Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Plate-forme microfluidique à entraînement pneumatique pour la concentration de microparticules

2.2K vues

⸱

DOI :

10.3791/63301

⸱

1 février 2022

 ,  , 
1Department of Digital Anti-Aging Health Care, Inje University, 2Micro device Lab Co., Ltd, 3Department of Biomedical Engineering, Inje University

Dans cet article

Résumé

Le présent protocole décrit une plate-forme microfluidique pneumatique qui peut être utilisée pour une concentration efficace de microparticules.

Résumé

Le présent article présente une méthode de fabrication et d’exploitation d’une vanne pneumatique pour contrôler la concentration de particules à l’aide d’une plate-forme microfluidique. Cette plate-forme dispose d’un réseau tridimensionnel (3D) avec des canaux de fluide incurvés et trois vannes pneumatiques, qui créent des réseaux, des canaux et des espaces grâce à la réplication duplex avec du polydiméthylsiloxane (PDMS). Le dispositif fonctionne en fonction de la réponse transitoire d’un débit de fluide contrôlé par une vanne pneumatique dans l’ordre suivant: (1) chargement de l’échantillon, (2) blocage de l’échantillon, (3) concentration de l’échantillon et (4) libération de l’échantillon. Les particules sont bloquées par la déformation de la fine couche de diaphragme de la plaque de la vanne de tamis (Vs) et s’accumulent dans le canal microfluidique incurvé. Le fluide de travail est évacué par l’actionnement de deux vannes marche/arrêt. À la suite de l’opération, toutes les particules de divers grossissements ont été interceptées et désengagées avec succès. Lorsque cette technologie est appliquée, la pression de fonctionnement, le temps nécessaire à la concentration et le taux de concentration peuvent varier en fonction des dimensions de l’appareil et du grossissement de la taille des particules.

Introduction

En raison de l’importance de l’analyse biologique, les technologies des systèmes microélectromécaniques microfluidiques et biomédicaux (BioMEMS) 1,2 sont utilisées pour développer et étudier des dispositifs de purification et de collecte de micromatériaux 2,3,4. La capture de particules est classée comme active ou passive. Des pièges actifs ont été utilisés pour les forces diélectriquesexternes 5, magnétophorétiques6,auditives 7,visuelles 8 outhermiques 9 agissant sur des particules indépendantes, permettant un contrôle précis de leurs mouvements. Cependant, une interaction entre la particule et la force externe est nécessaire; ainsi, le débit est faible. Dans les systèmes microfluidiques, le contrôle du débit est très important car les forces externes sont transmises aux particules cibles.

En général, les dispositifs microfluidiques passifs ont des micropiliers dans des microcanaux10,11. Les particules sont filtrées par interaction avec un fluide qui s’écoule, et ces dispositifs sont faciles à concevoir et peu coûteux à fabriquer. Cependant, ils provoquent un colmatage des particules dans les micro-piliers, de sorte que des dispositifs plus complexes ont été développés pour empêcher le colmatage des particules12. Les dispositifs microfluidiques à structures complexes conviennent généralement à la gestion d’un nombre limité de particules 13,14,15,16,17,18.

Cet article décrit une méthode de fabrication et d’exploitation d’une plate-forme microfluidique à entraînement pneumatique pour de grandes concentrations de particules qui surmonte les lacunes18 mentionnées ci-dessus. Cette plate-forme peut bloquer et concentrer les particules par déformation et actionnement de la fine couche de diaphragme de la plaque de vanne de tamis (Vs) qui s’accumule dans les canaux microfluidiques incurvés. Les particules s’accumulent dans des canaux microfluidiques incurvés, et les particules concentrées peuvent se séparer en déchargeant le fluide de travail via l’actionnement de deux joints PDMS sur / hors valves18. Cette méthode permet de traiter un nombre limité de particules ou de concentrer un grand nombre de petites particules. Les conditions de fonctionnement telles que l’ampleur du débit et la pression de l’air comprimé peuvent prévenir les dommages indésirables aux cellules et augmenter l’efficacité du piégeage des cellules.

