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Article de méthode

In vitro Reconstitution du cytosquelette d’actine à l’intérieur de vésicules unilamellaires géantes

4.1K vues

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DOI :

10.3791/64026

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25 août 2022

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Dans cet article

Résumé

Dans ce manuscrit, nous démontrons les techniques expérimentales pour encapsuler le cytosquelette F-actine dans des vésicules lipidiques unilamellaires géantes (également appelées liposomes), et la méthode pour former une couche de F-actine biomitant le cortex au niveau du feuillet interne de la membrane liposomique.

Résumé

Le cytosquelette d’actine, la principale machinerie mécanique de la cellule, intervient dans de nombreuses activités cellulaires physiques essentielles, notamment la déformation, la division, la migration et l’adhésion cellulaires. Cependant, l’étude de la dynamique et de la structure du réseau d’actine in vivo est compliquée par la régulation biochimique et génétique au sein des cellules vivantes. Pour construire un modèle minimal dépourvu de régulation biochimique intracellulaire, l’actine est encapsulée dans des vésicules unilamellaires géantes (GUV, également appelées liposomes). Les liposomes biomimétiques sont de la taille d’une cellule et facilitent un aperçu quantitatif des propriétés mécaniques et dynamiques du réseau de cytosquelettes, ouvrant une voie viable pour la biologie synthétique ascendante. Pour générer des liposomes pour l’encapsulation, la méthode d’émulsion inversée (également appelée méthode de transfert d’émulsion) est utilisée, qui est l’une des techniques les plus efficaces pour encapsuler des solutions complexes dans des liposomes afin de préparer divers systèmes imitant les cellules. Avec cette méthode, un mélange de protéines d’intérêt est ajouté au tampon interne, qui est ensuite émulsionné dans une solution d’huile minérale contenant des phospholipides pour former des gouttelettes lipidiques monocouches. Les liposomes souhaités sont générés à partir de gouttelettes lipidiques monocouches traversant une interface lipide/huile-eau. Cette méthode permet l’encapsulation de polymères d’actine concentrés dans les liposomes avec les composants lipidiques souhaités, ouvrant la voie à la reconstitution in vitro d’un réseau de cytosquelettes biomimiques.

Introduction

Le cytosquelette d’actine joue un rôle fondamental dans la construction de l’architecture intracellulaire de la cellule en coordonnant la contractilité au niveau moléculaire et la génération de force 1,2,3. En conséquence, il intervient dans de nombreuses activités cellulaires essentielles, notamment la déformation cellulaire4,5, la division6, la migration 7,8 et l’adhésion9. La reconstitution in vitro d....

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Protocole

1. Préparation des tampons et des solutions protéiques

  1. Préparer le tampon aqueux de non-polymérisation interne (INP) dans un volume total de 5 mL en mélangeant 0,1 mM de CaCl 2, 10 mM HEPES (pH 7,5), 1 mM de DTT, 0,5 mM de Dabco, 320 mM de saccharose et0,2 mM d’ATP.
  2. Préparer le mélange de protéines (PM) en ajoutant des protéines au tampon INP à 4 °C avec les concentrations suivantes : 11,2 μM de G-actine non fluorescente, 2,8 μM d’actine marquée par fluorescence et 0,24 μM d’Arp2/3 (Tableau des matériaux). Pour former une couche d’actine F, ajoutez 100 nM de gelsoline, 4 μM de cofiline et 2,2 μM de VCA-H....

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Résultats

La préparation des liposomes basée sur la technique de l’émulsion inversée est illustrée graphiquement et schématiquement sur la figure 1.

Tout d’abord, des liposomes vides (nus) (~5-50 μm de diamètre) composés de phospholipides (EPC) et de lipides fluorescents (DHPE) ont été préparés. Un colorant fluorescent rouge vif a été encapsulé dans des liposomes nus comme expérience de contrôle. Il a été possible de déterminer si une monocouche lipidique s’est formée avec .......

