Cette étude présente l’application de tranches de tissu pancréatique vivant à l’étude de la physiologie des îlots et des interactions entre les îlots et les cellules immunitaires.
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Article de méthode
Cette étude présente l’application de tranches de tissu pancréatique vivant à l’étude de la physiologie des îlots et des interactions entre les îlots et les cellules immunitaires.
Les tranches de tissu pancréatique vivant permettent d’étudier la physiologie et la fonction des îlots dans le contexte d’un microenvironnement intact des îlots. Les tranches sont préparées à partir de tissu pancréatique humain et souris vivant incorporé dans l’agarose et coupées à l’aide d’un vibratome. Cette méthode permet au tissu de maintenir sa viabilité et sa fonction en plus de préserver les pathologies sous-jacentes telles que le diabète de type 1 (DT1) et le diabète de type 2 (DT2). La méthode des tranches permet de nouvelles directions dans l’étude du pancréas grâce au maintien des structures complexes et des diverses interactions intercellulaires qui composent les tissus endocriniens et exocrines du pancréas. Ce protocole montre comment effectuer la coloration et la microscopie en accéléré de cellules immunitaires endogènes vivantes dans des tranches pancréatiques ainsi que des évaluations de la physiologie des îlots. De plus, cette approche peut être affinée pour discerner les populations de cellules immunitaires spécifiques aux antigènes des cellules des îlots à l’aide de réactifs complexes-multimères d’histocompatibilité majeurs.
L’implication du pancréas est pathognomonique à des maladies telles que la pancréatite, le DT1 et le DT21,2,3. L’étude de la fonction dans les îlots isolés implique généralement l’élimination des îlots de leur environnement4. La méthode de la tranche de tissu pancréatique vivant a été développée pour permettre l’étude du tissu pancréatique tout en maintenant des microenvironnements intacts des îlots et en évitant l’utilisation de procédures stressantes d’isolement des îlots5,6,7.
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NOTES: Tous les protocoles expérimentaux utilisant des souris ont été approuvés par le Comité de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de Floride (201808642). Des coupes pancréatiques humaines de donneurs de tissus des deux sexes ont été obtenues via la banque de tissus Network for Pancreatic Organ Donors with Diabetes (nPOD) de l’Université de Floride. Le pancréas humain a été prélevé sur des donneurs d’organes cadavériques par des organisations d’approvisionnement en organes certifiées en partenariat avec nPOD conformément aux lois et règlements sur le don d’organes et classé comme « sujets non humains » par le Conseil d’examen institutionnel de l’Unive....
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Ce protocole produira des tranches de tissu pancréatique vivant adaptées à la fois aux études de fonctionnalité et aux enregistrements de cellules immunitaires. L’apparence des tranches en champ clair et sous la lumière réfléchie est illustrée à la Figure 1A,B. Comme nous l’avons vu, les îlots peuvent être trouvés en tranches en utilisant la lumière réfléchie en raison de leur granularité accrue qui se produit en raison de leur teneur en insuline (Figure.......
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L’objectif de ce protocole est d’expliquer la génération de tranches de pancréas et les procédures nécessaires pour utiliser les tranches dans des études fonctionnelles et immunologiques. Il y a de nombreux avantages à utiliser des tranches pancréatiques vivantes. Cependant, plusieurs étapes critiques sont essentielles pour que le tissu reste viable et utile au cours des protocoles d’expérience décrits. Il est impératif de travailler rapidement. Le temps entre l’injection du pancréas et la génération des tranches sur le .......
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Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.
Ce travail a été financé par les subventions des NIH R01 DK123292, T32 DK108736, UC4 DK104194, UG3 DK122638 et P01 AI042288. Cette recherche a été réalisée avec le soutien du Réseau des donneurs d’organes pancréatiques atteints de diabète (nPOD; RRID:SCR_014641), un projet collaboratif de recherche sur le diabète de type 1 parrainé par FRDJ (nPOD : 5-SRA-2018-557-Q-R) et the Leona M. & Harry B. Helmsley Charitable Trust (Grant #2018PG-T1D053). Le contenu et les opinions exprimées relèvent de la responsabilité des auteurs et ne reflètent pas nécessairement le point de vue officiel de nPOD. Les organisations d’approvisionnement en organes (OPO) qui s’associent au nPOD p....
