Le protocole présente une méthode de culture et de traitement des organoïdes linguaux dérivés de cellules souches gustatives isolées de la papille gustative postérieure de souris adultes.
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Article de méthode
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Le protocole présente une méthode de culture et de traitement des organoïdes linguaux dérivés de cellules souches gustatives isolées de la papille gustative postérieure de souris adultes.
Le sens du goût est médié par les papilles gustatives sur la langue, qui sont composées de cellules réceptrices du goût (CRT) qui se renouvellent rapidement. Ce renouvellement continu est alimenté par des cellules progénigènes locales et rend la fonction gustative sujette à la perturbation par une multitude de traitements médicaux, ce qui à son tour affecte gravement la qualité de vie. Ainsi, l’étude de ce processus dans le contexte du traitement médicamenteux est essentielle pour comprendre si et comment la fonction progéniteur du goût et la production de CCR sont affectées. Compte tenu des préoccupations éthiques et de la disponibilité limitée des tissus du goût humain, les modèles murins, qui ont un système gustatif similaire à celui des humains, sont couramment utilisés. Par rapport aux méthodes in vivo, qui prennent beaucoup de temps, sont coûteuses et ne se prêtent pas à des études à haut débit, les organoïdes linguaux murins peuvent permettre d’exécuter rapidement des expériences avec de nombreux répliquants et moins de souris. Ici, des protocoles précédemment publiés ont été adaptés et une méthode standardisée pour générer des organoïdes du goût à partir de cellules progénitres du goût isolées de la papille circumvallate (CVP) de souris adultes est présentée. Les cellules progénitaires du CVP expriment LGR5 et peuvent être isolées via le tri cellulaire activé par fluorescence EGFP (FACS) de souris porteuses d’un allèleLgr5 EGFP-IRES-CreERT2. Les cellules triées sont plaquées sur un système de culture 3D à base de gel matriciel et cultivées pendant 12 jours. Les organoïdes se développent pendant les 6 premiers jours de la période de culture par prolifération, puis entrent dans une phase de différenciation, au cours de laquelle ils génèrent les trois types de cellules gustatives ainsi que des cellules épithéliales sans goût. Les organoïdes peuvent être prélevés à maturation au jour 12 ou à tout moment pendant le processus de croissance pour l’expression de l’ARN et l’analyse immunohistochimique. La normalisation des méthodes de culture pour la production d’organoïdes linguaux à partir de cellules souches adultes améliorera la reproductibilité et fera progresser les organoïdes linguaux en tant qu’outil puissant de dépistage des médicaments dans la lutte contre les patients souffrant de dysfonctionnement du goût.
Chez les rongeurs, les papilles gustatives linguales sont logées dans des papilles fongiformes réparties antérieurement, des papilles foliées bilatérales postérieures, ainsi que dans une papille circumvallate unique (CVP) à la ligne médiane postodorale de la langue1. Chaque papille gustative est composée de 50 à 100 cellules réceptrices du goût (CRT) à courte durée de vie et à renouvellement rapide, qui comprennent des cellules de soutien de type I gliales, des cellules de type II qui détectent les cellules douces, amères et umami, et des cellules de type III qui détectent les cellulesacides 2,
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Toutes les procédures animales ont été effectuées dans un établissement accrédité par l’AAALAC conformément au Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire, à la Loi sur le bien-être des animaux et à la Politique des services de santé publique, et ont été approuvées par le Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux (IACUC) du campus médical Anschutz de l’Université du Colorado. Les souris Lgr5EGFP-IRES-CreERT2 utilisées dans ce protocole proviennent du Jackson Laboratory, stock n° 008875.
REMARQUE: Les étapes suivantes doivent être effectuées avant de commencer pour assurer une progression en do....
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Les souris ont un CVP, situé postérieurement sur la langue, à partir duquel les cellules souches LGR5+ peuvent être isolées (Figure 1A, boîte noire). L’injection d’une solution enzymatique sous et autour du CVP(Figure 1B)entraîne un léger gonflement de l’épithélium et la digestion du tissu conjonctif. Une digestion suffisante est obtenue après une incubation de 33 minutes, ce qui permet de séparer facilement l’épithélium CVP du tissu .......
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Il est rapporté ici une méthode efficace et facilement reproductible pour la culture, le maintien et le traitement des organoïdes linguaux dérivés de cellules souches de goût de souris adultes. Il a été constaté que l’utilisation de trois CV de souris Lgr5-EGFP âgées de 8 à 20 semaines est suffisante pour obtenir environ 10 000 cellules GFP+ à usage expérimental, ce qui donne 50 puits plaqués à une densité de 200 cellules par puits dans des plaques de 48 puits. L’élimination de l’épithélium de tranché.......
