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Article de méthode

Cartographie du transfert d’énergie par résonance de Förster : une nouvelle méthodologie pour élucider les caractéristiques structurelles mondiales

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DOI :

10.3791/63433

16 mars 2022

Dans cet article

Résumé

L’étude détaille la méthodologie de la cartographie FRET, y compris la sélection des sites d’étiquetage, le choix des colorants, l’acquisition et l’analyse des données. Cette méthodologie est efficace pour déterminer les sites de liaison, les changements conformationnels et les mouvements dynamiques dans les systèmes protéiques et est plus utile si elle est réalisée en conjonction avec les informations structurelles 3D existantes.

Résumé

Le transfert d’énergie par résonance de Förster (FRET) est une méthode établie basée sur la fluorescence utilisée pour mesurer avec succès les distances dans et entre les biomolécules in vitro ainsi qu’à l’intérieur des cellules. Dans FRET, l’efficacité du transfert d’énergie, mesurée par les changements d’intensité de fluorescence ou de durée de vie, est liée à la distance entre deux molécules ou étiquettes fluorescentes. La détermination de la dynamique et des changements conformationnels à partir des distances ne sont que quelques exemples d’applications de cette méthode aux systèmes biologiques. Dans certaines conditions, cette méthodologie peut ajouter et améliorer les structures cristallines de rayons X existantes en fournissant des informations sur la dynamique, la flexibilité et l’adaptation aux surfaces de liaison. Nous décrivons l’utilisation du FRET et des déterminations de distance associées pour élucider les propriétés structurelles, par l’identification d’un site de liaison ou les orientations des sous-unités dimères. Grâce à un choix judicieux des sites de marquage et souvent à l’utilisation de plusieurs stratégies de marquage, nous avons appliqué avec succès ces méthodes de cartographie pour déterminer les propriétés structurelles globales d’un complexe protéine-ADN et du système de translocation de protéines SecA-SecYEG. Dans le système SecA-SecYEG, nous avons utilisé des méthodes de cartographie FRET pour identifier le site de liaison des préprotéines et déterminer la conformation locale de la région de séquence de signaux liés. Cette étude décrit les étapes à suivre pour effectuer des études de cartographie FRET, y compris l’identification des sites d’étiquetage appropriés, la discussion des étiquettes possibles, y compris les résidus d’acides aminés non natifs, les procédures d’étiquetage, la façon d’effectuer des mesures et l’interprétation des données.

Introduction

Pour les protéines, l’élucidation de la dynamique ainsi que les connaissances structurelles en 3 dimensions (3D) conduisent à une meilleure compréhension des relations structure-fonction des systèmes biomoléculaires. Les méthodes structurelles, telles que la cristallographie aux rayons X et la microscopie électronique cryogénique, capturent une structure statique et nécessitent souvent la détermination de plusieurs structures pour élucider les aspects de la liaison et de la dynamique des biomolécules1. Cet article décrit une méthode basée sur une solution pour mapper des éléments structurels globaux, tels que des sites de liaison ou des interac....

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Protocole

1. Sélection des sites d’étiquetage

  1. Identifier au moins trois sites de marquage potentiels pour trianguler le site de liaison putative sur les structures protéiques existantes. Dans ce cas, SecA, SecYEG et préprotéine attachée à SecA par fusion génétique ont été identifiés2.
    1. Choisissez des sites d’étiquetage à moins de 25-75 Å du site de liaison putative et dans des régions relativement statiques de la protéine, la distance déterminera la paire de colorants FRET spécifique à utiliser36. Localisez les sites de marquage dans des régions protéiques relativement distinctes les unes des autr....

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Résultats

Cette étude s’est concentrée sur la détermination de l’emplacement du site de liaison des préprotéines sur SecA avant l’insertion de la préprotéine dans le canal SecYEG. Pour cartographier le site de liaison, des expériences FRET ont été réalisées entre différentes régions de la préprotéine et trois emplacements distincts sur les protéines SecA et SecYEG (Figure 1A-D). À partir des distances obtenues et des structures tridimensionnelles de SecA, SecYEG et de.......

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Discussion

Grâce à l’utilisation de la méthodologie de cartographie FRET, nous avons identifié le site de liaison de la séquence de signaux sur la protéine SecA. Il est important de noter que la présence d’une structure cristalline 3D du complexe a grandement facilité notre étude. La force de cette méthodologie de cartographie réside dans la capacité d’utiliser une structure existante pour identifier les emplacements à étiqueter. Cette méthodologie ne peut pas être utilisée pour déterminer une structure 3D; toutefois, la déterminat.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la subvention R15GM135904 des National Institutes of Health (attribuée à IM) et la subvention GM110552 des National Institutes of Health (attribuée à DBO).

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Laser LED 490 nmHoriba1684-LED
Alexa Fluor 647 C2 Maléimide//DIBO AlcyneLife TechnologiesA20347
AgarDifcoDF0812
Alexa Fluor 488 C5 Maléimide/DIBO AlcyneLife TechnologiesA10254
Alexa Fluor 488 DIBO AlcyneLife TechnologiesS10904
Alexa Fluor 647 DIBO AlcyneLife TechnologiesS10906
Amicon Ultra­ ; 4 Filtre centrifuge (50kDa MWCO)SigmaUFC805008
Dodecylmaltoside (DDM)AnatraceD310
E. coli phosphatase alcaline peptide signal SP22Biomolécules MidwestN/ASynthétisé article personnalisé
peptide de signal étendu SP41Biomolécules MidwestN/ASynthétisé article personnalisé
FluorEssenceHoribaversion 2.4pour le spectrofluorimètre Fluoromax4
Spectrofluorimètre Fluoromax 4HoribaN/A
GlobalsWELaboratory for Fluorescence Dynamics, Université de Californie, IrvineProgramme d’analyse spectrale pour les désintégrations résolues en temps
H­ ; 4&timide ; Azido­ ; Phe­ ; OHBACHEM4020250.0001
LB (Miller) BouillonFisher ScientificBP9723
Ludox HS-40 silice colloïdale (40 % en poids de suspension dans H2O)Sigma-Aldrich420816est nécessaire pour obtenir une solution de diffusion appropriée
PTI Felix GXHoribaversion 4.1.0.4096programme d’acquisition spectrale pour PTI Time Master Instrument
PTI Time Master InstrumentHoribaNA
Pymol Molecular Graphics ProgramSchrödingerversion 2.4
Bain-marieThermo ScientificNESLAB RTE 10
Programme d’acquisition spectrale La dilution de

Références

  1. Thompson, M. C., Yeates, T. O., Rodriguez, J. A. Advances in methods for atomic resolution macromolecular structure determination. F1000Research. 9, (2020).
  2. Zhang, Q., Li, Y., Olson, R., Mukerji, I., Oliver, D. Cons....

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Réimpressions et autorisations

Mots-clés

Cartographie FRETanalyse structurale des prot inessite de liaison du ligandmarquage des prot inesspectroscopie de fluorescencepaire donneur accepteurmesure du rendement quantiquecomplexe prot ine ADNsyst me SecA SecYEG