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Article de méthode

Combinaison d’un actionneur de force magnétique 3D et d’une imagerie par fluorescence multifonctionnelle pour étudier la mécanobiologie du noyau

2.4K vues

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DOI :

10.3791/64098

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5 juillet 2022

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Dans cet article

Résumé

Cette étude présente un nouveau protocole pour appliquer directement une force mécanique sur le noyau cellulaire par le biais de microbilles magnétiques livrées dans le cytoplasme et pour effectuer simultanément l’imagerie fluorescente de cellules vivantes.

Résumé

Une question fondamentale en mécanobiologie est de savoir comment les cellules vivantes perçoivent les stimuli mécaniques extracellulaires dans le contexte de la physiologie et de la pathologie cellulaires. On pense que la mécano-sensation cellulaire des stimuli mécaniques extracellulaires se fait à travers les récepteurs membranaires, le complexe protéique associé et le cytosquelette. Les progrès récents de la mécanobiologie démontrent que le noyau cellulaire du cytoplasme lui-même peut détecter indépendamment simultanément les stimuli mécaniques. Cependant, une compréhension mécaniste de la façon dont le noyau cellulaire détecte, transduit et répond aux stimuli mécaniques fait défaut, principalement en raison des défis techniques liés à l’accès et à la quantification de la mécanique du noyau par des outils conventionnels. Cet article décrit la conception, la fabrication et la mise en œuvre d’un nouvel actionneur de force magnétique qui applique des stimuli mécaniques 3D précis et non invasifs pour déformer directement le noyau cellulaire. En utilisant des cellules modifiées par CRISPR/Cas9, cette étude démontre que cet outil, combiné à l’imagerie confocale fluorescente à haute résolution, permet la révélation de la dynamique en temps réel d’une protéine associée oui (YAP) mécano-sensible dans des cellules individuelles en fonction de la déformation du noyau. Cette méthode simple a le potentiel de combler le fossé technologique actuel dans la communauté de la mécanobiologie et de fournir des réponses au manque de connaissances qui existe dans la relation entre la mécanotransduction du noyau et la fonction cellulaire.

Introduction

Cette étude vise à développer et à appliquer une nouvelle technique pour élucider la mécanobiologie du noyau en combinant les actionneurs magnétiques qui appliquent une force mécanique directement sur le noyau cellulaire et la microscopie confocale à fluorescence qui imagera simultanément les changements subcellulaires structurels et fonctionnels. Les cellules détectent les signaux biophysiques extracellulaires, y compris la rigidité tissulaire 1,2,3,4, la pression du fluide interstitiel et la contrainte de cisaillement

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Protocole

1. Maintenance des cellules B2B conçues par CRISPR/Cas9

  1. Culture de cellules B2B dans une fiole T25 avec RPMI-1640 supplémentée avec 10% de sérum bovin fœtal et 1% de pénicilline-streptomycine.
  2. Maintenir les cellules B2B dans un incubateur humidifié à 37 °C avec 5% de CO2.
  3. Sous-culture des cellules B2B lorsque la confluence atteint 70% à 80%.
  4. Conservez la lignée cellulaire B2B dans un milieu de culture RPMI-1640 contenant 10 % (v/v) de DMSO dans un congélateur à -80 °C.
  5. Utilisez les cellules B2B avec un nombre de passage inférieur à 10 dans les expériences.

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Résultats

Conception d’un dispositif de déplacement d’aimant et application d’une force magnétique
Pour appliquer une force sur le noyau à travers les microbilles magnétiques, un dispositif de déplacement d’aimant a été conçu et construit pour contrôler la position spatiale de l’aimant. Le dispositif de déplacement de l’aimant contient un cadre central, trois boutons et des rails pour déplacer l’aimant attaché dans les directions x, y et z indépendamment à la résolution spatiale de 1,59 mm par cycle (

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Discussion

L’internalisation des microbilles magnétiques (section 2.2) est essentielle parce que les microbilles extracellulaires ne peuvent pas appliquer de force directement sur le noyau. L’application de force et l’imagerie (section 5.3) sont des étapes critiques dans cette expérience, et la force nécessaire pour déformer le noyau et induire des conséquences biologiques significatives pourrait dépendre de l’échantillon. L’amplitude de la force dans cette expérience (0,8 nN et 1,4 nN) peut encore être augmentée pour déclencher la.......

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Déclarations de divulgation

Il n’y a pas de conflits d’intérêts à déclarer.

Remerciements

Ce projet est financé par UF Gatorade Award Start-up Package (X. T.), le UFHCC Pilot Award (X. T. et Dr. Dietmar Siemann), UF Opportunity Seed Fund (X. T.) et UFHCC University Scholars Program (H. Y. Wang). Nous apprécions sincèrement les discussions intellectuelles et le soutien technique du Dr Jonathan Licht (UFHCC), du Dr Rolf Renne (UFHCC), du Dr Christopher Vulpe (UFHCC), du Dr Blanka Sharma (BME), du Dr Mark Sheplak (MAE & ECE), du Dr Daniel Ferris (BME), du Dr Malisa Sarntinoranont (MAE), du Dr Ashok Kumar (MAE), du Dr Benjamin Keselowsky (BME), du Dr Brent Gila (RSC), du Dr Philip Feng (ECE), Dr Gregory A. Hudalla (BME), Dr Steven Ghivizzani (OSSM), Dr Yenise....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
0,05 % TrypsineCorning25-051-CI
25 cm2 flaconCorning156340
7-µ ; m diamètre moyen microbilles de fer carbonyleN/AN/A
A1R système confocalNikon
Poudre de fer carbonyle CMBASF30042253Microbilles magnétiques
Milieu de culture (RPMI-1640)Ordinateurde
Dellavec système d’exploitation Windows 10
Chambre environnementale TIZBTokai HitTIZB
Sérum fœtal bovin (FBS)Gibco26140
Fiji ImageJInstitutes of Health et le Laboratoire d’instrumentation
Boîte de Pétri à fond de verreMatTekP35G-1.5-14-C
AimantK& J Magnetics, Inc.D99-N52
Monochrome Appareil photoFLIRBFS-U3-70S7M-C
NIS-Elements plate-forme logicielleNikonPlate-forme logicielle
Nucleus mask ImageJ macrohttps://github.com/KOLIUG/Nuclear
masque NucSpot Live 650Biotium#40082Coloration nucléaire
Pénicilline-streptomycineGibco15140122
Phosphate tamponné sérum physiologique (PBS)Gibco10010023
Ti2-E microscope inverséNikon
XYZ mover (fichiers CAD)https://github.com/KOLIUG/XYZ-mover
bureau Gibco 11875093 National optique et computationnelle

Références

  1. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. Tissue cells feel and respond to the stiffness of their substrate. Science. 310 (5751), 1139-1143 (2005).
  2. Janmey, P. A., Fletcher, D. A., Reinhart-King, C. A. Stiffness sensing by cells. Physiological Reviews. 100 (2), 695-724 (2020).
  3. Bajaj, P., ....

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Réimpressions et autorisations

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