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| #3 Style Scalpel Manche | Fisherbrand | 12-000-163 | |
| 1 M HEPES | Fisher Scientific | BP299-100 | HEPES Buffer, 1M Solution |
| 10 cm Plat de culture non traité | Corning | 430591 | |
| 10 mL Seringue Luer-Lok | BD | 301029 | Seringue BD avec embouts Luer-Lok |
| 27 G Aiguille | BD | BD 305109 | BD Utilisation générale et PrecisionGlide Aiguilles hypodermiques |
| 35 mm Couverture Fond de verre Boîte de Pétri | Ibidi | 81156 | µ ;-Dish 35 mm, |
| haute Seringue de 50 mL | BD | 309653 | |
| Couverture à 8 puits | Ibidi | 80826 | µ ;-Slide 8 Well |
| APC anti-souris CD8a anticorps | Biolegend | 100712 | |
| BSA | Fisher Scientific | 199898 | |
| Chlorure de calcium | Sigma | C5670 | CaCl2 |
| Chlorure de calcium dihydraté | Sigma | C7902 | CaCl2 (dihydraté) |
| Compact Digital Rocker | Thermo Fisher Scientific | 88880020 | |
| Microscope confocal à balayage laser | Leica | SP8 | Sténopé&thinsp ;= 1,5-2 unités aérées ; acquis avec des objectifs HC PL APO CS2 dry à ouverture numérique 10x/0,40 et des objectifs HC PL APO CS2 dry à ouverture numérique 20x/0,75 à 512&thinsp ; & fois ; &thinsp ; Résolution de 512 pixels |
| D-(+)-Glucose | Sigma | G7021 | C6H12O6 |
| ddiH2O | |||
| Dithizone | Sigma-Aldrich | D5130-10G | |
| DMSO | Invitrogen | D12345 | Diméthyl sulfoxyde |
| Ethanol | Decon Laboratories | 2805 | |
| Falcon 35 mm Boîte de culture tissulaire | Corning | 353001 | Falcon Easy-Grip Boîtes de culture |
| tissulaire FBS | Gibco Gibco | 10082147 | |
| Feather No. 10 Lame chirurgicale | Microscopie électronique Sciences | 7204410 | |
| fluo-4-AM | Invitrogen | F14201 | perméable aux cellules Ca2+ indicateur |
| Gel Control Super Glue | Loctite | 45198 | |
| Pince Graefe Fine | Science Tools | 11049-10 | |
| Ciseaux fins trempés | de science fine | 14090-09 | |
| HBSS | Gibco | 14025092 | Hanks Solution saline équilibrée |
| HEPES | Sigma | H4034 | C8H18N2O4S |
| Seau à glace | Fisherbrand | 03-395-150 | |
| Isoflurane | Patterson Vétérinaire | NDC 14043-704-05 | |
| Johns Hopkins Bulldog Clamp | Roboz Surgical Store | RS-7440 | ; Droit; pression de 500 à 900 grammes ; 1,5" de longueur |
| Kimwipes | Kimberly-Clark Professional | 34705 | Kimtech Science&trade ; Kimwipes&commerce ; Essuie-glaces Delicate Task, kit de |
| viabilité/cytotoxicité LIVE/DEAD | Invitrogen | L3224 | Ce kit contient le colorant à cellules vivantes calcein-AM. |
| Faible teneur en glucose DMEM | Corning | 10-014-CV | |
| Chlorure de magnésium hexahydraté | Sigma | M9272 | MgCl2 (hexahydraté) |
| Sulfate de magnésium heptahydraté | Sigma | M2773 | MgSO4 (heptahydraté) |
| Plate-forme chauffée magnétique | Warner Instruments | PM-1 Plate-forme | pour chambre d’imagerie pour stimulation dynamique enregistrements |
| Micro-ondes | GE | JES1460DSWW | |
| Nalgene Seringue Filtre | Thermo Fisher Scientific | 726-2520 | |
| No.4 Pinceau | Michaels | 10269140 | |
| Open Diamond Bath Chambre d’imagerie | Warner Instruments | RC-26 | Chambre d’imagerie pour enregistrements de stimulation dynamique |
| Oregon Green 488 BAPTA-1-AM | Invitrogen | O6807 | Indicateur Ca2+ perméable |
| aux cellules Chambre d’imagerie de nuit | Okolab | H201-LG | |
| PBS | Thermo Fisher Scientific | Pour fabriquer de l’agarose pour la génération de tranches | |
| Tétramère d’insuline marqué PE | Emory Tetramer Research Séquence de base | YAIENYLEL | |
| Pénicilline Streptomycine | Gibco | 15140122 | |
| Chlorure | de potassium Sigma | P5405 | KCl |
| Phosphate de potassium monobasique | Sigma | P5655 | KH2PO4 |
| Lames de rasoir | Microscopie électronique Sciences | 71998 | Pour vibratome ; Acier inoxydable à double tranchant, non revêtu |
| RPMI 1640 | Gibco | 11875093 | |
| SeaPlaque agarose à bas point de fusion | Lonza | 50101 | Pour fabriquer de l’agarose pour la génération de tranches |
| Ancre | en tranches Warner Instruments | 64-1421 | |
| Ancre en tranches (imagerie dynamique) | Warner Instruments | 640253 | Ancre en tranches pour chambre |
| d’imagerie dynamiqueBicarbonate | de sodium Sigma | S5761 | NaHCO3 |
| Chlorure de sodium | Sigma | S5886 | NaCl |
| Phosphate de sodium monohydraté | Sigma | S9638 | NaH2PO4 (monohydrate) |
| Inhibiteur de trypsine de soja | Sigma | T6522-1G | Inhibiteur de la trypsine de Glycine max (soja) |
| Stade Adaptateur | Warner Instruments | SA-20MW-AL | Pour l’installation d’une chambre d’imagerie pour les enregistrements de stimulation dynamique sur la platine du microscope |
| Incubateur de scène | Okolab | H201 | |
| Stéréoscope | Leica | IC90 E MSV266 | |
| SYTOX Blue Dead Cell Stain | Invitrogen | S34857 | Colorant d’acide nucléique bleu-fluorescent |
| Pipette de transfert | Falcon | 357575 | Falcon&trade ; Pipettes de transfert jetables en plastique |
| Système de contrôle de soupape | Warner Instruments | VCS-8 | Système pour les enregistrements de stimulation dynamique |
| Vibratome VT1000 S | Leica | VT1000 S | |
| Bain d’eau | Fisher Scientific | FSGPD02 | Fisherbrand Isotemp Bain d’eau de luxe à usage général GPD 02 |
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