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

1. Conception de la plateforme microfluidique pour la concentration de particules

  1. Concevoir la plate-forme microfluidique pneumatique composée d’une vanne pneumatique pour l’écoulement du fluide dans le réseau d’écoulement 3D et de trois vannes pneumatiques pour le fonctionnement de la vanne de tamis (Vs), de fluide (Vf) et de particules (Vp) (Figure 1).
    REMARQUE: Vs bloque les particules de concentré du liquide, et Vf et Vp permettent la libération de fluide et de particules après la concentration. Trois orifices pneumatiques fournissent de l’air comprimé à partir de la couche d’alimentation fluide/pneumatique (normalement ouverte) et de la sortie de lumière de la vanne pneumatique pour actionner la vanne. Le réseau de canaux microfluidiques est conçu avec un programme de CAO18,19.
  2. Concevez le canal de manière à être une couche d’alimentation pneumatique et une couche réseau de canaux 3D (Figure 2).
    REMARQUE: Le réseau de fluides est interconnecté avec les canaux incurvés dans la partie antérieure et la chambre rectangulaire dans la région postérieure. Vs bloquent l’entrée et les particules s’accumulent dans la zone de collecte du canal de fluide incurvé. Les fluides sans particules (liquides sans particules) sont sortis par la sortie Qf et les particules concentrées par la sortie Qp (Figure 3).
  3. Selon les conditions ci-dessus, préparez quatre types de moules SU-8.
    REMARQUE: Les quatre moules comprennent un moule qui permet de contrôler la vanne via la pneumatique, deux moules qui créent des canaux de fluide et un moule propre sans forme (Figure 4 et Tableau 1). Les quatre types de moules mentionnés sont fabriqués à l’aide de procédés de photolithographie standard. Cette fabrication de moule consiste en un moule SU-8 sur une plaquette de silicium selon les rapports précédemment publiés18,19. La figure 5 illustre la puce de l’appareil.

2. Fabrication de la plate-forme microfluidique pour la concentration de particules

REMARQUE : La figure 6 illustre la fabrication d’une plateforme microfluidique qui concentre les particules.

  1. Répliquez la couche PDMS à l’aide d’un moule SU-8 à canal de vanne pneumatique préparé (étape 1.3) pour contrôler pneumatiquement la vanne.
    1. Verser 10 mL de PDMS liquide et 1 mL d’agent de durcissement (voir tableau des matériaux) dans un moule de canal de vanne pneumatique préparé (étape 1.3) et activer la chaleur à 90 °C pendant 30 min.
    2. Une fois les structures PDMS durcies, séparez le moule SU-8 de l’étape 2.1.1.
    3. Poinçonnez trois orifices pneumatiques de 1,5 mm (Vs, Vf et Vp) dans le canal de vanne pneumatique fabriqué conformément à l’étape 2.1.2 à l’aide d’une perforation de 1,5 mm (voir tableau des matériaux).
    4. Versez 10 mL de PDMS liquide et 1 mL d’agent de durcissement dans un moule SU-8 propre préparé préparé à l’étape 1.3 et faites tourner le manteau à 1 500 tr/min pendant 15 s à l’aide d’un enrobeur de spin (voir tableau des matériaux). Puis chauffez-vous à 90 °C pendant 30 min.
    5. Une fois les structures PDMS durcies, séparez le moule SU-8 de l’étape 2.1.4.
      REMARQUE: La couche de membrane de la vanne contrôle l’écoulement du fluide en fonction de la pression pneumatique.
    6. Traiter le plasma atmosphérique (voir tableau des matériaux) jusqu’aux structures PDMS préparées aux étapes 2.1.3 et 2.1.5 pendant 20 s.
    7. Alignez les structures PDMS directement traitées au plasma de l’étape 2.1.6 en fonction de la structure des canaux en vérifiant au microscope.
    8. Collez les structures PDMS alignées préparées à l’étape 2.1.7 en les chauffant à 90 °C pendant 30 min.
    9. Perforez un trou de 1,5 mm de diamètre dans l’entrée du canal de fluide (Qfp) et les sorties de canal de fluide (Qf et Qp) dans la partie du canal pneumatique à laquelle la fine couche de diaphragme est collée, à l’aide d’une perforation de 1,5 mm.
  2. Répliquez les deux côtés de la couche PDMS à l’aide de deux moules SU-8 pour créer un canal microfluidique. Utilisez un moule à canal microfluidique incurvé et rectangulaire à l’avant et un moule à canal d’interconnexion microfluidique à l’arrière.
    1. Versez 10 mL de PDMS liquide et 1 mL d’agent de durcissement dans le moule à canal microfluidique incurvé et rectangulaire et la couche de spin à 1 200 tr/min pendant 15 s. Créez ensuite des moules pour la chambre à fluide incurvée et les canaux de fluide par activation thermique à 90 °C pendant 30 min (Figure 6A).
    2. Séparez la couche PDMS sur laquelle se forme le canal microfluidique, puis créez un moule activé par la chaleur recouvrant la paroi d’aération scellée en se liant à la plaquette de verre en traitant le plasma atmosphérique pendant 20 s (Figure 6B).
    3. Versez 3 mL de PDMS liquide dans le canal d’interconnexion du moule SU-8 (Figure 6C).
    4. Disposez la structure fabriquée à l’étape 2.2.2 avec le moule du canal d’interconnexion dans un PDMS liquide sur le moule du canal d’interconnexion microfluidique et séchez la structure superposée à 130 °C pendant 30 min (Figure 6D).
      REMARQUE: Lors du durcissement de la structure arrière, le moule PDMS fabriqué à l’étape 2.2.2 est gonflé par la pression thermique de la couche d’air et la couche PDMS déformée est activée thermiquement (Figure 6E)16.
    5. Après durcissement, retirez le moule SU-8 avant de la couche réseau de canaux microfluidiques et décollez soigneusement le moule PDMS arrière (Figure 6F).
      REMARQUE: La couche de réseau fluidique 3D permet la création d’une chambre fluide incurvée antérieure et de canaux microfluidiques.
    6. Versez 10 mL de PDMS liquide et 1 mL d’agent de durcissement dans un moule SU-8 propre. Puis chauffez-vous à 90 °C pendant 30 min.
    7. Une fois les structures PDMS durcies, séparez le moule SU-8.
      REMARQUE : cette étape crée la couche d’étanchéité supplémentaire.
    8. Traiter le plasma atmosphérique avec des structures PDMS préparées aux étapes 2.2.3 et 2.2.7 pendant 20 s.
    9. Alignez les structures PDMS directement traitées au plasma en fonction de la structure des canaux en vérifiant au microscope.
    10. Collez les structures PDMS alignées en chauffant à 90 °C pendant 30 min.
  3. Aligner les structures PDMS préparées aux étapes 2.1 et 2.2 en fonction de la structure des canaux et les lier en traitant le plasma atmosphérique pendant 20 s.