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Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Les auteurs tiennent à remercier le Dr Peter Dempsey et Monica Brown (University of Colorado Anschutz Medical Campus Organoid and Tissue Modeling Shared Resource) pour avoir fourni des médias conditionnés WNR et des discussions précieuses. Nous remercions également le Centre de cancérologie de l’Université du Colorado Cell Technologies et Flow Cytometry Shared Resources, en particulier Dmitry Baturin, pour son expertise en tri cellulaire. Ce travail a été financé par : NIH/NIDCD R01 DC012383, DC012383-S1, DC012383-S2, et NIH/NCI R21 CA236480 à LAB, et R21DC016131 et R21DC016131-02S1 à DG, et F32 DC015958 à EJG.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| s | |||
| Alexa Fluor 546 Sondes moléculaires IgG anti chèvre | A11056, RRID : AB_142628 | 1:2000 | |
| Sondes moléculaires | IgG anti lapin Alexa Fluor 546 | A11010, RRID :AB_2534077 | 1:2000 |
| Alexa Fluor 568 Chèvre anti cochon d’Inde | Invitrogen | A11075, RRID :AB_2534119 | 1:2000 |
| Sondes moléculaires | Alexa Fluor 647 Donkey anti Rabbit IgG | A31573, RRID :AB_2536183 | 1:2000 |
| Alexa Fluor 647 Sondes moléculaires IgG anti rat | S’A21247, RRID :AB_141778 | 1:2000 | |
| DAPI (pour FACS) | Thermo Fischer | 62247 | |
| DAPI (pour immunohistochimie) | Invitrogen | D3571, RRID :AB_2307445 | 1:10000 |
| Chèvre anti-CAR4 | R& D Systems | AF2414, RRID :AB_2070332 | 1:50 |
| Anticorps anti-Acris de cobaye KRT13 | BP5076, RRID :AB_979608 | 1:250 | |
| Lapin anti-GUSTDUCIN | Santa Cruz Biotechnology Inc. | sc-395, RRID :AB_673678 | 1:250 |
| Rabbit anti-NTPDASE2 | CHUQ | mN2-36LI6, RRID :AB_2800455 | 1:300 |
| Rat anti-KRT8 | DSHB | TROMA-IS, RRID : | 1:100 |
| Equipment | |||
| 2D rocker | Benchmark Scientific Inc. | BR2000 | |
| 3D Rotator | Lab-Line Instruments | 4630 | |
| Minuterie/Chronomètre à gros chiffres | Fisher Scientific | S407992 | |
| Centrifugeuse | Eppendorf | 5415D | |
| Réservoir de CO2 | Airgas | CD USP50 | |
| FormaTM Series 3 Incubateur de CO2 Water Jackeed | Thermo Scientific | 4110 | 184 L, acier inoxydable poli |
| Incucyte | Modèle Sartorius | : S3 | Cancer Center Cell Technologies Ressource partagée, Université du Colorado Anschutz Medical Campus |
| MoFlo XDP100 | Cytomation Inc | Modèle : S13211997 | ; Gates Center Flow Cytometry Core, Université du Colorado Anschutz Medical Campus |
| Orbital Shaker | New Brunswick Scientific | Excella E1 | |
| Système de PCR en temps réel | Applied Biosystems | 4376600 | |
| Centrifugeuse réfrigérée | Spectrophotomètre Eppendorf | 5417R | |
| Thermo | Scientific | ND-1000 | |
| ; Stéréomicroscope | Zeiss | Stemi SV6 | |
| Thermocycleur | Bio-Rad | 580BR | |
| Vortex | Fisher Scientific | 12-812 | |
| Bain d’eau | Précision | 51220073 | |
| Média | |||
| A83 01 | Sigma | SML0788-5MG | Concentration de la crosse 10 mM, finale concentration 500 nM |
| Advanced DMEM/F12 | Gibco | 12634-010 | |
| B27 Supplément | Gibco | 17504044 | Concentration de stock 50X, concentration finale 1X |
| Gentamicine | Gibco | 15750-060 | Concentration de stock 1000X, concentration finale 1X |
| Glutamax | Gibco 35050061 | Concentration de stock 100X, concentration finale 1X | |
| HEPES | Gibco | 15630080 | Concentration de stock 100X, concentration finale 1X |
