Le présent protocole décrit la construction de réseaux de microélectrodes sur mesure pour enregistrer les potentiels de champ local in vivo à partir de plusieurs structures cérébrales simultanément.
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Article de méthode
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Le présent protocole décrit la construction de réseaux de microélectrodes sur mesure pour enregistrer les potentiels de champ local in vivo à partir de plusieurs structures cérébrales simultanément.
Les chercheurs ont souvent besoin d’enregistrer simultanément les potentiels de champ local (LFP) de plusieurs structures cérébrales. L’enregistrement à partir de plusieurs régions cérébrales souhaitées nécessite différentes conceptions de microélectrodes, mais les réseaux de microélectrodes disponibles dans le commerce n’offrent souvent pas une telle flexibilité. Ici, le présent protocole décrit la conception simple de réseaux de microélectrodes sur mesure pour enregistrer des LFP de plusieurs structures cérébrales simultanément à différentes profondeurs. Ce travail décrit la construction des microélectrodes bilatérales corticales, striatales, thalamiques ventrolatérales et nigrales à titre d’exemple. Le principe de conception décrit offre de la flexibilité, et les microélectrodes peuvent être modifiées et personnalisées pour enregistrer les LFP de n’importe quelle structure en calculant les coordonnées stéréotaxiques et en modifiant rapidement la construction en conséquence pour cibler différentes régions du cerveau chez des souris en mouvement libre ou anesthésiées. L’assemblage de microélectrodes nécessite des outils et des fournitures standard. Ces réseaux de microélectrodes personnalisés permettent aux chercheurs de concevoir facilement des réseaux de microélectrodes dans n’importe quelle configuration pour suivre l’activité neuronale, fournissant des enregistrements LFP avec une résolution de l’ordre de la milliseconde.
Les potentiels de champ local (LFP) sont les potentiels électriques enregistrés à partir de l’espace extracellulaire dans le cerveau. Ils sont générés par des déséquilibres de concentration d’ions en dehors des neurones et représentent l’activité d’une petite population localisée de neurones, permettant de surveiller avec précision l’activité d’une région spécifique du cerveau par rapport aux enregistrements EEG à l’échelle macro1. À titre d’estimation, les microélectrodes LFP séparées par 1 mm correspondent à deux populations de neurones complètement différentes. Alors que le signal EEG est filtré par le tissu cérébral, le liquide céphalo-rach....
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Le présent travail est approuvé par le Comité de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de Virginie. Des souris C57Bl/6 des deux sexes (7-12 semaines) ont été utilisées pour les expériences. Les animaux ont été maintenus sur un cycle de lumière de 12 h / 12 h d’obscurité et avaient un accès ad libitum à la nourriture et à l’eau.
1. Construction de microélectrodes
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Dans ce travail, les microélectrodes LFP ont été utilisées pour cartographier la propagation de la crise à travers les noyaux gris centraux11. Des enregistrements LFP simultanés ont été effectués à partir du cortex prémoteur droit (où se trouvait le foyer de la crise) et du VL gauche, du striatum et du SNR (Figure 4). Le début de la crise a été identifié comme une déviation de la trace de tension au moins deux fois supérieure à la ligne de base (F.......
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Historiquement, les réseaux de microélectrodes ont été largement utilisés pour enregistrer l’activité neuronale d’une région spécifique du cerveau d’intérêt 2,3,4,5,6,7,8,9,13. Cependant, notre conception facile à microéle.......
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Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Ce travail a été soutenu par le National Institute of Health (RO1 NS120945, R37NS119012 à JK) et l’UVA Brain Institute.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Amplificateur 16 canaux | A-M Systems | Modèle 3600 | Amplificateur |
| Ciment de cranioplastie | Coltene | Perm Reeline/Repair Résine Type II Classe I Teinte - Ciment transparent | pour tenir les microélectrodes |
| Cryostat Microtome | Precisionary | CF-6100 | Pour trancher le cerveau |
| Fil nickel-chrome enduit de Diamel | Johnson Matthey Inc. | 50 et micro ; m | Fil de microélectrode |
| Dremel | Dremel | Série 300 | Pour percer des trous dans le crâne |
| de souris Epoxy | CEC Corp | C-POXY 5 | Adhésif à prise rapide |
| Hémostat | N’importe Quel | Pour tenir le casque | |
| Pince | N’importe Quel | Pour tenir les microélectrodes | |
| Microscope optique | Nikon | SMZ-10 | Pour voir l’alignement |
| Ohmmètre | N’importe quel | Pour mesurer la résistance | |
| Broches (en-têtes et prises correspondantes) | Connecteurs Mill-Max | , série 833, grille de 2 mm Embases et douilles à montage en surface en aile de mouette | Pour fixer des microélectrodes à |
| Polymicro Kit de tubes | Neuralynx | ID 100 ± ; 04 µ ; m, OD 164 ± ; 06 & micro ; m, épaisseur du revêtement 12 & micro ; m | Tubes en verre |
| Stimulateur d’impulsions | A-M Systems | Modèle 2100 | Pour marquer l’emplacement des microélectrodes à la fin des enregistrements |
| Ciseaux | N’importe quel | Pour couper les microélectrodes | |
| Superglue | Gorilla | Adhésif | |
| Fil épais 0,008 po. &ndash ; 0,011 po. | A-M Systems | 791900 | Fil de tic-tac pour maintenir le réseau de microélectrodes |
| Fil mince de 0,005 po à 0,008 po | A-M Systems | 791400 | Fil fin pour référence et mise à la terre |
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