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Discussion

Plusieurs étapes clés déterminent le succès d’un rendement élevé en liposomes pendant le processus de préparation. Pour dissoudre complètement le film lipidique dans l’huile, l’échantillon doit être soniqué jusqu’à ce que le film lipidique au fond du flacon en verre disparaisse complètement. Après la sonication, le mélange lipide-huile doit être stocké pendant la nuit à température ambiante dans des conditions sombres pour que les molécules lipidiques se dispersent davantage29. Le mélange peut êtr.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts.

Remerciements

Nous reconnaissons le financement ARO MURI W911NF-14-1-0403 à M.P.M., le National Institutes of Health (NIH) R01 1R01GM126256 à M.P.M., les National Institutes of Health (NIH) U54 CA209992, NIH RO1 GM126256, NIH U54 CA209992, University of Michigan / Genentech, SUBK00016255 et Human Frontiers Science Program (HFSP) numéro de subvention RGY0073/2018 à M.P.M. Toute opinion, constatation, conclusion ou recommandation exprimée dans ce document est celle de l’auteur (s) et ne reflète pas nécessairement les points de vue de l’ARO, des NIH ou du HFSP. S.C. reconnaît les discussions fructueuses avec V. Yadav, C. Muresan et S. Amiri.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
sel de nickel 1,2-dioleoyl-sn-glycero-3-{[n(5-amino-1-carboxypentyl)iminodiacétique]succinyl} sel de nickel (DOGS-NTA-Ni)  ;Avanti Polar Lipids Inc.231615773Nickel Lipid
1,4-Diazabicyclo[2.2.2]octaneSigmaD27802-25GDABCO
Protéine d’actine (>99 % pure) : muscle squelettique de lapinCytosquelette, IncAKL99-Dnon fluorescente G-actine
Protéine d’actine (rhodamine) : muscle squelettique de lapinCytosquelette, IncAR05actine marquée par fluorescence
Adénosine 5&prime ;-triphosphate hydrate de sel disodiqueSigmaA2383-10GATP
Alexa Fluor 647 colorantThermoFishercolorant fluorescent
Andor iQ3Logiciel de contrôle et d’acquisition Andor Technologies
Arp2/3 Complexe protéique :CytosqueletteRP01P-AArp 2/3
Chlorure de calcium dihydratéSigma10035048CaCl2
Chambres chalides (4 puits pour lamelles rondes de 12 mm)Chambre d’incubationQuorum Technologies
Protéine de cofiline :cytosqueletteCF01-Ccofiline
Microscope confocal (objectif à immersion dans l’huile 63×)Andor TechnologiesLEICA DMi8
D-(+)-GLUCOSE BIOXTRASigmaG7528glucose
DithiothreitolDOT Scientific  ;DSD11000-10DTT
Gelsolin Protein : Homo Sapiens RecombinantCytoskeleton, IncHPG6Gelsolin
Hamilton 1750 Seringue étanche au gaz, 500 µ ; L, aiguille cimentée, 22 G, embout conique 2"Cole-ParmerUX-07940-53seringue en verre
HEPESAmericanBio7365-45-9
ImageJ/Fijihttps://imagej.net/tutorials/
L-alpha-PhosphatidylcholineAvanti Polar Lipids Inc.97281442EPC
Chlorure de magnésiumSigma7786303MgCl2
Huile minérale, BioReagent, pour la biologie moléculaire, huile légèreSigma8042475huile minérale
N-WASP fragment WWA (aa400&ndash ; 501, VCA-His)VCA-His est purifié à l’aide d’un protocole de laboratoire. Le protocole peut être fourni sur demande raisonnable
Oregon Green 488 1,2-Dihexadecanoyl-sn-Glycero-3-Phosphoethanolamine (Oregon Green 488 DHPE)Thermo FisherO12650DHPE
Chlorure de potassiumSigma7447407KCl
SaccharoseSigma57-50-1saccharose
&bêta ;-Caséine de lait bovinSigmaC6905-250MG
pour microscope confocal cérébral porcin, Inc recombinant humain, Inc

Références

  1. Murrell, M., Oakes, P. W., Lenz, M., Gardel, M. L. Forcing cells into shape: the mechanics of actomyosin contractility. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 16 (8), 486-498 (2015).
  2. Stricker, J., Falzone, T., Gardel, M. L. Mechanics of the F-actin cytoskeleton. Jour....

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Réimpressions et autorisations

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