3. Configuration de l’appareil

REMARQUE : La figure 7 montre la fabrication d’une plate-forme microfluidique qui concentre les particules.

  1. Remplissez manuellement le canal microfluidique avec de l’eau déminéralisée sans bulles à l’aide d’une seringue de 10 mL.
  2. Pour contrôler la P_Qfp et les trois vannes pneumatiques (P_Vs, P_Vf et P_Vp) qui contrôlent le débit de microbilles, insérez un régulateur de pression de précision avec quatre canaux de sortie ou plus (voir tableau des matériaux) pour le fluide de travail (Qfp) dans la plate-forme microfluidique.
    REMARQUE: Un régulateur de pression de précision avec quatre canaux de sortie peut être remplacé par plusieurs contrôleurs de pression de précision. Dans cette expérience, la pression de fonctionnement de P_Qfp était de 10 kPa, P_Vs de 15 kPa et P_Vf et P_Vp étaient tous deux de 18 kPa (figure 8 et tableau 2). La figure 8 montre le débit du fluide de travail au fil du temps lorsque les particules sont concentrées par la plate-forme microfluidique avec P_Vs de 15 kPa, et le tableau 2 montre les résultats d’actionnement en fonction des vannes pneumatiques.
  3. Préparer des particules d’essai de polystyrène de carboxyle de différentes tailles dans de l’eau distillée (voir tableau des matériaux).
    NOTE: Les tailles de particules utilisées dans cette expérience étaient de 24,9, 8,49 et 4,16 μm; des particules de différentes tailles peuvent être utilisées en fonction de la pression de P_Vs.
  4. Pour contrôler le débit du fluide de travail, remplissez une bouteille en verre à moitié pleine d’eau (fluide de travail) et connectez le bouchon de la bouteille en verre au canal de sortie du contrôleur et à la microvalve.
    REMARQUE: Connectez un tube à la microvanne pour recevoir de l’air comprimé du contrôleur et l’autre tube pour injecter de l’eau.
  5. Observez le fonctionnement de la plate-forme à l’aide d’un microscope inversé pour toutes les opérations de la plate-forme et mesurez le débit de fonctionnement au fil du temps à la sortie à l’aide d’un débitmètre de liquide (voir tableau des matériaux).

