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Article de méthode

In vitro Analyse de la fonction E3 Ubiquitin Ligase

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DOI :

10.3791/62393

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14 mai 2021

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Dans cet article

Résumé

La présente étude fournit des protocoles détaillés de dosage d’ubiquitylation in vitro pour l’analyse de l’activité catalytique de l’ubiquitine ligase E3. Les protéines recombinantes ont été exprimées à l’aide de systèmes procaryotes tels que la culture d’Escherichia coli.

Résumé

La fixation covalente de l’ubiquitine (Ub) au(x) résidu(s) interne(s) de lysine d’une protéine de substrat, un processus appelé ubiquitylation, représente l’une des modifications post-traductionnelles les plus importantes chez les organismes eucaryotes. L’ubiquitylation est médiée par une cascade séquentielle de trois classes d’enzymes, notamment les enzymes activatrices de l’ubiquitine (enzymes E1), les enzymes conjuguant l’ubiquitine (enzymes E2) et les ligas d’ubiquitine (enzymes E3), et parfois les facteurs d’allongement de la chaîne ubiquitine (enzymes E4). Ici, des protocoles in vitro pour les tests d’ubiquitylation sont fournis, qui permettent l’évaluation de l’activité de l’ubiquitine ligase E3, la coopération entre les paires E2-E3 et la sélection du substrat. Les paires E2-E3 coopérantes peuvent être examinées en surveillant la génération de chaînes de poly-ubiquitine libres et/ou l’auto-ubiquitylation de la ligase E3. L’ubiquitylation du substrat est définie par liaison sélective de la ligase E3 et peut être détectée par transfert occidental de la réaction in vitro. En outre, un test de décharge E2 ~ Ub est décrit, ce qui est un outil utile pour l’évaluation directe de la coopération fonctionnelle E2-E3. Ici, le transfert dépendant de l’E3 de l’ubiquitine est suivi de l’enzyme E2 correspondante sur des acides aminés lysine libres (imitant l’ubiquitylation du substrat) ou des lysines internes de la ligase E3 elle-même (auto-ubiquitylation). En conclusion, trois protocoles in vitro différents sont fournis qui sont rapides et faciles à réaliser pour traiter la fonctionnalité catalytique de la ligase E3.

Introduction

L’ubiquitylation est le processus par lequel Ub est lié de manière covalente à une protéine de substrat1. La modification Ub est catalysée par des réactions enzymatiques successives impliquant l’action de trois classes d’enzymesdifférentes, à savoir les enzymes activatrices Ub (E1s), les enzymes conjuguantes Ub (E2s), les ligas Ub (E3s), et éventuellement les facteurs d’allongement de la chaîne Ub (E4s)2,3,4,5. Après l’activation de l’Ub dépendant de l’adénosine triphosphate (ATP) et du magnésium (Mg2+),....

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Protocole

1. Préparation des tampons et des réactifs

REMARQUE : Les tampons et les réactifs qui ont été préparés manuellement en laboratoire sont énumérés ci-dessous. Tous les autres tampons et réactifs utilisés dans les protocoles ont été achetés auprès de différentes sources et utilisés conformément aux instructions des fabricants.

  1. Préparez 10x solution saline tamponnée au phosphate (10x PBS). À cette fin, mélanger 1,37 M de chlorure de sodium (NaCl), 27 mM de chlorure de potassium (KCl), 80 mM de dihydrate de dihydrate d’hydrogène-phosphate disodique (Na2HPO4,2H2O) et 20 mM de phosphate de potassium-dihyd....

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Résultats

Pour identifier les enzymes E2 qui coopèrent avec l’ubiquitine ligase CHIP, un ensemble de candidats E2 a été testé dans des réactions d’ubiquitylation in vitro individuelles. Les paires E2-E3 coopérantes ont été surveillées par la formation de produits d’ubiquitylation dépendants de l’E3, c’est-à-direl’auto-ubiquitylation de la ligase E3 et la formation de polymères Ub libres. Les produits d’ubiquitylation ont été analysés par western blotting. L’interprétation des données est basée sur la comparaison .......

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Discussion

Cet article décrit les méthodes d’ubiquitylation in vitro de base pour l’analyse de la fonction de la ligase E3. Lors de la réalisation de tests d’ubiquitylation in vitro, il convient de considérer que certaines enzymes E2 peuvent effectuer une auto-ubiquitylation en raison de l’attaque de leur cystéine active sur leurs propres résidus de lysine situés à proximité du site actif30. Pour contourner ce problème, l’utilisation d’un mutant E2 est recommandée dans lequel le résidu de l.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Nous remercions les membres de notre laboratoire pour leur discussion critique et leurs conseils utiles sur le manuscrit. Nous nous excusons de ne pas avoir cité de précieuses contributions en raison de la limitation de taille. Ce travail est soutenu par la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, Fondation allemande pour la recherche) - SFB 1218 - Projektnumber 269925409 et Cluster of Excellence EXC 229 / CECAD à TH. Ce travail a été financé par la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, Fondation allemande pour la recherche) dans le cadre de la stratégie d’excellence de l’Allemagne - EXC 2030 - 390661388 et - SFB 1218 - Projektnumber 269925409 to T.H. Diese Arbeit wurde ....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Amershan Protran 0.1 & micro ; m NCGE Healthcare10600000membrane nitrocellulosique
Anti-CHIPSignalisation cellulaire2080Anticorps monoclonal anti-CHIP de lapin, clone C3B6
Anti-MYCRocheOP10Anticorps anti-MYC de souris monoclonale, clone 9E10
Anti-ubiquitineUpstate05-944Anticorps anti-Ub de souris monoclonale, clone P4D1-A11
ApyraseSigmaA6535-100UN
ATP (10x)Enzo12091903
BSASigmaA6003-10G
EDTARoth8043.2
KClRoth6781.1
K2HPO4RothP749.2
KH2PO4Roth3904.1
LDS tampon d’échantillon (4x)novexB0007
L-LysineSigmaL5501-5G
MESRoth4256.4
MeOHVWR Chemicals2,08,47,307100 %
MilchpulverRothT145.3
NaClRothP029.3
NuPAGEInvitrogenNP0005
NuPAGE Transfer tampon (20x)novexNP0006-1
Règle de page plusThermo Fisher26619Échelle protéique
RotiBlockRothA151.1Réactif de blocage
SDS (20 %)Roth1057.1
S1000 ThermocycleurBio Rad1852196
Trans-Blot TurboBio Rad1704150EDUSystème de transfert
Tris baseRoth4855.3
Tween 20Roth9127.2
UbcH EnzymeSet BostonBiochemK-980BE2 enzymes
UbiquitinBostonBiochemU-100H
Enzyme activatrice de l’ubiquitine E1EnzoBML-UW941U-0050
Tampon d’ubiquitylation (10x)EnzoBML-KW9885-001
Whatman Papier buvardBio Rad1703969Papier filtre extra épais
antioxydant

Références

  1. Kuhlbrodt, K., Mouysset, J., Hoppe, T. Orchestra for assembly and fate of polyubiquitin chains. Essays in Biochemistry. 41, 1-14 (2005).
  2. Pickart, C. M., Eddins, M. J. Ubiquitin: structures, functions, mechanisms. Biochimica et Biophysica Acta. 1695 (1-3),....

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Réimpressions et autorisations

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