Core pour l’assistance technique, Didar Saparov pour l’aide à la production vidéo et Hannah Seawall pour l’édition du manuscrit. La recherche rapportée dans cette publication a été soutenue par le National Institute of General Medical Sciences des National Institutes of Health sous le numéro de bourse R35GM140805 à E.M.Ö. Le contenu relève de la seule responsabilité des auteurs et ne représente pas nécessairement les opinions officielles des National Institutes of Health.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Seringue Sub-Q de 1 ml avec aiguille PrecisionGlideBecton, Dickinson and Co.REF 309597pour la déchorionation des embryons et les manipulations
200 Proof Ethanol, AnhydrusDecon Labs2701pour l’immunocoloration
antibiotique antimycosique (100× ;)Sigma-AldrichA5955pour les milieux de dissection tissulaire
Chlorure de calcium anhydre, poudreSigma-Aldrich499609pour milieux de dissection tissulaire
DiméthylsulfoxydeSigma-AldrichD5879pour immunocoloration
Scalpel jetable, acier inoxydable #10Integra-MiltexMIL4-411pour la préparation des puits de lames de bande
Ethyl 3-aminobenzoate sel de méthanesulfonate (Tricaïne)Sigma-Aldrich886-86-2(facultatif) pour l’anesthésie des tissus de plus de 20 somites
Sérum fœtal bovin (FBS)ThermoFisherA3160601supplémentaire pour les milieux de culture tissulaire
Chèvre anti-Souris IgG2b, Alexa Fluor 594InvitrogenCat#A-21145 ; RRID :Anticorps secondaire AB_2535781 pour l’immunocoloration
L-15 Medium avec L-Glutamine sans rouge de phénolGIBCO21083-027pour les milieux de dissection tissulaire
MéthanolSigma-Aldrich179337pour l’immunocoloration
Couteau cornéen microchirurgical 2,85 mm Pointe coudée Lame à double biseauSpécialités chirurgicales72-2863pour la dissection tissulaire
Souris monoclonale anti-ppERKSigma-AldrichCat#M8159 ; RRID :AB_477245pour l’immunomarquage ppERK
NucRed Live 647 ReadyProbes RéactifInvitrogenR37106(facultatif) pour la coloration en direct des noyaux cellulaires
Poudre de paraformaldéhyde, 95 %Sigma-Aldrich158127pour la fixation d’échantillons pour l’immunocoloration Solution de
revêtement de collagène en queue de ratSigma-Aldrich122-20(en option) pour l’activation chimique des chambres à lames
Incubateur sur scèneTokai Hittokai-hit-stxg(facultatif) pour le contrôle de la température pendant l’imagerie en direct
Ruban transparent 3/4''ScotchS-9782pour la préparation des puits de diapositives de bande
Triton X-100Sigma-AldrichX100pour l’immunocoloration
Tween 20Sigma-AldrichP1379pour l’immunocoloration
Poisson zèbre : Tg ( actb2:2xMCP-NLS-EGFP)Campbell et  ;al., 2015ZFIN : ZDB-TGCONSTRCT-150624-4poisson transgénique avec EGFP localisé nucléaire
Poisson-zèbre : Tg(Ola.Actb :Hsa.HRAS-EGFP)Cooper et  ;al., 2005ZFIN : ZDB-TGCONSTRCT-070117-75Poisson transgénique avec membrane cellulaire localisée EGFP
Solution

Références

  1. Assheton, R. Growth in length: Embryological Essays. , Cambridge University Press. Cambridge. (1916).
  2. Gomez, C., et al. Control of segment number in vertebrate embryos. Nature. 454 (7202), 335-339 (2008).
  3. Westerfield, M.

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Réimpressions et autorisations

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