4. Fonctionnement de l’appareil

  1. Injecter le mélange particule/fluide sous pression à l’entrée (Qfp) avec Vp (Figure 9A).
    REMARQUE: L’écoulement des particules et du fluide propre de la sortie à travers les canaux interconnectés est contrôlé via Vp et Vf, respectivement (tableau 2).
  2. Appliquez une pression sur Vs à 15 kPa et Vp à 18 kPa pour actionner la vanne.
    REMARQUE: À ce stade, le diaphragme est déformé, les particules du fluide Qfp sont bloquées dans l’espace de contact entre le canal de fluide incurvé et le fluide incurvé en porte-à-faux, et le fluide Qfp indésirable est libéré par le Qf ouvert (Figure 9B, C).
  3. Lorsque les particules sont concentrées, appliquez une pression uniquement sur Vf.
    REMARQUE: À ce stade, lorsque la pression est appliquée uniquement à Vf, les particules obstruées sont libérées par Qp (Figure 9D).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

La figure 8 montre le débit des débits de fluide pour une opération de plate-forme à quatre étages, comme mentionné dans le tableau 2. La première étape est l’état de chargement (un état). La plate-forme a été fournie avec du fluide avec toutes les vannes ouvertes, et le fluide de travail (Qf) et les particules (Qp) sont presque identiques car le réseau de canaux microfluidiques présente une symétrie structurelle. Dans la deuxième étape (état b), l’air comprimé a été transpo...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Cette plate-forme offre un moyen simple de purifier et de concentrer des particules de différentes tailles. Les particules sont accumulées et libérées par la commande pneumatique de la vanne, et aucun colmatage n’est observé car il n’y a pas de structure passive. En utilisant ce dispositif, la concentration de particules de trois tailles est présentée. Cependant, la pression de fonctionnement, le temps nécessaire à la concentration et le débit peuvent varier en fonction des dimensions de l’appareil, du grossissement de l...

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la subvention de la National Research Foundation of Korea (NRF) financée par le gouvernement coréen (ministère des Sciences et des TIC). (Non. NRF-2021R1A2C1011380).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Perforation de 1,5 mmAuto-productionAuto-production Cette ponction a été réalisée en demandant à un fabricant de moules basé sur le Miltex® ; Poinçon de biopsie avec piston (15110-15) produit.
Moule de plaquette de silicium de 4 pouces / SU-84science29-03573-014 pouces (100) Moule de plaquette de silicium de type P. / SU-8
Particules de polystyrène réticulé carboxyle (24,9 &mu ; m)SpherotechCPX-200-10Échantillon de billes concentré1
DébitmètreSensirionSLI-1000Mesure de débit
Caméra à grande vitessePhotronFASTCAM MiniObservation de la concentration
Plaque chauffanteComme uneHI-1000pour le durcissement de PDMS LIQUIDE
KOVAX-SYRINGE 10 mL/SeringueKoreavaccine22G-10MLRemplissez le canal microfluidique avec de l’eau déminéralisée sans bulles.
Laboratoire Conona traiteur/Plasma atmosphériqueElectro-TechnicBD-20ACCollage de puces/plasma atmosphérique
Polydiméthylsiloxane liquide, PDMSDow Corning Inc.Sylgard 184Composants de la puce
MicroscopeOlympusIX-81Observation de la concentration
Tubes PEEKSAINT-GOBAIN PPL CORP.AAD04103Injecter ou collecter des particules
de particule de polystyrène (4.16 &mu ; m)SpherotechPP-40-10Échantillon de billes concentrées3
Particules de polystyrène(8.49 &mu ; m)SpherotechPP-100-10Échantillon de billes concentré2
Régulateur de pression/&mu ; fluconAMED ; fluconContrôle de la pression de l’air
Spin coateriNexusACE-200étaler le liquide PDMS sur le moule SU-8
plaque chauffante