| Murine EGF | Peprotech | 315-09-1MG | Concentration de stock 500 µ ; g/mL, concentration finale 50 ng/mL |
| Tête murine | Peprotech | 250-38 | Concentration de matière 50 & micro ; g/mL, concentration finale 25 ng/mL |
| N-acétyl-L-cystéine | Sigma | A9165 | Concentration de base 0,5 M, concentration finale 1 mM |
| Nicotinamide | Sigma | N0636-100g | Concentration de stock 1 M, concentration finale 1 mM |
| Pen/Strep | Gibco | 15140-122 | Concentration de stock 100X, concentration finale 1X |
| Primocin | InvivoGen | ant-pm-1 | Concentration du stock 500X, concentration finale 1X |
| SB202190 | R& D Systems | 1264 | Concentration de matière 10 mM, concentration finale 0,4 & micro ; M |
| WRN Milieux | Reçu du laboratoire Dempsey (ressource partagée AMC Organoid and Tissue Modeling). Dérivé de L-WRN (ATCC® ; CRL-3276&trade ;) cellules | ||
| Y27632 dihydochlorure 10ug | APExBIO | A3008-10 | Concentration de stock 10 mM, concentration finale 10 µ ; M |
| Other | |||
| 1 ml Seringue TB Seringue | BD | 309659 | |
| 2-Mercaptoethanol, min. 98 % | Sigma | M3148-25ML | &beta ;-mercaptoethanol |
| 2.0 mL Microcentrifuge Tubes | USA Scientific | 1420-2700 | |
| Plaques 48 puits | Thermo Scientific | 150687 | |
| 5 3/4 pouces Pasteur Pipets | Fisherbrand | 12-678-8A | |
| Albumine de sérum bovin (BSA) | Sigma Life Science | A9647-100G | |
| Tampon RLT Tampon de lyse | QIAGEN | 1015750 | |
| Cohan-Vannas Spring Scissors | Fine Science Tools | 15000-02 | |
| Collagénase de Clostridium histolyticum, type I | Sigma Life Science | C0130-1G | |
| Cultrex RGF BME, type 2, Pathclear | R& D Systems | 3533-005-02 | Matrigel |
| Dispase II (protéase neutre, grade II) | Sigma-Aldrich (Roche) | 4942078001 | |
| Filtres jetables | Sysmex | 04-0042-2316 | |
| Dulbecco' s Saline tamponnée au phosphate pH 7,4 (1X) (Ca2+ & Mg2+ gratuit) | Gibco | 10010-023 | |
| Dulbecco' s Saline tamponnée au phosphate avec Ca2+ & Mg2+ | Sigma Life Sciences | D8662-500ML | |
| Dumont #5 Forceps | Outils de science fine | 11252-30 | |
| EDTA, 0.5M (pH 8.0) | Promega | V4231 | |
| Élastase Lyophilisée | Worthington Biochimique | LS002292 | |
| Ciseaux de Bonn Extra Fine | Outils de science fine | 14084-08 | |
| Sérum de veau fœtal (FBS) | Gibco | 26140-079 | |
| Fluoromount G | SouthernBiotech | 0100-01 | |
| HEPES Solution | Sigma Life Science | H3537-100ML | |
| HyClone Tryspin 0.25 % + EDTA | Thermo Scientific | 25200-056 | |
| Kit de synthèse d’ADNc | iScript Bio-Rad | 1706691 | |
| Pâte à modeler, Gris | Sargent Art | 22-4084 | |
| Aiguille | BD Seringue | 305106 | |
| Sérum d’âne normal | Jackson ImmunoResearch | 017-000-121 | |
| Sérum de chèvre normal | Jackson ImmunoResearch | 005-000-121 | |
| Paraformaldéhyde | Sigma-Aldrich | 158127 | |
| PowerSYBR Green PCR Master Mix | Applied Biosystems | 4367659 | |
| RNeasy Micro Kit | QIAGEN | 74004 | |
| Safe-Lock Tubes 1,5 mL | Eppendorf | 022363204 | |
| Chlorure de sodium | Fisher Chemical | 7647-14-5 | |
| Phosphate de sodium dibasique anhydre | Fisher Chemical | 7558-79-4 | |
| Phosphate de sodium monobasique anhydre | Fisher Bioréactifs | 7558-80-7 | |
| SuperFrost Plus Lames de microscope | Fisher Scientific | 12-550-15 | |
| Ciseaux chirurgicaux - Sharp | Fine Science Tools | 14002-14 | |
| Triton X-100 | Sigma Life Science | T8787-100ML | |
| VWR micro verre de couverture | VWR | 48366067 | 22x22mm |
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