Références

  1. Whitesides, G. M. The origins and the future of microfluidics. Nature. 442 (7107), 368-373 (2006).
  2. Desitter, I., et al. A new device for rapid isolation by size and characterization of rare circulating tumor cells. Anticancer Research. 31 (2), 427-441 (2011).
  3. Hayes, D. F., et al. Circulating tumor cells at each follow-up time point during therapy of metastatic breast cancer patients predict progression-free and overall survival. Clinical Cancer Research. 12 (14), 4218-4224 (2016).
  4. Choi, S., Park, J. K. Microfluidic system for dielectrophoretic separation based on a trapezoidal electrode array. Lab on a Chip. 5 (10), 1161-1167 (2005).
  5. Jung, Y., et al. Six-stage cascade paramagnetic mode magnetophoretic separation system for human blood samples. Biomedical Microdevices. 12 (4), 637-645 (2010).
  6. Li, P., et al. Acoustic separation of circulating tumor cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 112 (16), 4970-4975 (2015).
  7. Lin, Y. H., Lee, G. B. Optically induced flow cytometry for continuous microparticle counting and sorting. Biosensors and Bioelectronics. 24 (4), 572-578 (2008).
  8. Gramotnev, D. K., et al. Thermal tweezers for surface manipulation with nanoscale resolution. Applied Physics Letters. 90 (5), 054108(2007).
  9. Huang, L. R., et al. Continuous particle separation through deterministic lateral displacement. Science. 304 (5673), 987-990 (2004).
  10. Yin, D., et al. Multi-stage particle separation based on microstructure filtration and dielectrophoresis. Micromachines. 10 (2), 103(2019).
  11. Yoon, Y., et al. Clogging-free microfluidics for continuous size-based separation of microparticles. Scientific Reports. 6 (1), 1-8 (2016).
  12. Alvankarian, J., Majlis, B. Y. Tunable microfluidic devices for hydrodynamic fractionation of cells and beads: a review. Sensors. 15 (11), 29685-29701 (2015).
  13. Irimia, D., Toner, M. Cell handling using microstructured membranes. Lab on a Chip. 6 (3), 345-352 (2006).
  14. Huang, S. B., et al. A tunable micro filter modulated by pneumatic pressure for cell separation. Sensors and Actuators B: Chemical. 142 (1), 389-399 (2009).
  15. Chang, Y. H., et al. A tunable microfluidic-based filter modulated by pneumatic pressure for separation of blood cells. Microfluidics and Nanofluidics. 12 (1-4), 85-94 (2012).
  16. Oh, C. K., et al. Fabrication of pneumatic valves with spherical dome-shape fluid chambers. Microfluidics and Nanofluidics. 19 (5), 1091-1099 (2015).
  17. Liu, W., et al. Dynamic trapping and high-throughput patterning of cells using pneumatic microstructures in an integrated microfluidic device. Lab on a Chip. 12 (9), 1702-1709 (2012).
  18. Jang, J. H., Jeong, O. C. Fabrication of a pneumatic microparticle concentrator. Micromachines. 11 (1), 40(2020).
  19. McDonald, J. C., et al. Poly(dimethylsiloxane) as a material for fabricating microfluidic device. Accounts of Chemical Research. 35 (7), 491-499 (2002).
  20. Brivio, M., et al. A MALDI-chip integrated system with a monitoring window. Lab on a Chip. 5 (4), 378-381 (2005).
  21. Jeong, O. C., Konishi, S. The self-generated peristaltic motion of cascaded pneumatic actuators for micro pumps. Journal of Micromechanics and Microengineering. 18 (8), 085017(2008).
  22. Taff, B. M., Voldman, J. A scalable addressable positive dielectrophoretic cell-sorting array. Analytical Chemistry. 77 (24), 7976-7983 (2005).
  23. Pamme, N., et al. On-chip free-flow magnetophoresis: Separation and detection of mixtures of magnetic particles in continuous flow. Journal of Magnetism and Magnetic Materials. 307 (2), 237-244 (2006).
  24. Harris, N. R., et al. Performance of a micro-engineered ultrasonic particle manipulator. Sensors and Actuators B: Chemical. 111, 481-486 (2005).
  25. Yoon, Y., et al. Clogging-free microfluidics for continuous size-based separation of microparticles. Scientific Reports. 6 (1), 1-18 (2016).
  26. Beattie, W., et al. Clog-free cell filtration using resettable cell traps. Lab on a Chip. 14 (15), 2657-2665 (2014).
  27. Cheng, Y., et al. A bubble- and clogging-free microfluidic particle separation platform with multi-filtration. Lab on a Chip. 16 (23), 4517-4526 (2016).

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Étiquettes

Valve pneumatiquemicrocanaux en PDMSmicrofluidique pneumatiquecontrôle du flux de microbilleschargement d'échantillonsvalve à membranemesure du débitfabrication de dispositifs microfluidiques
Plate-forme microfluidique à entraînement pneumatique pour la concentration de microparticules
Contactez-nous
Recommander à la bibliothèque

Confidentialité

Conditions d’utilisation

Politiques

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. Tous droits réservés.